BD BBL CHROMagar Salmonella

GOTOWE PODŁOŻA DIPSLIDE NA PŁYTKACH INSTRUKCJE STOSOWANIA PA-254104.08 Wer.: April 2013 BD BBL CHROMagar Salmonella Patent USA nr 5,098,832, 5,194,374 PRZEZNACZENIE BBL CHROMagar Salmonella jest selektywnym i różnicującym podłożem do izolacji i wstępnej identyfikacji gatunków Salmonella z klinicznych próbek kału. Podłoże BBL CHROMagar Salmonella zostało także zwalidowane przez AOAC Research Institute w ramach programu Performance Tested Methods SM wyłącznie do analizy próbek surowego mielonego mięsa wołowego, surowego mięsa kurcząt, ryb, sałaty i jaj w skorupkach. ISO, USDA FSIS i FDA BAM 1-3. Stwierdzono, że podłoże BBL CHROMagar Salmonella jest równoważne pożywkom posianym na płytki zalecanym w metodach ISO, FDA i USDA. ZASADY I OBJAŚNIENIE PROCEDURY Metoda mikrobiologiczna. Gatunki Salmonella występują powszechnie w populacjach zwierzęcych i z reguły izoluje się je z przewodu pokarmowego zwierząt i ludzi. Należą do najbardziej rozpowszechnionych drobnoustrojów związanych z chorobami pochodzenia pokarmowego i często przypisuje się im pochodzenie zwierzęce 4. Choroby wywoływane przez bakterie Salmonella kojarzono z produktami drobiowymi, wołowymi, czekoladowymi, nabiałem i warzywami 5. Podłoże BBL CHROMagar Salmonella jest przeznaczone do izolacji i różnicowania gatunków Salmonella. Dodane do podłoża substraty chromogeniczne ułatwiają różnicowanie gatunków Salmonella od innej flory bakteryjnej. Podłoże BBL CHROMagar Salmonella zostało pierwotnie opracowane przez A. Rambacha, CHROMagar, Paryż, Francja. Firma BD, na mocy umowy licencyjnej, zoptymalizowała tę formułę, korzystając z własnych zastrzeżonych rozwiązań używanych do wytwarzania gotowego podłoża na płytkach BBL CHROMagar Salmonella z zastosowaniem formuły odwodnionego podłoża hodowlanego Difco CHROMagar Salmonella. Źródłem składników odżywczych w podłożu BBL CHROMagar Salmonella są specjalnie dobrane peptony. Wzrost drobnoustrojów gram-dodatnich jest hamowany w wyniku zastosowania selektywnego podłoża podstawowego. Dodany środek przeciwgrzybiczy zapobiega wzrostowi gatunków Candida, zaś inne zastosowane środki przeciwbakteryjne hamują wzrost bakterii gram-ujemnych niefermentujących glukozy i gatunków Proteus, które mogłyby przerosnąć kolonie Salmonella. Podłoże zawiera mieszankę chromogenów. W wyniku zmian aktywności metabolicznej w obecności wybranych chromogenów kolonie gatunków Salmonella przybierają barwę fiołkowoczerwoną (od różowej do purpurowej), natomiast niepożądane bakterie albo nie wzrastają, albo tworzą kolonie niebieskozielone bądź bezbarwne. *PRZEDSTAWIONE PRZEZ PRODUCENTA PRÓBKI TEGO ZESTAWU TESTOWEGO ZOSTAŁY NIEZALEŻNIE PRZEBADANE PRZEZ INSTYTUT AOAC I W WYNIKU TYCH BADAŃ STWIERDZONO, ŻE DZIAŁAJĄ ONE ZGODNIE ZE SPECYFIKACJĄ PODANĄ PRZEZ PRODUCENTA W ULOTCE OPISOWEJ ZESTAWU TESTOWEGO. PRODUCENT ZAŚWIADCZA, ŻE TEN ZESTAW JEST POD KAŻDYM WZGLĘDEM ZGODNY ZE SPECYFIKACJĄ BADANĄ PRZEZ AOAC RESEARCH INSTITUTE OPISANĄ W ŚWIADECTWIE NUMER 020502 Z BADANIA METODĄ Performance Tested Methods sm. ODCZYNNIKI Skład** w przeliczeniu na litr oczyszczonej wody Chromopepton 22,0 g Mieszanka chromogenów 0,34 g Środki hamujące 0,02 g Agar 15,0 g PA-254104.08 Strona 1 z 8

