ĆWICZENIE 3. Cukry mono i disacharydy

Podobne dokumenty
ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

Ćwiczenie 4. Identyfikacja wybranych cukrów w oparciu o niektóre reakcje charakterystyczne

Protokół: Reakcje charakterystyczne cukrowców

ĆWICZENIE 1. Aminokwasy

WĘGLOWODANÓW HO H H O H C H C O H O H HC C H O H C H O C C 3 H 2 O. H furfural. H pentoza C H 2 O H O H H C O H HC C C C H.

1.1 Reakcja trójchlorkiem antymonu

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE CUKRÓW

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

Reakcje charakterystyczne sacharydów

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Piotr Chojnacki 1. Cel: Celem ćwiczenia jest wykrycie jonu Cl -- za pomocą reakcji charakterystycznych.

WYCHOWANIE FIZYCZNE - STUDIA ZAOCZNE 2010/2011

III-B. Chemia w kuchni

Cukry - czy każdy cukier jest słodki? Wykrywanie skrobi.

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

ĆWICZENIE IV. Badanie właściwości cukrów, kwasów karboksylowych, tłuszczów, aminokwasów na podstawie wybranych reakcji chemicznych

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

III-A. Chemia wspomaga nasze zdrowie

Węglowodany metody jakościowe oznaczania cukrów reakcja Molisha, Fehlinga, Selivanowa; ilościowe oznaczanie glukozy metodą Somogyi Nelsona

INSTRUKCJE DO ĆWICZEŃ- Kwasy i wodorotlenki

Ćwiczenia laboratoryjne 2

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

Otrzymany w pkt. 8 osad, zawieszony w 2 ml wody destylowanej rozpipetować do 4 szklanych probówek po ok. 0.5 ml do każdej.

KATALIZA I KINETYKA CHEMICZNA

WŁAŚCIWOŚCI KOLIGATYWNE ROZTWORÓW

PREPARATYKA NIEORGANICZNA. Przykład 1 Ile kilogramów siarczanu(vi) żelaza (II) można otrzymać z 336 kg metalicznego żelaza?

STRUKTURA A WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE I FIZYCZNE PIERWIASTKÓW I ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH

G-VII. Substancje o znaczeniu biologicznym

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

UWAGA NA WRZĄCY OLEJ!!!!

MECHANIZMY REAKCJI CHEMICZNYCH. REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE GRUP FUNKCYJNYCH ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

Metody otrzymywania kwasów, zasad i soli. Reakcje chemiczne wybranych kwasów, zasad i soli. Ćwiczenie 1. Reakcja otrzymywania wodorotlenku sodu

UKŁAD OKRESOWY PIERWIASTKÓW, WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE PIERWIASTKÓW 3 OKRESU

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI CUKRÓW REDUKUJĄCYCH ORAZ CUKRÓW REDUKUJĄCYCH PO INWERSJI

REAKCJE UTLENIAJĄCO-REDUKCYJNE

fruktoza α,d(+)glukopiranoza β,d(-)fruktofuranoza

CZĘŚĆ PIERWSZA REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE WĘGLOWODANÓW

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

Identyfikacja wybranych kationów i anionów

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

REAKCJE W CHEMII ORGANICZNEJ

ĆWICZENIE 5. Badanie właściwości cukrów, kwasów karboksylowych, tłuszczów na podstawie wybranych reakcji chemicznych

Reakcje charakterystyczne cukrów

ANALIZA MOCZU FIZJOLOGICZNEGO I PATOLOGICZNEGO I. WYKRYWANIE NAJWAŻNIEJSZYCH SKŁADNIKÓW NIEORGANICZNYCH I ORGANICZNYCH MOCZU PRAWIDŁOWEGO.

BADANIE WŁAŚCIWOŚCI FIZYKOCHEMICZNYCH AMINOKWASÓW

Po wykonaniu każdego ćwiczenia należy zanotować spostrzeżenia i wnioski dotyczące przebiegu reakcji.

Ćwiczenie 1. Zależność szybkości reakcji chemicznych od stężenia reagujących substancji.

