Spis treści. 3. Metody elektrochemiczne - Krystyna Sztefko 3.1. Wstęp 3.2. Zasady metod elektrochemicznych

Podobne dokumenty
Tab.1. Charakterystyka materiału do badań w Pracowni Hemostazy LDH

Techniki analityczne. Podział technik analitycznych. Metody spektroskopowe. Spektroskopia elektronowa

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok OAM

Analiza instrumentalna

Spis treści CZĘŚĆ I. PROCES ANALITYCZNY 15. Wykaz skrótów i symboli używanych w książce... 11

Biologia molekularna

Wydziału Biotechnologii i Nauk o Żywności

2. Metody, których podstawą są widma atomowe 32

Specjalność. Nie dotyczy. Rok, semestr studiów np. rok 1, semestr (I i II) Liczba przypisanych punktów ECTS (z rozbiciem na semestry )

Sylabus Biologia molekularna

SYLABUS. WYDZIAŁ FARMACEUTYCZNY Zakład Chemii Analitycznej...

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne. Toksykologia. Nie dotyczy

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne

S YL AB US MODUŁ U ( PRZEDMIOTU) I nforma c j e ogólne. Toksykologia

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne

1. CENTRUM DIAGNOSTYKI LABORATORYJNEJ Maryla Drynkowska-Panasiuk ul. Jaracza Łódź

Część praktyczna: Metody pozyskiwania komórek do badań laboratoryjnych cz. I

SYLABUS. WYDZIAŁ FARMACEUTYCZNY Zakład Chemii Analitycznej... NAZWA KIERUNKU: ANALITYKA MEDYCZNA... PROFIL KSZTAŁCENIA: PRAKTYCZNY...

FORMULARZ CENOWY - ZMODYFIKOWANY. Podatek VAT Wartość netto % kwota RAZEM: Ilość ozn. w opakowaniu. Ilość pełnych opakowań

KRYTERIA WYBORU W PLANOWANIU I REALIZACJI ANALIZ CHEMICZNYCH

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 6-1 w PWN. Warszawa, cop.

Wydział Budownictwa i Inżynierii Środowiska. Poziom i forma studiów. Ścieżka dyplomowania: przedmiotu: 0) Semestr: W - 15 C- 0 L- 30 P- 0 Ps- 0 S- 0

CENNIK KRWI I JEJ SKŁADNIKÓW ORAZ USŁUG

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 5, 4 dodr. Warszawa, 2015.

Sylabus Biologia molekularna

CENNIK KRWI I JEJ SKŁADNIKÓW ORAZ USŁUG

Spis treści. Aparatura

Zakres wymagań przedmiotu Analiza instrumentalna

Aktualny wykaz aparatury specjalistycznej.

III. GRUPY PRZEDMIOTÓW I MINIMALNE OBCIĄŻENIA GODZINOWE

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU)

Metody biologii molekularnej w diagnostyce mikrobiologicznej (32h) r. KURS DOFINANSOWANY PRZEZ:

Specjalność (studia II stopnia) Oczyszczanie i analiza produktów biotechnologicznych

Spektrofotometria ( SPF I, SPF II ) Spektralna analiza emisyjna ( S ) Fotometria Płomieniowa ( FP )

Opis zakładanych efektów kształcenia dla kierunku

CENNIK KRWI I JEJ SKŁADNIKÓW ORAZ USŁUG

Opis efektów kształcenia Absolwent studiów podyplomowych

3. Ogniwa galwaniczne i ich podział (ogniwa chemiczne i stężeniowe). 5. Zasada i sposoby pomiaru siły elektromotorycznej ogniwa (metoda kompensacyjna

Zastosowanie nowych technologii w diagnostyce mikrobiologicznej. Ireneusz Popławski

CENNIK KRWI I JEJ SKŁADNIKÓW ORAZ USŁUG

ZAKŁAD CHEMII ANALITYCZNEJ

CENNIK KRWI I JEJ SKŁADNIKÓW ORAZ USŁUG

Czynnik V Leiden ( odporność na aktywne białko C ) 200

mikrosatelitarne, minisatelitarne i polimorfizm liczby kopii

Laboratorium Pomorskiego Parku Naukowo-Technologicznego Gdynia.