ph 7,7 ± 0,2 **Skorygowany i/lub uzupełniony zgodnie z wymaganiami kryteriów działania. ŚRODKI OSTROŻNOŚCI. Wyłącznie do zastosowań profesjonalnych. W razie zaobserwowania nadmiernego zawilgocenia należy wysuszyć dolną powierzchnię płytki na powietrzu, aby nie dopuścić do powstawania warstwy wody między górną a dolną częścią płytki w trakcie inkubacji. Chronić przed światłem podczas suszenia. Zobacz WARUNKI I OKRES PRZECHOWYWANIA. Zaleca się, aby użytkownik posiał reprezentatywne szczepy spotykane często w praktyce danej placówki w celu zapoznania się z oczekiwanymi reakcjami chromogenicznymi (barwnymi) wywoływanymi przez gatunki Salmonella. Proponuje się następujące szczepy: Salmonella ser. Typhimurium, ATCC 14028; Salmonella ser. Dublin, ATCC 15480; Salmonella ser. Typhi, ATCC 19430; i Salmonella enterica podgat. arizonae, ATCC 12323. W próbkach mogą być obecne drobnoustroje patogenne, takie jak wirusy zapalenia wątroby i wirus HIV. Przy kontakcie z wszelkimi materiałami zanieczyszczonymi krwią lub innymi płynami ustrojowymi należy przestrzegać Uniwersalnych środków ostrożności 6-9 oraz zaleceń obowiązujących w danej instytucji. Szczegółowe informacje oraz procedury aseptycznej techniki pracy z produktem, zagrożenia biologiczne oraz usuwanie zużytego produktu opisano w dokumencie OGÓLNA INSTRUKCJA DOTYCZĄCA STOSOWANIA. PRZECHOWYWANIE I DOPUSZCZALNY OKRES PRZECHOWYWANIA Po otrzymaniu, płytki należy przechowywać w ciemnym miejscu w temperaturze od 2 do 8 C, w ich oryginalnym opakowaniu izolującym do chwili użycia. Unikać zamrażania i przegrzewania. Posiewu na płytki można dokonywać aż do daty ważności (patrz etykieta na opakowaniu) i inkubować w zalecanych czasach inkubacji. Płytek z otwartych stosów zawierających po 10 płytek można używać przez okres jednego tygodnia, przechowując w czystym miejscu w temperaturze od 2 do 8 C. Pogorszenie jakości produktu Nie należy używać płytek, jeżeli są na nich widoczne oznaki skażenia mikrobiologicznego, odbarwienia, wyschnięcia, pęknięcia lub inne zjawiska wskazujące na pogorszenie jakości. KONTROLA JAKOŚCI PRZEZ UŻYTKOWNIKA Obejrzeć płytki w poszukiwaniu oznak pogorszenia jakości, zgodnie z opisem w punkcie Pogorszenie jakości produktu. Sprawdzić zachowanie hodowli, wykonując na reprezentatywnych próbkach podłoża posiew czystych kultur stabilnych szczepów kontrolnych, dających znane, prawidłowe reakcje. Zalecane jest zastosowanie następujących szczepów kontrolnych: Szczepy bakteryjne Salmonella Typhimurium ATCC 14028 Salmonella Enteritidis ATCC 13076 Citrobacter freundii ATCC 8090 Escherichia coli ATCC 25922 Klebsiella pneumoniae ATCC 33495 Proteus mirabilis ATCC 43071 Enterococcus faecalis ATCC 29212 Wzrost Dobry lub bardzo dobry wzrost kolonii o barwie fiołkowoczerwonej (od różowej do purpurowej) Wzrost; kolonie fiołkowoczerwone (barwa od różowej do purpurowej) Dobry lub bardzo dobry wzrost kolonii o barwie od jasnoniebieskozielonej do niebieskozielonej Częściowe lub całkowite zahamowanie wzrostu; kolonie niebieskozielone Częściowe zahamowanie wzrostu; kolonie niebieskozielone Częściowe lub całkowite zahamowanie wzrostu Częściowe lub całkowite zahamowanie wzrostu; kolonie małe, niebieskozielone PA-254104.08 Strona 2 z 7