SCENARIUSZ ZAJĘĆ SZKOLNEGO KOŁA NAUKOWEGO Z PRZEDMIOTU BIOLOGIA PROWADZONEGO W RAMACH PROJEKTU AKADEMIA UCZNIOWSKA

Zajęcia 10 Kwasy i wodorotlenki

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

Ćwiczenie 2. Analiza jakościowa związków organicznych zawierających azot, siarkę oraz fluorowcopochodne.

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

ĆWICZENIE NR 1 Analiza ilościowa miareczkowanie zasady kwasem.

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) woda (1/6) soli Mohra (NH4)2Fe(SO4)2 6H2O

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

G-VI. Węgiel i jego związki z wodorem. Pochodne węglowodorów

XIV KONKURS CHEMICZNY DLA UCZNIÓW GIMNAZJÓW WOJEWÓDZTWA ŚWIĘTOKRZYSKIEGO. FINAŁ 13 marca 2017

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćwiczenie 1. Reakcje charakterystyczne miedzi(ii)

Synteza Cu(CH 3 COO) 2 H 2 O oraz (NH 4 ) 2 Ni(SO 4 ) 2 6H 2 O

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

Temat: Składniki odżywcze żywności. Data: Opracowała: Marta Gołębiewska - Szczykowska. Cele sformułowane w języku ucznia: Na dzisiejszej lekcji:

WYKRYWANIE WIĄZAŃ WIELOKROTNYCH WYKRYWANIE WIĄZAŃ WIELOKROTNYCH

ĆWICZENIE III. Reakcje charakterystyczne na węglowodory (alifatyczne, aromatyczne), alkohole, aldehydy i ketony

Węglowodany (Cukry) Część 2. Związki wielofunkcyjne

Oznaczanie aktywności - i β- amylazy słodu metodą kolorymetryczną

ĆWICZENIE NR 3 IDENTYFIKACJA CUKRÓW PROSTYCH I ZŁOŻONYCH REAKCJAMI BARWNYMI. HYDROLIZA SACHAROZY

Ilościowe oznaczenie glikogenu oraz badanie niektórych jego właściwości

ĆWICZENIA LABORATORYJNE WYKRYWANIE WYBRANYCH ANIONÓW I KATIONÓW.

Laboratorium 1. Izolacja i wykrywanie trucizn cz. 1

REAKCJE PROBÓWKOWE 3. Aldehydy, ketony, cukry

INSTRUKCJA DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH: SULFONOWANIE ZWIĄZKÓW ORGANICZNYCH

Chemia Organiczna Syntezy

Winiarstwo część praktyczna. Cel ćwiczenia Poznanie metod badań i oceny moszczów owocowych, win i miodów pitnych

CZEŚĆ PIERWSZA REAKCJE CHARAKTERYSTYCZNE WĘGLOWODANÓW

Laboratorium. Technologia i Analiza Aromatów Spożywczych

ZJAWISKA FIZYCZNE I CHEMICZNE

Ćwiczenia laboratoryjne semestr pierwszy 30 godzin. Kierunek: Genetyka i biologia eksperymentalna

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

Cukry proste i złożone

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

ĆWICZENIE 4. Roztwory i ich właściwości

ALKACYMETRIA. Ilościowe oznaczanie HCl metodą miareczkowania alkalimetrycznego

REAKCJE PROBÓWKOWE 3. Aldehydy, ketony, cukry*

A M I N O K W A S Y. Ćwiczenie 1. Rozdział i identyfikacja aminokwasów metodą chromatografii cienkowarstwowej

Odpowiedź:. Oblicz stężenie procentowe tlenu w wodzie deszczowej, wiedząc, że 1 dm 3 tej wody zawiera 0,055g tlenu. (d wody = 1 g/cm 3 )

TRZYLETNIE STUDIA STACJONARNE I STOPNIA. specjalność CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW ZESTAW ĆWICZENIOWY NR 2

PRZYKŁADOWE ZADANIA WĘGLOWODANY

A M I N O K W A S Y. Ćwiczenie 2. Reakcja grupy aminowej z kwasem azotowym (III) reakcja Van Slyke a