CENNIK KRWI I JEJ SKŁADNIKÓW ORAZ USŁUG

Techniki immunochemiczne. opierają się na specyficznych oddziaływaniach między antygenami a przeciwciałami

ZAKŁAD DIAGNOSTYKI LABORATORYJNEJ I IMMUNOLOGII KLINICZNEJ WIEKU ROZOJOWEGO AM W WARSZAWIE.

Analityka przemysłowa i środowiskowa. Nowoczesne techniki analityczne. Analityka środowiskowa. Analityka radiochemiczna

ZAKRES MATERIAŁU Z ANALIZY INSTRUMENTALNEJ

POTENCJOMETRIA KONDUKTOMETRIA

II Wydział Lekarski z Oddziałem Anglojęzycznym Kierunek: BIOMEDYCYNA Poziom studiów: pierwszy stopień Profil: Praktyczny SEMESTR I

Diagnostyka wirusologiczna w praktyce klinicznej

Wykonawca:... Samodzielny Publiczny Zespół... Zakładów Opieki Zdrowotnej w Kozienicach... ul. Al. Wł. Sikorskiego 10 ODCZYNNIKI

SYLABUS. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki

WIEDZA K_W01 K_W02 K_W03 K_W04 K_W05 K_W06 K_W07 K_W08 K_W09 K_W10 K_W11 K_W12 K_W13 K_W14

Centralne Laboratorium Analityczne Wojewódzkiego Szpitala Zakaźnego w Warszawie jest nowoczesnym, wieloprofilowym laboratorium diagnostyki medycznej.

Planu studiów na kierunku analityka medyczna obowiązujący w roku akademickim 2017/2018. I ROK STUDIÓW (rok akad. 2017/2018)

Interdyscyplinarny charakter badań równoważności biologicznej produktów leczniczych

Diagnostyka Laboratoryjna

ĆWICZENIA Z BIOCHEMII

Nazwa i typ aparatu:.. Lp. Opis parametru Kryterium Parametr wymagany

POTENCJOMETRIA KONDUKTOMETRIA

PROGRAM. PONIEDZIAŁEK 19 września 2016 r ROZPOCZĘCIE WYKŁAD. inż. Janusz Kurleto

ZAPOBIEGANIE KRWAWIENIOM U DZIECI Z HEMOFILIĄ A I B (ICD-10 D 66, D 67)

S YLABUS MODUŁU. I nformacje ogólne

Wykaz badań laboratoryjnych Przeciętny czas oczekiwania na wynik Cennik 2016 rok

Wydział Lekarski Uniwersytetu Medycznego we Wrocławiu 4. Kod przedmiotu/modułu

Rekomendacje dla medycznych laboratoriów w zakresie diagnostyki toksykologicznej

Aktualny wykaz aparatury specjalistycznej na rok 2018

Techniki biologii molekularnej Kod przedmiotu

PLATYNOWCE ZASTOSOWANIE I METODY OZNACZANIA. Beaty Godlewskiej-Żyłkiewicz i Krystyny Pyrzyńskiej. Opracowanie monograficzne pod redakcją

10) istotne kliniczne dane pacjenta, w szczególności: rozpoznanie, występujące czynniki ryzyka zakażenia, w tym wcześniejsza antybiotykoterapia,

Chemia kryminalistyczna

Aktualny wykaz aparatury specjalistycznej.

SYLABUS. WYDZIAŁ FARMACEUTYCZNY Zakład Chemii Analitycznej... NAZWA KIERUNKU: FARMACJA... PROFIL KSZTAŁCENIA: PRAKTYCZNY...