Staphylococcus aureus ATCC 25923 Wygląd podłoża bez posiewu Zahamowanie (częściowe lub całkowite) Bezbarwne do jasnobursztynowego, przejrzyste Uwaga: Należy postępować zgodnie z obowiązującymi wymogami kontroli jakości, wynikającymi z przepisów miejscowych, krajowych i (lub) federalnych, wymogami akredytacji i rutynowymi procedurami kontroli jakości w danym laboratorium. PROCEDURA Dostarczane materiały BBL CHROMagar Salmonella (płytki Stacker o śr. 90 mm). Sprawdzane pod względem obecności drobnoustrojów. Materiały wymagane, ale niedostarczane Pomocnicze podłoża hodowlane, odczynniki, drobnoustroje do kontroli jakości oraz sprzęt laboratoryjny wymagany do konkretnej procedury laboratoryjnej, np. ISO 7218, USDA FSIS MLG, FDA BAM lub procedury obowiązującej w laboratorium użytkownika. Pobieranie próbek Szczegółowe informacje na temat pobierania próbek i postępowania z nimi można znaleźć w stosownej literaturze 1-5. Typy próbek To podłoże może być używane z klinicznymi próbkami kału i różnymi próbkami pokarmów (surowa mielona wołowina, surowe mięso kurcząt, ryb, sałata i jaja w skorupkach). Procedura testowa Stosować techniki aseptyczne. Powierzchnia podłoża agarowego powinna być gładka i wilgotna, lecz bez nadmiernej wilgoci. Przed posiewem ogrzać podłoże do temperatury pokojowej. W przypadku próbek klinicznych: Po dostarczeniu próbki do laboratorium należy jak najszybciej wykonać posiew, rozprowadzając próbkę na płytce z podłożem BBL CHROMagar Salmonella. Jeżeli próbka jest hodowana bezpośrednio z wymazówki, należy delikatnie przetoczyć wymazówkę po niewielkiej powierzchni na krawędzi płytki, a następnie rozprowadzić materiał ezą z tego obszaru. Niekiedy obowiązujące lokalnie procedury nakładają wymóg wykonania posiewu na dodatkowym podłożu w celu izolacji gatunków Salmonella i detekcji innych patogenów jelitowych. Płytki inkubować w atmosferze tlenowej w temperaturze 35 ± 2 C w położeniu odwróconym (stroną agarową w górę) przez 24 h. Jeśli po 24 h wynik będzie ujemny, inkubować przez następnie 24 h w celu potwierdzenia ostatecznego wyniku. Po wystąpieniu zabarwienia kolonii ekspozycja podłoża BBL CHROMagar Salmonella na światło jest dopuszczalna. Typowe kolonie gatunków Salmonella powinny być poddane potwierdzającym testom biochemicznym lub serologicznym. Podłoże BBL CHROMagar Salmonella może być także wykorzystywane do wykonywania hodowli pochodnych z pożywki do namnażania, takiej jak Selenite Broth lub Tetrathionate Broth. W przypadku próbek pokarmów: Należy stosować metody przygotowania próbek opisane w dokumencie Microbiology Laboratory Guidebook: Isolation and Identification of Salmonella from Meat, Poultry, and Egg Products wydanym przez USDA FSIS, rozdziale dokumentu BAM agencji FDA dotyczącym gatunków Salmonella, zgodnie z wytycznymi ISO lub według procedury odpowiedniej dla typu próbki i położenia geograficznego. Posiać próbkę inkubowaną z pożywką do namnażania na płytce BBL CHROMagar Salmonella. Rozprowadzić do izolacji, inkubować płytki w atmosferze tlenowej w temperaturze 35 ± 2 C w położeniu odwróconym (stroną agarową w górę) przez 24 h. Jeśli po 24 h wynik będzie ujemny, inkubować przez następnie 24 h w celu potwierdzenia ostatecznego wyniku. Typowe kolonie gatunków Salmonella wzrastające na podłożu BBL CHROMagar Salmonella powinny być poddane testom potwierdzającym zgodnie z procedurami ISO, USDA FSIS i FDA BAM 1-3. Wyniki Po zakończeniu prawidłowej inkubacji przeprowadzić odczyt płytek względem białego tła. Salmonella Typhimurium i inne gatunki Salmonella będą widoczne jako kolonie o barwie od jasnej do intensywnej fiołkowoczerwonej, z wyjątkiem Salmonella enterica, podgat. arizonae, i PA-254104.08 Strona 3 z 7