Równowagi w roztworach elektrolitów

PRAWO DZIAŁANIA MAS I REGUŁA PRZEKORY

Transkrypt:

ĆWICZENIE 3 Cukry mono i disacharydy Reakcja ogólna na węglowodany (Reakcja Molischa) 1 ml 1% roztworu glukozy 1 ml 1% roztworu fruktozy 1 ml 1% roztworu sacharozy 1 ml 1% roztworu skrobi 1 ml wody destylowanej 1 ml świeżo przygotowanego 20% alkoholowego roztworu α-naftolu (odczynnik Molischa) 5 ml stężonego kwasu siarkowego 5x probówki szklane 7x pipetki plastikowe Przygotować 5 probówek. Do pierwszej wlać 1 ml 1% roztworu glukozy (aldoza), do drugiej 1ml 1% roztworu fruktozy (ketoza), do trzeciej 1ml 1% roztworu sacharozy (dwucukier), do czwartej 1ml 1% roztworu skrobi (polisacharyd) a do piątej 1 ml wody destylowanej. Następnie do każdej probówki dodać 2 krople świeżo przygotowanego 20% alkoholowego roztworu α-naftolu (odczynnik Molischa), zamieszać i podwarstwić 1ml stężonego kwasu siarkowego (tak żeby warstwy się nie zmieszały). W probówkach zawierających cukier pojawi się czerwony lub czerwono fioletowy pierścień na granicy faz. Odróżnianie aldoz od ketoz (reakcja Seliwanowa) 2 ml 1% roztworu glukozy 2 ml 1% roztworu fruktozy 2 ml wody destylowanej 1,5 ml stężonego HCl 0,5 ml 2% etenolowego roztworu rezorcyny 3x probówki szklane 4x pipetki plastikowe Przygotować trzy probówki. Do pierwszej odmierzyć 2 ml 1% roztworu glukozy, do drugiej 2 ml 1% roztworu fruktozy a do trzeciej 2 ml wody destylowanej. Do każdej probówki dodać dokładnie 0,5 ml stężonego HCl. Zawartość zamieszać. Następnie do każdej probówki dodać 3 krople 2% etenolowego roztworu rezorcyny i ogrzewać na wrzącej łaźni wodnej przez 1 min. W przypadku fruktozy (ketoza) po ogrzewaniu przez około 0,5-1 min. roztwór zabarwia się na kolor czerwony. Glukoza (aldoza) może również tworzyć podobnie zabarwione połączenie z rezorcyną, jednakże po 9

znacznie dłuższym ogrzewaniu. Wykrywanie cukrów redukujących reakcja Fehlinga 1 ml 1% roztworu glukozy 1 ml 1% roztworu fruktozy 1 ml 1% roztworu skrobi 1 ml wody destylowanej 2 ml roztworu Fehlinga I 2 ml roztworu Fehlinga II 4x probówki szklane 6x pipetki plastikowe Przygotować 4 probówki. Do pierwszej nalać 1 ml 1% roztworu glukozy (aldoza), do drugiej 1ml 1% roztworu fruktozy (ketoza), do trzeciej 1ml 1% roztworu skrobi (polisacharyd), do czwartej 1ml wody destylowanej. Następnie do każdej z nich dodać po 0,5 ml roztworu Fehlinga I i 0,5 ml roztworu Fehlinga II, zamieszać i ogrzewać do wrzenia na łaźni wodnej. W przypadku cukru redukującego występuje zabarwienie lub brunatno pomarańczowy osad wydzielonego Cu 2 O. Wykrywanie cukrów redukujących reakcja z błękitem metylenowym 1 ml 1% roztworu glukozy 1 ml 1% roztworu fruktozy 1 ml 1% roztworu sacharozy 1 ml 1% roztworu skrobi 12 ml wody destylowanej 1 ml błękitu metylenowego 1 ml 10% NaOH 5x probówki szklane 7x pipetki plastikowe Przygotować 5 probówek. Do każdej z nich nalać 2 ml wody destylowanej, 4 krople błękitu metylenowego i 2 krople 10% NaOH. Zawartość zamieszać i każdą probówkę ogrzewać na wrzącej łaźni wodnej przez 1 min. Do pierwszej wlać 1 ml 1% roztworu glukozy (aldoza), do drugiej 1ml 1% roztworu fruktozy (ketoza), do trzeciej 1ml 1% roztworu sacharozy (dwucukier), do czwartej 1ml 1% roztworu skrobi (polisacharyd) a do piątej 1 ml wody destylowanej i ponownie ogrzewać. W probówkach zawierających cukry redukujące znika niebieska barwa roztworu. Ponowne zabarwienie można uzyskać wytrząsając probówkę z odbarwionym płynem. 10