Wniosek o wpis medycznego laboratorium diagnostycznego do ewidencji

Ocena jakościowa reakcji antygen - przeciwciało. Mariusz Kaczmarek

PROGRAM WYKŁADÓW I ĆWICZEŃ w roku akademickim 2006/2007. STACJONARNE JEDNOLITE STUDIA MAGISTERSKIE na kierunku ANALITYKA MEDYCZNA (studia 5-letnie)

SYLABUS. WYDZIAŁ FARMACEUTYCZNY Zakład Chemii Analitycznej... NAZWA KIERUNKU: FARMACJA...

Zakład Mikrobiologii Klinicznej [1]

Metody badania ekspresji genów

PRZEWODNIK PO PRZEDMIOCIE

I. Odczynniki i materiały zużywalne

Uniwersytet Medyczny w Łodzi Wydział Nauk o Zdrowiu Sylabus 2011/2012

SYLABUS. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki

WZORCOWE EFEKTY KSZTAŁCENIA DLA KIERUNKU STUDIÓW ANALITYKA MEDYCZNA JEDNOLITE STUDIA MAGISTERSKIE PROFIL PRAKTYCZNY

Diagnostyka zakażeń EBV

WYPOSAŻENIE LABORATORIÓW CENTRUM NOWYCH TECHNOLOGII UW W APARATURĘ NIEZBĘDNĄ DO PROWADZENIA BADAŃ NA RZECZ PRZEMYSŁU I MEDYCYNY

PROGRAM NAUCZANIA PRZEDMIOTU (ĆWICZENIA LABORATORYJNE) CHEMIA KLINICZNA

Plan studiów na kierunku analityka medyczna dla rozpoczynających w roku akademickim 2018/2019

WIEDZA. wskazuje lokalizacje przebiegu procesów komórkowych

Program studiów II stopnia dla studentów kierunku chemia od roku akademickiego 2015/16

INSTRUMENTALNE METODY ANALIZY CHEMICZNEJ

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok WF (kierunek farmacja)

Zajęcia w grupach studenckich/dziekańskich (co najmniej 12 osobowych) 15 Zajęcia w grupach łączonych (co najmniej 24 osobowych) 15

PROGRAM STUDIÓW studentów I roku Gdańskiego Uniwersytetu Medycznego, kierunek analityka medyczna w roku akademickim 2019/2020 cykl

Załącznik Nr 5 do Zarz. Nr 33/11/12

Transkrypt:

Spis treści 1. Charakterystyka analityczna metody laboratoryjnej - Bogdan Solnica 1.1. Wstęp 1.2. Granica próbki ślepej 1.3. Granica wykrywalności 1.4. Granica oznaczalności 1.5. Czułość funkcjonalna 1.6. Liniowość 1.7. Odporność 1.8. Dokładność 1.9. Precyzja 2. Metody spektroskopowe Krystyna Sztefko 2.1. Wstęp 2.2. Promieniowanie elektromagnetyczne 2.3. Oddziaływanie promieniowania elektromagnetycznego z materią 2.4. Kryteria podziału metod spektroskopowych 2.4.1. Spektroskopia absorpcyjna UV-VIS 2.4.2. Absorpcja atomowa 2.4.3. Absorpcja cząsteczkowa 2.4.4. Chromofory 2.4.5. Emisja atomowa 2.4.6. Emisja cząsteczkowa 2.4.7. Spektroskopia UV-VIS w diagnostyce laboratoryjnej 2.5. Jądrowy rezonans magnetyczny 2.6. Metody spektroskopii absorpcyjnej 2.6.1. Metody spektrofotometryczne 2.6.2. Metody pomiaru światła w roztworach mętnych (turbidymetria i nefelometria) 2.6.3. Spektrometria atomowo-absorpcyjna 2.7. Metody spektroskopii emisyjnej 2.7.1. Fotometria płomieniowa 2.8. Spektroskopia luminescencji 2.9. Fluorescencja 2.9.1. Aparatura do pomiaru fluorescencji (spektrofluorymetry) 2.9.2. Problemy z pomiarem fluorescencji 2.9.3. Zastosowanie fluorymetrii w diagnostyce laboratoryjnej 2.10. Chemiluminescencja 2.10.1. Powstawanie chemiluminescencji 2.10.2. Aparatura do pomiaru chemiluminescencji 2.10.3. Zastosowanie chemiluminescencji w diagnostyce laboratoryjnej 2.11. Reflektometria 2.12. Podsumowanie 3. Metody elektrochemiczne - Krystyna Sztefko 3.1. Wstęp 3.2. Zasady metod elektrochemicznych

