Polarymetryczne oznaczanie stężenia i skręcalności właściwej substancji optycznie czynnych



Podobne dokumenty
Badanie kinetyki inwersji sacharozy

KINETYKA INWERSJI SACHAROZY

Ćwiczenie Nr 6 Skręcenie płaszczyzny polaryzacji

Ćwiczenie 74. Zagadnienia kontrolne. 2. Sposoby otrzymywania światła spolaryzowanego liniowo. Inne rodzaje polaryzacji fali świetlnej.

Kinetyka reakcji hydrolizy sacharozy katalizowanej przez inwertazę

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

Polarymetr służy do pomiaru skręcenia płaszczyzny polaryzacji światła w substancjach

Skręcenie płaszczyzny polaryzacji światła w cieczach (PF13)

Badanie właściwości optycznych roztworów.

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

Pomiar kąta skręcenia polaryzacji światła oraz skręcalności właściwej roztworów sacharozy I. Wstęp, zastosowania metody w medycynie

TRANSPORT NIEELEKTROLITÓW PRZEZ BŁONY WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PRZEPUSZCZALNOŚCI

BADANIE WYMUSZONEJ AKTYWNOŚCI OPTYCZNEJ. Instrukcja wykonawcza

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Skręcenie wektora polaryzacji w ośrodku optycznie czynnym

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

Wyznaczanie skręcalności właściwej i stężenia roztworu cukru za pomocą polarymetru półcieniowego. Temat: Zad. E02 1. ZAGADNIENIA 2.

Analiza spektralna i pomiary spektrofotometryczne

Wyznaczanie stałej dysocjacji pk a słabego kwasu metodą konduktometryczną CZĘŚĆ DOŚWIADCZALNA. Tabela wyników pomiaru

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

Ćwiczenie 9 Wyznaczanie skręcalności właściwej sacharozy, glukozy i fruktozy (zjawisko inwersji)

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

EFEKT FOTOELEKTRYCZNY ZEWNĘTRZNY

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNYCH Wyznaczenie stałej Michaelisa i maksymalnej szybkości reakcji hydrolizy sacharozy katalizowanej przez inwertazę.

Ćwiczenie 4. Identyfikacja wybranych cukrów w oparciu o niektóre reakcje charakterystyczne

Ćwiczenie Nr 8 Współczynnik załamania refraktometr Abbego

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

OCENA CZYSTOŚCI WODY NA PODSTAWIE POMIARÓW PRZEWODNICTWA. OZNACZANIE STĘŻENIA WODOROTLENKU SODU METODĄ MIARECZKOWANIA KONDUKTOMETRYCZNEGO

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

Ćw. nr 1. Wyznaczenie przyspieszenia ziemskiego za pomocą wahadła prostego

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

ANALIZA SPEKTRALNA I POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE. Instrukcja wykonawcza

ĆWICZENIE 41 POMIARY PRZY UŻYCIU GONIOMETRU KOŁOWEGO. Wprowadzenie teoretyczne

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

Laboratorium Inżynierii Bioreaktorów

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Laboratorium Podstaw Biofizyki

3. Badanie kinetyki enzymów

ANALIZA INSTRUMENTALNA

PRZEWODNOŚĆ ROZTWORÓW ELEKTROLITÓW

ĆWICZENIE 3 CIEPŁO ROZPUSZCZANIA I NEUTRALIZACJI

1. Obsługa polarymetru i odczytanie kąta skręcenia rozpuszczalnika

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

LABORATORIUM TERMODYNAMIKI ĆWICZENIE NR 3 L3-1

Polarymetr. Ćwiczenie 74. Cel ćwiczenia Pomiar kąta skręcenia płaszczyzny polaryzacji w roztworach cukru. Wprowadzenie

Wyznaczanie przyspieszenia ziemskiego za pomocą wahadła prostego

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

Teoria błędów. Wszystkie wartości wielkości fizycznych obarczone są pewnym błędem.