Kwaśna hydroliza sacharozy 2 ml 1% roztworu sacharozy 1 ml 2M HCl 1 ml 2M NaOH 1 ml wody destylowanej 1 ml roztworu Fehlinga I 1 ml roztworu Fehlinga II 2x probówki szklane 6x pipetki plastikowe Przygotować 2 probówki. Do każdej z nich nalać po 1 ml 1% sacharozy. Do pierwszej probówki dodać 3 krople 2M HCl i po zmieszaniu ogrzewać we wrzącej łaźni wodnej około 3 min. Po schłodzeniu zobojętnić probówkę 3 kroplami 2M NaOH. Następnie wykonać rekcję Fehlinga na cukry redukujące (jak w doświadczeniu poprzednim) dla otrzymanego roztworu zhydrolizowanej sacharozy i dla sacharozy niezhydrolizowanej z drugiej probówki. Cukry - polisacharydy Rozpuszczalność skrobi 1 g skrobi 100 ml wody destylowanej 1 ml roztworu I 2 w KI 2x probówki szklane 1x pipetka plastikowa 1x zlewka szklana 25 ml 1x zlewka szklana 100 ml 1x bagietka szklana Waga laboratoryjna Odważyć 0,5 g skrobi i wsypać do zlewki na 25 ml. Dodać 10 ml wody destylowanej i dokładnie 11

wymieszać. 5 ml uzyskanego roztworu przesączyć przez bibułę do probówki. Do przesączu dodać 2 krople roztworu I 2 w KI. Ponieważ skrobia jest nierozpuszczalne w zimnej wodzie roztwór nie zabarwi się. W zlewce na 100 ml zagotować 45 ml wody. W drugiej zlewce sporządzić zawiesinę 0,5 g skrobii w 5 ml zimnej wody. Wlać zawiesinę do wrzącej wody i stale mieszając doprowadzić do uzyskania jednolitego opalizującego roztworu skrobi. Pobrać 5 ml roztworu i przesączyć go do probówki. Dodać 2 krople roztworu I 2 w KI. Pojawia się niebieskie zabarwienie świadczące o rozpuszczaniu się skrobi w gorącej wodzie. Próba z jodem 1 ml - 1% roztwór kleiku skrobiowego (z pierwszego doświadczenia) 0,5 ml - odczynnik Lugola (I 2 w KI) 1x probówka szklana 1x pipetka plastikowa Do 1 ml kleiku skrobiowego z poprzedniego doswiadczenia dodać 2 krople odczynnika Lugola. Roztwór przybiera ciemno niebieskie zabarwienie. Następnie probówkę umieścic we wrzącej łaźni wodnej zabarwienie znika. Po oziębieniu probówki (pod bieżącą wodą) - zabarwienie powraca. Kwaśna hydroliza skrobi 12 ml 1% roztworu skrobi (z pierwszego doświadczenia) 6 ml 2M HCl 6 ml 2M NaOH 2 ml roztworu I 2 w KI 3 ml roztworu Fehlinga I 3 ml roztworu Fehlinga II 12x probówki szklane 6x pipetki plastikowe Przygotować 12 probówek szklanych. Do każdej z nich nalać 1 ml 1% roztworu skrobi i dodać 0,5 ml 2M HCl. Podzielić probówki na dwie serie po 6 probówek każda. 12