3.2.1. Potencjometria 3.2.2. Amperometria 3.2.3. Konduktometria 3.2.4. Kulometria 3.3. Elektrody stosowane w elektrochemii 3.3.1. Elektrody referencyjne (odniesienia, porównawcze) 3.3.2. Elektrody selektywne (wskaźnikowe, indykatorowe) 3.4. Elektrody selektywne dla cząsteczek 3.4.1. Elektroda do pomiaru ciśnienia parcjalnego dwutlenku węgla 3.4.2. Elektroda do pomiaru ciśnienia parcjalnego tlenu 3.4.3. Elektrody wykorzystujące proces biologicznego rozpoznawania 3.4.4. Biosensory DNA 3.4.5. Biosensory immunochemiczne 3.5. Podsumowanie 4. Metody elektroforetyczne - Maria Kapusta 4.1. Wstęp 4.2. Rodzaje nośników elektroforetycznych 4.2.1. Żele agarozowe 4.2.2. Żele poliakrylamidowe 4.3. Techniki stosowane do rozdziału, identyfikacji i oznaczania ilości białek 4.3.1. Elektroforeza w żelu poliakrylamidowym 4.3.2. Elektroforeza natywna 4.3.3. Ogniskowanie izoelektryczne 4.3.4. Elektroforeza dwukierunkowa 4.3.5. Elektrochromatografia 4.3.6. Elektroforeza kapilarna 4.4. Metody immunoelektroforetyczne 4.4.1. Immunoelektroforeza 4.4.2. Immunofiksacja 4.4.3. Immunoelektroforeza rakietowa według Laurella 4.4.4. Wykrywanie białek przy użyciu metody Western blot 4.5. Techniki barwienia 4.6. Ilościowa ocena rozdziałów elektroforetycznych 4.7. Zastosowanie metod elektroforetycznych w diagnostyce laboratoryjnej 4.7.1. Rozdział elektroforetyczny białek surowicy 4.7.2. Rozdział elektroforetyczny białek moczu 4.7.3. Rozdział elektroforetyczny białek płynu mózgowo-rdzeniowego 4.7.4. Rozdział elektroforetyczny kwasów nukleinowych 5. Metody chromatograficzne - Agnieszka Kondracka, Zbigniew Bartoszewicz 5.1. Zasada metod chromatograficznych 5.1.1. Przygotowanie próbek do rozdziału chromatograficznego 5.1.2. Ocena jakości rozdziału chromatograficznego 5.1.3. Aspekty ilościowe rozdziału chromatograficznego 5.2. Techniki pomiarowe i aparatura 5.2.1. Chromatografia gazowa 5.2.2. Kolumnowa chromatografia cieczowa 5.2.3. Chromatografia cienkowarstwowa 5.3. Przykłady zastosowania metod chromatograficznych w diagnostyce laboratoryjnej