Laboratorium 5. Wpływ temperatury na aktywność enzymów. Inaktywacja termiczna

A4.05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Laboratorium Biofizyczne semestr zimowy 2015/2016

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

ĆWICZENIE NR 3 POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE

Ćwiczenie 425. Wyznaczanie ciepła właściwego ciał stałych. Woda. Ciało stałe Masa kalorymetru z ciałem stałym m 2 Masa ciała stałego m 0

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

EFEKT FOTOWOLTAICZNY OGNIWO SŁONECZNE

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

K02 Instrukcja wykonania ćwiczenia

WYKAZ NAJWAŻNIEJSZYCH SYMBOLI

LABORATORIUM Z PODSTAW BIOFIZYKI ĆWICZENIE NR 4 1. CEL ĆWICZENIA

POLITECHNIKA BIAŁOSTOCKA

WYZNACZANIE PRACY WYJŚCIA ELEKTRONÓW Z LAMPY KATODOWEJ

BADANIE PROSTEGO ZJAWISKA PIEZOELEKTRYCZNEGO POMIAR NAPRĘŻEŃ

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

A4.04 Instrukcja wykonania ćwiczenia

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Badanie kinetyki katalitycznego rozkładu H 2 O 2

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Izoterma rozpuszczalności w układzie trójskładnikowym

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

dla której jest spełniony warunek równowagi: [H + ] [X ] / [HX] = K

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Szybkość reakcji chemicznej jest proporcjonalna do iloczynu stężeń. reagentów w danej chwili. n A + m B +... p C + r D +... v = k1 CA n CB m...

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

WYZNACZANIE ZAWARTOŚCI POTASU

Nazwisko i imię: Zespół: Data: Ćwiczenie nr 121: Termometr oporowy i termopara

Kinetyka chemiczna jest działem fizykochemii zajmującym się szybkością i mechanizmem reakcji chemicznych w różnych warunkach. a RT.

II PRACOWNIA FIZYCZNA część Pracownia Jądrowa. Ćwiczenie nr 6

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

Wyznaczanie krzywej ładowania kondensatora

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

Transkrypt:

Polarymetryczne oznaczanie stężenia i skręcalności właściwej substancji optycznie czynnych Część podstawowa: Zagadnienia teoretyczne: polarymetria, zjawisko polaryzacji, skręcenie płaszczyzny drgań, skręcalność właściwa, związki chiralne, cukier inwertowany, polarymetr i zasada jego działania Cele ćwiczenia: 1. Wyznaczanie skręcalności właściwej glukozy, fruktozy i sacharozy. 2. Wyznaczanie stężenia nieznanego roztworu. 3. Wyznaczanie skręcalności optycznej cukru inwertowanego. Czas trwania części podstawowej ćwiczenia: 2 x 3 godziny lekcyjne. Część rozszerzona: Zagadnienia teoretyczne: hydroliza sacharozy, stała inwersji, zjawisko mutarotacji, a także zagadnienia z części podstawowej Cele ćwiczenia: 1. Badanie wpływu katalizatorów na proces hydrolizy sacharozy. 2. Wyznaczanie stałej inwersji sacharozy oraz czasu połowiczego rozpadu jej cząstek. 3. Badanie wpływu katalizatorów na szybkość zachodzenia mutarotacji cząsteczek glukozy. Czas trwania części podstawowej ćwiczenia: 2 x 3 godziny lekcyjne.