Pierwszą serie wstawić do wrzącej łaźni wodnej. Co trzy min. wyjmować kolejną probówkę i po schłodzeniu dodawać dwie krople roztworu I 2 w KI. Obserwować zmiany zabarwienia w czasie hydrolizy. Wstawić do wrzącej łaźni wodnej drugą serię probówek. Co trzy min. wyjmować probówkę i po schłodzeniu dodawać 0,5 ml 2M NaOH w celu zobojętnienia, a następnie po 0,5 ml roztworu Fehlinga I i 0,5 ml roztworu Fehlinga II. Umieścić ponownie całą II serię probówek na 5 min. we wrzącej łaźni wodnej. Obserwować zmiany zabarwienia w czasie hydrolizy. Wysalanie skrobi 4ml - 1% roztworu skrobi (z pierwszego doświadczenia) 4ml - nasycony roztwór siarczanu amonu 2x probówki szklane 2x pipetki plastikowe Do dwóch probówek nalac po 2ml roztworu kleiku skrobiowego z doświadczenia pierwszego. Do pierwszej dodać 2 ml siarczanu amonu, a do drugiej 2 ml wody destylowanej - zamieszać. Odstawić obie probówki na 30 min. W pierwszej probówce po 10 min. pojawia się zmętnienie, po dłuższym staniu z roztworu wytrąca się osad skrobi. W drugiej brak zmian. Kwaśna hydroliza celulozy 10ml woda destylowana 1ml stężony H 2 SO 4 2ml - 2M NaOH 0,5 ml - roztworu Fehlinga I 0,5 ml - roztworu Fehlinga II 1x probówka szklana duża 1x probówka szklana zwyczajna 5x pipetki plastikowe Kilka strzępków bibuły, zalać w dużej probówce 10 ml wody. Ostrożnie po ściankach dodać 1 ml stężonego H 2 SO 4. Wymieszać lekko i ogrzewać na wrzącej łaźni wodnej 30 min. Po schłodzeniu dodać ostrożnie wodę destylowaną do uzyskania poprzedniej objętości. Odebrać do zwykłej probówki 1 ml płynu, zobojętnić 2 ml 2M NaOH, dodać 1 ml zmieszanych ze sobą odczynników Fehlinga I i II (w stosunku 1:1) i gotować we wrzącej łaźni wodnej. Pomimo bardzo drastycznych 13

warunków cukry redukujące pojawiają się w bardzo małej ilości lub wcale. Mobilizacja cukrów w procesie kiełkowania Przygotowanie przesączu: W moździerzu rozcieramy 5 g kiełkujących ziarniaków jęczmienia, przenosimy do zlewki i zalewamy 50 ml wody destylowanej. Do drugiej zlewki wsypujemy 5 g zmielonego suchego ziarna jęczmienia. Zlewki umieszczamy na 20 min w łaźni wodnej o temp. 65-70 C. Po ochłodzeniu zawartość zlewek sączymy. doświadczenia Przygotowujemy trzy probówki. Do pierwszej w lewamy 2 ml przesączu ze zmielonego suchego ziarna, a do drugiej i trzeciej - 2 ml przesączu z kiełkującego jęczmienia. W trzeciej probówce przeprowadzamy dodatkowo kwaśną hydrolizę przesączu. W tym celu do 2 ml tego przesączu dodajemy kilka kropel 2 M HCl i ogrzewamy10 min na wrzącej łaźni wodnej. Po ochłodzeniu zawartość probówki zobojętniamy 2 M NaOH. We wszystkich trzech probówkach przeprowadzamy reakcję Fehlinga. W tym celu do probówek dodajemy po 2 ml zmieszanych ze sobą odczynników Fehlinga I i II (w stosunku 1:1), ogrzewamy we wrzącej łaźni wodnej ok 3 min i porównujemy ilość powstałego Cu 2 0. Efekt mobilizacji cukrów w procesie kiełkowania staje się bardziej widoczny, jeśli przeprowadzi się kwaśną hydrolizę przesączu z kiełkującego ziarna, w wyniku której zachodzi rozkład sacharozy do cukrów redukujących. 14