5.3.1. Profil steroidów w moczu dobowym metodą chromatografii gazowej 5.3.2. Analiza składników powietrza wydychanego za pomocą chromatografii gazowej 5.3.3. Analiza składu kwasów mykolowych metodą HPLC 5.3.4. Badanie wariantów hemoglobiny i oznaczanie HbA 1c za pomocą analizatorów chromatograficznych 5.3.5. Oznaczanie amin biogennych z użyciem HPLC 6. Technika spektrometrii mas - Zbigniew Bartoszewicz, Agnieszka Kondracka, Dominik Domański 6.1. Zasada techniki spektrometrii mas 6.2. Techniki pomiarowe i aparatura 6.2.1. Typy analizatorów 6.2.2. Możliwości analizy związków w zależności od wybranej techniki spektrometrii mas 6.3. Przykłady zastosowania techniki spektrometrii mas w diagnostyce laboratoryjnej 6.3.1. Warunki wprowadzania techniki spektrometrii mas do rutynowych badań diagnostycznych 6.3.2. Zastosowania spektrometrii mas w endokrynologii 6.3.3. Wykrywanie wrodzonych wad metabolicznych 6.3.4. Zastosowania spektrometrii mas w mikrobiologii 6.3.5. Zastosowanie spektrometrii mas w monitorowaniu stężenia leków 6.3.6. Zastosowanie spektrometrii mas w toksykologii 6.3.7. Przyszłość spektrometrii mas w laboratorium diagnostycznym 7. Metody immunochemiczne - Krystyna Sztefko 7.1. Zasada metod immunochemicznych 7.2. Rodzaje metod immunochemicznych 7.2.1. Metody strąceniowe 7.2.2. Metody immunochemiczne ze znacznikiem 7.3. Standaryzacja i harmonizacja metod immunochemicznych 7.4. Techniki pomiarowe w metodach immunochemicznych 7.5. Zastosowanie metod immunochemicznych w diagnostyce laboratoryjnej 7.6. Przedanalityczne i analityczne czynniki interferujące w metodach immunochemicznych 7.6.1. Reakcje krzyżowe w metodach immunochemicznych 7.6.2. Białka wiążące jako źródło interferencji w metodach immunochemicznych 7.6.3. Nieimmunogenne kompleksy białek z IgG, autoprzeciwciała, przeciwciała heterofilowe i przeciwciała antyzwierzęce jako źródło interferencji w metodach immunochemicznych 7.7. Efekt niskiej dawki i efekt wysokiej dawki 7.8. Poszukiwanie i usuwanie interferujących przeciwciał 7.9. Uwaga końcowa 8. Metody analityczne w technologii suchej chemii - Krystyna Sztefko, Przemysław Tomasik 8.1. Wstęp 8.2. Techniki pomiarowe stosowane w suchej chemii 8.2.1. Odczyt wzrokowy 8.2.2. Reflektometria 8.2.3. Fluorymetria 8.2.4. Potencjometria 8.3. Wykorzystanie suchej chemii w diagnostyce laboratoryjnej

8.3.1. Testy paskowe do badania ogólnego moczu 8.3.2. System Vitros 8.3.3. Reflotron 8.3.4. Systemy HemoCue 8.3.5. Biosensory i immunosensory 8.3.6. Metody immunochromatograficzne bocznego przepływu 8.4. Zalety metod suchej chemii 9. Metody izotopowe - Krystyna Sztefko 9.1. Wstęp 9.2. Emitery promieniowania alfa, beta i gamma w diagnostyce laboratoryjnej 9.3. Prawo rozpadu promieniotwórczego 9.4. Aktywność preparatu promieniotwórczego i jej jednostki 9.5. Pomiar aktywności w laboratorium 9.6. Ochrona przed promieniowaniem 9.6.1. Dawka pochłonięta i dawka ekspozycyjna 9.7. Ochrona przed skutkami promieniowania 9.8. Rodzaje metod izotopowych 9.8.1. Analiza aktywacyjna 9.8.2. Metody radiometryczne 9.8.3. Rozcieńczania izotopowe 9.9. Izotopy w diagnostyce laboratoryjnej 9.9.1. Aparatura do pomiaru promieniowania 9.9.2. Pomiar izotopów stabilnych 9.9.3. Pomiar emiterów promieniowania beta 9.9.4. Pomiar emiterów promieniowania gamma 9.10. Zastosowanie metod izotopowych w diagnostyce laboratoryjnej 9.10.1. Metody immunochemiczne 9.10.2. Metody stosowane w genetyce i biologii molekularnej 9.10.3. Testy oddechowe 9.10.4. Ocena funkcji mózgu 9.10.5. Ocena utraty białka z przewodu pokarmowego 9.10.6. Metoda rozcieńczenia znacznika 9.10.7. Zastosowanie techniki spektrometrii mas połączonej z rozcieńczeniem izotopowym 10. Cytometria przepływowa - Łukasz Sędek, Bogdan Mazur 10.1. Wprowadzenie do techniki cytometrii przepływowej 10.1.1. Rozwój cytometrii przepływowej 10.1.2. Budowa cytometru przepływowego 10.1.3. Materiał do badań cytometrycznych 10.1.4. Zasada pomiaru cytometrycznego 10.1.5. Techniki barwienia materiału do analizy cytometrycznej 10.1.6. Podstawy zjawiska fluorescencji 10.1.7. Właściwości spektralne fluorochromów stosowanych w cytometrii przepływowej 10.1.8. Kontrola poprawności pracy cytometru 10.2. Zastosowania cytometrii przepływowej