innych gatunków Salmonella laktozododatnich i beta-glukozydazododatnich. Izolaty te będą widoczne jako kolonie niebieskofioletowe lub purpurowe. Citrobacter i inne pałeczki jelitowe będą widoczne jako kolonie o barwie od jasnoniebieskozielonej do niebieskozielonej. Niektóre drobnoustroje, które nie hydrolizują żadnego ze składników chromogenicznych, mogą być widoczne jako kolonie bezbarwne. CHARAKTERYSTYKA WYNIKÓW I OGRANICZENIA DOTYCZĄCE PROCEDURY BBL CHROMagar Salmonella jest selektywnym i różnicującym podłożem do izolacji i wstępnej identyfikacji gatunków Salmonella z klinicznych próbek kału i różnych próbek pokarmów. Oczekiwane wyniki Gatunki Salmonella będą widoczne na tym podłożu jako kolonie o barwie od jasnej do intensywnej fiołkowoczerwonej (= od różowej do purpurowej), z wyjątkiem gatunków Salmonella laktozododatnich i beta-glukozydazododatnich. Izolaty te będą widoczne jako kolonie niebieskofioletowe lub purpurowe. Wymienione niżej drobnoustroje zostały wyizolowane na podłożu BBL CHROMagar Salmonella podczas wewnętrznych i zewnętrznych testów na próbkach klinicznych i przemysłowych: Salmonella 8, (20):-:26 Salmonella ser. Javiana Salmonella enterica subsp. arizonae Salmonella ser. Johannesburg Salmonella enterica subsp. diarizonae Salmonella ser. Kentucky Salmonella ser. Abony Salmonella ser. London Salmonella ser. Adelaide Salmonella ser. Mbandaka Salmonella ser. Agona Salmonella ser. Michigan Salmonella ser. Anatum Salmonella ser. Minnesota Salmonella ser. Bareilly Salmonella ser. Montevideo Salmonella ser. Berta Salmonella ser. Muenster Salmonella ser. Brandenburg Salmonella ser. Newport Salmonella ser. California Salmonella ser. Oranienburg Salmonella ser. Cerro Salmonella ser. Panama Salmonella ser. Choleraesuis Salmonella ser. Paratyphi A Salmonella ser. Cubana Salmonella ser. Paratyphi B Salmonella ser. Derby Salmonella ser. Pomona Salmonella ser. DT 104 Salmonella ser. Poona Salmonella ser. Dublin Salmonella ser. Potsdam Salmonella ser. Enteritidis Salmonella ser. Pullorum Salmonella ser. Essen Salmonella ser. Rubislaw Salmonella ser. Gallinarum Salmonella ser. Schwarzengrund Salmonella ser. Gaminara Salmonella ser. Senftenberg Salmonella ser. Hadar Salmonella ser. St. Paul Salmonella ser. Hartford Salmonella ser. Thompson Salmonella ser. Heidelberg Salmonella ser. Typhi Salmonella ser. Illinois Salmonella ser. Typhimurium Salmonella ser. Infantis Salmonella ser. Typhimurium (laktozododatni) Salmonella ser. Iverness Salmonella ser. Weltevreden Charakterystyka wydajnościowa 10 Badanie próbek klinicznych: Podłoże BBL CHROMagar Salmonella było testowane w dużym laboratorium diagnostycznym. Na podłożu BBL CHROMagar Salmonella przetestowano łącznie 150 próbek kału o znanym wcześniej wyniku ujemnym i 110 próbek kału o znanym wcześniej wyniku dodatnim. Zachowanie testowanego podłoża porównywano z podłożami XLD i Hektoen Enteric. Czułość i swoistość podłoża BBL CHROMagar Salmonella po 18 24 h inkubacji wyniosły odpowiednio 76 % i 99 %, a po 48 h inkubacji wyniosły odpowiednio 90 % i 94 %. Czułość i swoistość wzrosły odpowiednio do 99 % i 97 %, gdy użyto hodowli pochodnej na pożywce Selenite F. Na podłożach porównawczych uzyskano następującą czułość i swoistość: dla XLD odpowiednio 71 % i 97 % po 18 24 h inkubacji oraz 78 % i 95 % po 48 h inkubacji; dla podłoża Hektoen Enteric odpowiednio 71 % i 94 % po 18 24 h oraz 79 % i 93 % po 48 h inkubacji. PA-254104.08 Strona 4 z 7