Schemat układu pomiarowego: Rysunek 1. Schemat blokowy polarymetru półautomatycznego POLAMAT A: 1 - lampa sodowa; 2 - filtr barwny o krawędzi pasma absorpcyjnego 546 nm; 3 - polaryzator; 4 - tarcza modulatora; 5 - silnik modulatora; 6 - badana próbka; 7 - żarówka oświetlająca skalę; 8 - analizator; 9 - tarcza kołowa z podziałką; 10 - filtr interferencyjny; 11 - okienko projekcyjne ze skalą; 12 - fotoelektronowy powielacz; 13 - wzmacniacz napięcia zmiennego; 14 - serwomotor; 15 - zespół mechanizmów do przełożenia na większe obroty wałka napędowego; 16 - zespól mechanizmów do biegu wolnego; 17 - sprzęgło elektromagnetyczne; 18 - automatyczny przełącznik; 19 - sprzęgło elektromagnetyczne dla biegu wolnego; 20 - przyrząd ze wzmacniaczem napięcia stałego; 21 - mechanizm ślimacznicy; [7] Część podstawowa 1. Wyznaczanie skręcalności właściwej glukozy, fruktozy i sacharozy. 2. Wyznaczanie stężenia nieznanego roztworu. Odczynniki: glukoza, fruktoza, sacharoza lub cukier spożywczy, woda destylowana. Aparatura: polarymetr półautomatyczny POLAMAT A, waga cyfrowa, pipeta ręczna lub strzykawka.

Część praktyczna: 1. W probówkach przygotować po 7 roztworów glukozy, fruktozy i sacharozy o stężeniach: 1, 2, 4, 6, 8 i 10% oraz jeden roztwór o stężeniu nieznanym. Do przygotowania roztworów przyjąć stałą ilość rozpuszczalnika (wody destylowanej) równą 25 ml, a ilość potrzebnej substancji odważyć z wykorzystaniem wagi cyfrowej. Uwagi: Roztwory glukozy i fruktozy posłużą na wyznaczania skręcalności właściwej cukru inwertowanego nie należy więc ich wylewać. Stopień skręcenia polaryzacji substancji czynnej optycznie silnie zależy od stężenia, temperatury i długości fali światła analizującego. Należy pamiętać o tym w szczególności wtedy, gdy do całkowitego rozpuszczenia substancji w rozpuszczalniku konieczne będzie ogrzanie próbki. W takim wypadku konieczne jest wystudzenie próbki do temperatury otoczenia. Ze względu na zjawisko mutarotacji poszczególnych anomerów glukozy i fruktozy konieczne jest przygotowanie odpowiednich roztworów na pierwszych zajęciach i badanie ich dopiero na zajęciach kolejnych. Wyjątek stanowi tu sacharoza, która nie ulega mutarotacji. 2. W celu ustabilizowania pracy polarymetru należy go uruchomić na co najmniej 15 minut przed rozpoczęciem pomiarów. Wszystkich pomiarów dokonujemy z roboczą długością fali 546,1nm. 3. Przy pomocy pipety lub strzykawki kolejno napełnić rurki polarymetryczne o długości 5 cm przygotowanymi roztworami. Należy zwrócić uwagę na obecność ewentualnych pęcherzyków powierza w rurce polarymetrycznej, które należy usunąć poprzez dodatkowe wtłoczenie roztworu pipetą lub strzykawką. 4. Przygotowane roztwory umieścić w komorze polarymetru i odczytać wartość skręcenia kąta polaryzacji. Dla każdej próbki dokonać 2-3 pomiary poprzez wyjęcie i ponowne włożenie rurki polarymetrycznej do komory. Następnie wyniki uśrednić. 5. Odczytać z termometru znajdującego się w komorze polarymetru temperaturę pomiaru.