10.2.1. Zastosowanie cytometrii przepływowej w immunologii i hematologii 10.2.2. Pozostałe zastosowania cytometrii przepływowej 10.3. Podsumowanie 11. Metody biologii i genetyki molekularnej - Marek Sanak 11.1. Wstęp 11.2. Kliniczne skutki mutacji 11.3. Rodzaje mutacji genetycznych 11.3.1. Mutacje punktowe 11.3.2. Mutacje wielonukleotydowe 11.4. Mutacje genomu mitochondrialnego 11.5. Metody wykrywania mutacji genowych 11.5.1. Materiał biologiczny do badania DNA 11.5.2. Techniki wykrywania mutacji genowych 11.6. Metody celowane wykrywania mutacji genowych 11.6.1. Klasyczne techniki hybrydyzacji DNA genomowego 11.6.2. Amplifikacja DNA genomowego techniką polimerazowej reakcji łańcuchowej 11.6.3. Badanie polimorfizmu restrykcyjnego produktów amplifikacji PCR 11.6.4. Badanie produktów amplifikacji PCR poprzez ich detekcję techniką hybrydyzacji 11.6.5. Inne celowane metody wykrywania mutacji genowej 11.6.6. Metody celowane wykrywania mutacji typu insercyjno-delecyjnego 11.6.7. Wykrywanie mutacji dynamicznych techniką PCR 11.7. Dostępność badań w genetycznej diagnostyce molekularnej 11.7.1. Metody molekularne w badaniach cytogenetycznych 12. Metody stosowane w badaniach hematologicznych - Bogdan Mazur 12.1. Historia badań hematologicznych 12.2. Materiał do badań hematologicznych 12.3. Metody badań hematologicznych 12.3.1. Metoda 3-diff 12.3.2. Metoda 5-diff 12.4. Wyniki badań hematologicznych 12.5. Standaryzacja 12.6. Automatyzacja w immunohematologii 13. Metody stosowane w badaniach hemostazy - Anna Raszeja-Specht, Jacek Golański 13.1. Wstęp 13.2. Materiał do badań układu hemostazy 13.3. Badania układu krzepnięcia metodami fizykochemicznymi 13.4. Oznaczanie liczby płytek krwi 13.5. Badanie reaktywności płytek krwi 13.5.1. Turbidymetryczny pomiar agregacji 13.5.2. Impedancyjny pomiar agregacji 13.5.3. Pomiar czasu okluzji 13.6. Badania z wykorzystaniem wiskozymetrycznych i/lub optycznych metod detekcji skrzepu 13.6.1. Czas protrombinowy (PT) 13.6.2. Czas częściowej tromboplastyny po aktywacji (APTT) 13.6.3. Fibrynogen (Fg)