Badanie żywności: Metody USDA i FDA Podłoże BBL CHROMagar Salmonella testowano w laboratoriach wewnętrznych i atestowanych przez AOAC laboratoriach zewnętrznych pod kątem odzysku gatunków Salmonella z surowego mięsa kurcząt, surowej mielonej wołowiny, surowej ryby, sałaty i jaj w skorupkach. Surowe mięso kurcząt i mieloną wołowinę poddano obróbce zgodnie z metodami referencyjnymi USDA FSIS. Surową rybę, sałatę i jaja w skorupkach poddano obróbce zgodnie z procedurami FDA BAM. Podłoże BBL CHROMagar Salmonella porównywano z podłożami używanymi w metodach referencyjnych pod kątem selektywnego odzysku gatunków Salmonella. Uzyskano w sumie 16 hodowli dodatnich z próbek surowego mięsa kurcząt, 17 z surowej mielonej wołowiny, 18 z surowej ryby i sałaty i 11 z jaj w skorupkach. Na podłożu BBL CHROMagar Salmonella uzyskano wyniki we wszystkich macierzach porównywalne z metodami referencyjnymi, stąd zgodność metod wyniosła 100 %. Metodą referencyjną USDA FSIS przetestowano dwadzieścia próbek surowego mięsa kurcząt z dodatkiem inokulum o znanym stężeniu. Do mięsa kurcząt przeniesiono rozcieńczone inokulum (8 CFU/25 g) i stężone inokulum (50 CFU/25 g próbki). Na podłożu BBL CHROMagar Salmonella odzyskano po 100 % (20/20) hodowli Salmonella z rozcieńczonego i stężonego inokulum. Przy stężeniach inokulum mniejszych niż 1 CFU/25 g odzysk był częściowy. Badano naturalnie skażone mięso kurcząt. Odzysk drobnoustrojów Salmonella wynosił 100 %, a wskaźnik MPN /g (Most Probable Number liczba najbardziej prawdopodobna) wynosił 0,23. W pożywce Lactose Broth przez 24 h prowadzono hodowle stu osiemnastu (118) izolatów Salmonella pochodzących z żywności, obejmujących różne serotypy, a następnie przez 24 h prowadzono hodowle pochodne na pożywce Tetrathionate Broth. Hodowle pochodne z pożywek Tetrathionate Broth posiano na podłoże BBL CHROMagar Salmonella i inkubowano w temperaturze 35 C. Jeśli po 24 h nie pojawiły się fiołkowoczerwone kolonie, płytki inkubowano przez kolejne 24 h. Na podłożu BBL CHROMagar Salmonella odzyskano 111 izolatów. Wzrost czterech szczepów hamowała odżywka Tetrathionate Broth szczepy te nie zostały odzyskane ani na podłożu BBL CHROMagar Salmonella, ani na nieselektywnej płytce kontrolnej. Pozostałe izolaty należące do tych samych serotypów, co cztery szczepy ujemne, rozwinęły się w typowe kolonie, a zatem reakcja dodatnia była swoista dla szczepów, a nie serotypów. Ogólna czułość podłoża BBL CHROMagar Salmonella wyniosła 94 % (111 z 118 izolatów). Przez 24 h w temperaturze 35 C prowadzono hodowle sześćdziesięciu pięciu (65) izolatów drobnoustrojów innych niż Salmonella, a następnie przez kolejne 24 h w temperaturze 35 C prowadzono ich hodowle pochodne na podłożu BBL CHROMagar Salmonella. Płytki ujemne inkubowano łącznie przez 48 godzin. W sześćdziesięciu jeden (61) spośród 65 izolatów na podłożu BBL CHROMagar Salmonella nie wystąpiło fiołkowoczerwone zabarwienie, a zatem swoistość wyniosła 94 %. Cztery szczepy nienależące do gatunku Salmonella, które wykazały fiołkowoczerwone zabarwienie, inokulowano na pożywkę Tetrathionate Broth (zalecana pożywka do namnażania w