6. Na podstawie uzyskanych wyników korzystając ze wzoru (1) wyznaczyć skręcalność właściwą wymienionych wcześniej substancji i na jej podstawie określić stężenia 3 nieznanych prób. 7. Wykorzystując zmierzone wartości kątów skręcenia analizowanych roztworów sporządzić wykresy zależności 100 zmierzone (d*c). Metodą regresji liniowej wyznaczyć wartość współczynnika kierunkowego prostej y = ax + b, gdzie a = właściwa oraz jej niepewność pomiarową Sa. Uzyskane wyniki przedstawić w formie tabeli, porównać wyniki eksperymentalne z wartościami tablicowymi, przeprowadzić rachunek błędów pomiarowych. 3. Wyznaczanie skręcalności optycznej cukru inwertowanego Pomiary skręcenia polaryzacji cukru inwertowanego wykonujemy dwoma metodami z użyciem uprzednio przygotowanych roztworów glukozy i fruktozy. I Metoda - W pierwszej metodzie roztwory glukozy i fruktozy o tych samych stężeniach umieścić w rurkach polarymetrycznych o długości 5cm. Następnie obie próbki ułożone szeregowo jedna za drugą umieścić w komorze polarymetru oraz odczytać wartość skręcenia kąta polaryzacji. II Metoda - W drugiej metodzie wykorzystać mieszaninę obu substancji. Należy zatem w równych proporcjach wymieszać roztwory o tych samych stężeniach i zmierzyć wartość skręcenia uzyskanej mieszaniny. Pomiarów takich dokonać dla dostępnych stężeń. Analogicznie do wcześniejszego postępowania wyznaczyć skręcalność właściwą cukru inwertowanego dla danego stężenia oraz średnią wartość skręcalności właściwej metodą regresji liniowej. Następnie porównać wyniki uzyskane obiema metodami z wartością tablicową oraz przeprowadzić rachunek błędów.

Część rozszerzona 1. Badanie wpływu katalizatorów na proces hydrolizy sacharozy. 2. Wyznaczanie stałej inwersji sacharozy oraz czasu połowiczego rozpadu jej cząstek. Odczynniki: sacharoza lub cukier spożywczy, stężony kwas solny, woda destylowana. Aparatura: waga cyfrowa, probówki, pipeta ręczna, strzykawka, polarymetr półautomatyczny POLAMAT A, termostatowalna łaźnia wodna Uwaga! Kwas solny proszę rozcieńczać tylko i wyłącznie w obecności prowadzącego zajęcia. Część praktyczna: Badanie sacharozy: 1. Przygotować 10-procentowy roztwór sacharozy. Do przygotowania użyć stałą ilość wody destylowanej równą 25 ml, a ilość substancji odmierzyć przy pomocy wagi cyfrowej. 2. Zmierzyć kąt skręcenia polaryzacji przygotowanego roztworu. 3. Przygotować dwa roztwory kwasu solnego: 1M i 2M. 4. Następnie w dwóch osobnych probówkach przygotować roztwory: sacharoza 10% + kwas solny 1M oraz sacharoza 10% + kwas solny 2M. Sacharozę z kwasem solnym mieszamy w proporcji 1:1. 5. Ze względu na szybkie tempo zachodzenia hydrolizy pod wpływem katalizatorów po wykonaniu roztworów jak najszybciej należy umieścić je w rurkach polarymetrycznych unikając w środku pęcherzyków powietrza oraz badane próby przenieść do komory polarymetru. 6. Rozpocząć odczyt kąta ich skręcenia w równych odstępach czasu. Na początek odczyt skręcenia kąta polaryzacji dokonywać co 1 minutę (przez okres 5 minut), następnie co 5 minut, należy również pamiętać o odczycie temperatury początkowej. Doświadczenie wykonywać przez około 60 minut.