13.6.4. Czas trombinowy (TT) 13.6.5. Czas reptylazowy (RT) lub czas ankrodowy 13.6.6. Czas ekarynowy (ECT) 13.6.7. Oznaczanie aktywności czynników VIII, IX i XI 13.6.8. Oznaczanie aktywności czynników VII, V, II i X 13.6.9. Wykrywanie oporności na aktywowane białko C (APC-R) 13.6.10. Wykrywanie przeciwciał antyfosfolipidowych: antykoagulantu tocznia (LA) i innych 13.7. Badania układu krzepnięcia metodami biochemicznymi z zastosowaniem substratów chromogennych 13.7.1. Oznaczanie aktywności antytrombiny (AT) 13.7.2. Oznaczanie aktywności białka C (PC) 13.7.3. Oznaczanie aktywności anty-xa 13.8. Badania układu krzepnięcia metodami immunochemicznymi 13.8.1. Oznaczanie stężenia dimeru D (DD) 13.8.2. Antygen czynnika von Willebranda (vwf:ag) 13.8.3. Wiązanie czynnika von Willebranda z kolagenem (vwf:cb) 13.8.4. Aktywność czynnika von Willebranda jako kofaktora rystocetyny (vwf:rco) 13.8.5. Oznaczanie stężenia całkowitego (PS) i wolnego (fps) białka S 13.8.6. Oznaczanie stężeń przeciwciał antykardiolipinowych (ACA) i przeciwciał przeciw ß 2 - glikoproteinie I (ß 2 -GPI) 13.8.7. Oznaczanie stężeń przeciwciał przeciw kompleksowi czynnik płytkowy 4-heparyna (anty-pf4/h) 13.9. Metody biologii molekularnej 13.10. Aparatura wykorzystywana w diagnostyce zaburzeń hemostazy 13.11. Analizatory POCT 13.12. Automatyzacja i integracja laboratoryjnej diagnostyki hemostazy 13.13. Kierunki rozwoju diagnostyki hemostazy 14. Metody stosowane w diagnostyce mikrobiologicznej - Elżbieta Stefaniuk 14.1. Wstęp 14.2. Hodowla drobnoustrojów 14.2.1. Hodowla bakterii i grzybów 14.2.2. Diagnostyka wirusologiczna oparta na hodowlach komórkowych 14.2.3. Systemy automatyczne do hodowli bakterii i grzybów z krwi i płynów z jam ciała 14.3. Metody mikroskopowe 14.4. Techniki barwienia 14.5. Identyfikacja drobnoustrojów 14.5.1. Klasyczne schematy identyfikacyjne drobnoustrojów 14.5.2. Automatyczne systemy do identyfikacji drobnoustrojów 14.5.3. Spektrometria mas 14.6. Metody serologiczne i immunochemiczne 14.7. Oznaczanie lekowrażliwości drobnoustrojów

14.6.1. Automatyczne systemy do identyfikacji i oznaczania lekowrażliwości drobnoustrojów 14.8. Metody biologii molekularnej 14.8.1. Molekularna diagnostyka zakażeń 14.8.2. Typowanie genetyczne dla celów epidemiologii 15. Laboratoryjny system informatyczny - Barbara Kopeć, Piotr Sitkowski 15.1. Wstęp 15.2. Funkcje laboratoryjnego systemu informatycznego 15.2.1. Moduł Rejestracja zleceń 15.2.2. Moduł Przyjęcie materiału do laboratorium 15.2.3. Moduł Komunikacja z analizatorami 15.2.4. Moduł Kontrola jakości 15.2.5. Moduł Autoryzacja wyniku badania 15.2.6. Moduły wspomagające zarządzanie laboratorium 15.3. Ochrona danych medycznych i osobowych pacjentów w laboratorium 15.4. Koszty informatyzacji 16. Automatyzacja w medycznym laboratorium diagnostycznym - Bogdan Solnica 16.1. Wstęp 16.2. Automatyczne analizatory laboratoryjne. Konsolidacja badań 16.3. Automatyzacja fazy pozaanalitycznej 16.4. Częściowa i całkowita automatyzacja laboratorium Skorowidz