metodach USDA i FDA). Po 24-godzinnej inkubacji hodowle na pożywkach Tetrathionate Broth przeniesiono na podłoże BBL CHROMagar Salmonella. Po 48-godzinnej inkubacji jeden szczep rozwinął się w fiołkowoczerwone kolonie, a wzrost trzech szczepów został zahamowany. Po uwzględnieniu namnażania na pożywce Tetrathionate Broth ogólna swoistość podłoża BBL CHROMagar Salmonella wynosiła w tym badaniu 98 %. Metoda ISO Podłoże BBL CHROMagar Salmonella porównywano z podłożami stosowanymi w metodzie referencyjnej pod kątem selektywnego odzysku gatunków Salmonella w surowym mięsie kurcząt, surowej mielonej wołowinie, surowej rybie, sałacie i jajach w skorupkach. Wszystkie macierze przetwarzano zgodnie z metodą hodowli ISO. Uzyskano w sumie 16 hodowli dodatnich z próbek surowego mięsa kurcząt, 17 z surowej mielonej wołowiny, 9 z surowej ryby, 19 z sałaty i z jaj w skorupkach. Na podłożu BBL CHROMagar Salmonella uzyskano PA-254104.08 Strona 5 z 7

wyniki we wszystkich macierzach porównywalne z metodami referencyjnymi, stąd zgodność metod wyniosła 100 %. Do dwudziestu (20) próbek surowej mielonej wołowiny, surowej ryby, sałaty i jaj w skorupkach dodano rozcieńczone inokulum ze szczepów Salmonella i przeanalizowano według procedury hodowli ISO. Według procedury hodowli ISO przeanalizowano również dwadzieścia (20) próbek naturalnie skażonego surowego mięsa kurcząt. Do zestawu podłoży referencyjnych dla każdej testowanej macierzy dodano podłoże BBL CHROMagar Salmonella. Zgodność metod między podłożem BBL CHROMagar Salmonella a innymi testowanymi podłożami referencyjnymi wyniosła 100 %. Stężenie rozcieńczonego inokulum wynosiło od 0,0036 do 0,23 MPN/g. Przez 18 godzin w buforowanej wodzie z peptonem prowadzono hodowlę stu dwudziestu siedmiu (127) izolatów szczepów Salmonella pochodzących z żywności, a następnie przez 24 h prowadzono hodowlę pochodną na podłożu Rappaport-Vassiliades z soją (RVS). Hodowle pochodne z pożywek RVS posiano na podłoże BBL CHROMagar Salmonella i przez 24 h inkubowano w temperaturze 35 C. Jeśli po 24 h nie pojawiły się fiołkowoczerwone kolonie, płytki inkubowano przez kolejne 24 h. Na podłożu BBL CHROMagar Salmonella odzyskano 123 izolaty. 4 szczepy, które nie wzrosły na podłożu BBL CHROMagar Salmonella, słabo wzrastały na nieselektywnym podłożu kontrolnym. Ogólna czułość podłoża BBL CHROMagar Salmonella wyniosła 96,8 % (123 ze 127 izolatów). Ograniczenia procedury Niekiedy wzrost szczepów Aeromonas hydrophila, Hafnia alvei, Pseudomonas aeruginosa, P. putida, Stenotrophomonas maltophilia, Acinobacter lub Candida może nie zostać całkowicie zahamowany, a ich kolonie mogą wykazywać zabarwienie od jasnego do intensywnego fiołkowoczerwonego. Wyniki testów potwierdzających, w których wskaźnikiem reakcji barwnej jest kolor fiołkowoczerwony lub purpurowy, mogą być trudne do zinterpretowania z uwagi na barwę kolonii. Rzadko występujące szczepy następujących drobnoustrojów: S. Typhi, S. Paratyphi A, S. Typhimurium, S. Choleraesuis, S. Minnesota, S. enterica podg. arizonae i S. Pullorum mogą na tym podłożu nie wzrastać lub słabo wzrastać. Ograniczenie to jest swoiste dla konkretnych szczepów i większość testowanych szczepów tych drobnoustrojów udawało się odzyskiwać. Podłoże BBL CHROMagar Salmonella nie jest przeznaczone do izolowania patogenów jelitowych innych niż Salmonella. W przypadku