7. Przygotować nowe roztwory: sacharoza 10% + 1M HCl oraz sacharoza 10% + 2M HCl wymieszane w proporcji 1:1. Tym razem dodatkowym katalizatorem będzie jeszcze wyższa temperatura, którą przy pomocy łaźni wodnej trzeba ustawić na termostacie na wartość 40 C. Dopiero w tych warunkach zaczynamy mierzyć kąty skręcenia płaszczyzny nowo przyrządzonych roztworów osobno w równych odstępach czasu, najpierw co 1 minutę (przez okres 5 minut), następnie co 5 minut. Doświadczenie wykonujemy przez około 60 minut. 8. Końcową wartość kąta skręcenia płaszczyzny polaryzacji po zakończeniu hydrolizy dla czterech roztworów odczytać po 24h. 9. Uzyskane wyniki przedstawić w formie wykresu zależności zmierzonego kąta skręcenia płaszczyzny polaryzacji w funkcji czasu. 10. Wyznaczyć równania prostych dopasowanych do punktów pomiarowych uzyskanych w fazie hydrolizy sacharozy bez i z udziałem aktywnego grzania oraz narysować proste na jednym wykresie. 11. Korzystając z równania kinetycznego wyznaczyć wartość stałej inwersji k. Wyniki przedstawić w formie tabeli. Za α 0 przyjąć wartość pierwszego pomiaru odczytanego po umieszczeniu próbki w komorze polarymetru. 12. Narysować zależność ln (α t α )/(α 0 α ) w funkcji czasu. Na wykresie wydzielić serie danych odpowiadających za proces przeprowadzony z udziałem i bez grzania. Metodą regresji liniowej wyznaczyć i narysować proste typu y = a*x + b dopasowane do tych serii danych. Wartość parametru a oraz jej niepewność S a określają odpowiednio stała inwersji k i wartość jej odchylenia. 13. Na podstawie uzyskanych wyników określić czas połowiczego rozpadu cząsteczek sacharozy. 14. Przeprowadzić dyskusję wyników i ocenić przyczyny zmian stałej inwersji korzystając z wykresu k(t). 3. Badanie wpływu katalizatorów na szybkość zachodzenia mutarotacji cząsteczek glukozy. Odczynniki: glukoza, stężony kwas solny, woda destylowana.

Aparatura: waga cyfrowa, probówki, pipeta ręczna, strzykawka, polarymetr półautomatyczny POLAMAT A Część praktyczna: Badanie glukozy: 1. Przygotować dwa roztwory glukozy 3% i 6%. Użyć stałą ilość wody destylowanej równą 25ml natomiast ilość potrzebnej substancji odważyć przy użyciu wagi cyfrowej. 2. Przygotować dwa roztwory kwasu solnego: 0,5M oraz 1M. 3. Następnie w dwóch osobnych probówkach przygotować roztwory: glukoza 6% + kwas solny 0,5M oraz glukoza 6% + kwas solny 1M. Glukozę z kwasem solnym mieszamy w proporcji 1:1. 4. Jak najszybciej umieścić roztwory w rurkach polarymetrycznych unikając w środku pęcherzyków powietrza (ze względu na szybkie tempo zachodzenia mutarotacji pod wpływem katalizatorów jak i bez nich). 5. Badane próby przenieść do komory polarymetru i rozpocząć odczyt kąta skręcenia płaszczyzny polaryzacji w równych odstępach czasu. 6. Początkowo odczyt skręcenia kąta polaryzacji dokonywać co kilkanaście sekund (przez okres 5 minut), następnie co 1min (przez okres 10 minut) i co 5 min. Doświadczenie wykonywać do czasu, gdy dla każdej z prób kąt skręcenia osiągnie taką samą wartość i nie będzie ulegał już zmianie. Ze względu na to, że dla glukozy bez katalizatorów proces trwa bardzo długo ostatecznego pomiaru należy dokonać po 24h. 7. Wyniki przedstawić w postaci wykresu zależności zmierzonego kąta skręcenia płaszczyzny polaryzacji w funkcji czasu. 8. Ocenić wpływ katalizatorów na szybkość zachodzenia mutarotacji. Literatura: [1] Z. Jóźwiak, G. Bartosz, Biofizyka, Warszawa 2005. [2] E. Szyszko, Instrumentalne metody analityczne, Warszawa 1982. [3] Sz. Szczeniowski, Fizyka doświadczalna cz. IV, Warszawa 1963. [4] J. McMurry, Chemia organiczna, Warszawa 2000. [5] Instrukcja obsługi automatycznego rutynowego polarymetru POLAMAT A, CarlZeiss JENA.