niektórych próbek może wystąpić purpurowe odbarwienie podłoża, któremu nie będzie towarzyszyć wykrywalny wzrost kolonii. Sytuację taką należy interpretować jako wynik ujemny. Ograniczać kontakt podłoża BBL CHROMagar Salmonella ze światłem przed oraz w czasie inkubacji, ponieważ światło może zniszczyć układ chromogenów. Przechowywać płytki w opakowaniu oryginalnym oraz w pudełku kartonowym przez cały okres przechowywania. Nie zaleca się inkubacji w CO 2. PIŚMIENNICTWO 1. Rose, Bonnie E. 2001. Isolation and identification of Salmonella from meat, poultry and egg products. In: Microbiology laboratory guidebook, 3 rd ed., Food Safety and Inspection Service, U.S. Department of Agriculture, Washington, D.C. 2. U.S. Food and Drug Administration. 2003. Bacteriological analytical manual (online), AOAC International, Gaithersburg, MD. 3. International Organization for Standards (ISO). Microbiology of food and animal feeding stuffs - Horizontal method for the detection of Salmonella spp., 4 th Edition, ISO 6579:2002. PA-254104.08 Strona 6 z 7

4. Bopp, Brenner, Fields, Wells and Strockbine. 2003. Escherichia, Shigella, and Salmonella. In Murray, Baron, Jorgensen, Pfaller, and Yolken (ed.), Manual of clinical microbiology, 8 th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 5. D Aoust, Mauer and Bailey. 2001. Salmonella species. In: Doyle, Beuchat and Montville (ed.), Food microbiology: fundamentals and frontiers, 2 nd ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C. 6. National Committee for Clinical Laboratory Standards. 2001. Approved Guideline M29-A2. Protection of laboratory workers from occupationally acquired infections, 2 nd ed. NCCLS, Wayne, Pa. 7. Garner, J.S. 1996. Hospital Infection Control Practices Advisory Committee, U.S. Department of Health and Human Services, Centers for Disease Control and Prevention. Guideline for isolation precautions in hospitals. Infect. Control Hospital Epidemiol. 17:53-80. 8. U.S. Department of Health and Human Services. 1999. Biosafety in microbiological and biomedical laboratories, HHS Publication (CDC), 4 th ed. U.S. Government Printing Office, Washington, D.C. 9. Directive 2000/54/EC of the European Parliament and of the Council of 18 September 2000 on the protection of workers from risks related to exposure to biological agents at work (seventh individual directive within the meaning of Article 16(1) of Directive 89/391/EEC). Official Journal L262, 17/10/2000, p. 0021-0045. 10. Dane w archiwum BD Diagnostic Systems. PAKOWANIE / DOSTĘPNOŚĆ BBL CHROMagar Salmonella REF 254104 Gotowe podłoża na płytkach hodowlanych, po 20 sztuk DODATKOWE INFORMACJE W celu uzyskania dodatkowych informacji należy skontaktować się z lokalnym przedstawicielem firmy BD. Becton Dickinson GmbH Tullastrasse 8 12 D-69126 Heidelberg/Germany Phone: +49-62 21-30 50 Fax: +49-62 21-30 52 16 Reception_Germany@europe.bd.com http://www.bd.com http://www.bd.com/europe/regulatory/ AOAC is a trademark and Performance Tested is a service mark of AOAC International. CHROMagar is a trademark of Dr. A. Rambach. Difco is a trademark of Difco Laboratories, subsidiary of Becton, Dickinson and Company. ATCC is a trademark of the American Type Culture Collection BD, BD Logo and all other trademarks are property of Becton, Dickinson and Company. 2013 BD PA-254104.08 Strona 7 z 7