Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 3

Podobne dokumenty
Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 2

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

Ćwiczenia laboratoryjne - teoria

Wysokosprawna chromatografia cieczowa dobór warunków separacji wybranych związków

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

BADANIE ZAWARTOŚCI WIELOPIERŚCIENIOWYCH WĘGLOWODORÓW AROMATYCZNYCH (OZNACZANIE ANTRACENU W PRÓBKACH GLEBY).

Rys. 1. Chromatogram i sposób pomiaru podstawowych wielkości chromatograficznych

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

OZNACZANIE WYBRANYCH FARMACEUTYKÓW W PRÓBACH WODY.

1,4-Fenylenodiamina. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

2-Metyloazirydyna. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II. OznaczanieBTEX i n-alkanów w wodzie zanieczyszczonej benzyną metodą GC/FID oraz GC/MS 1

ROZDZIELENIE OD PODSTAW czyli wszystko (?) O KOLUMNIE CHROMATOGRAFICZNEJ

Glifosat. Numer CAS:

OZNACZENIE JAKOŚCIOWE I ILOŚCIOWE w HPLC

2-Cyjanoakrylan metylu metoda oznaczania

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką GC/FID

Wysokosprawna chromatografia cieczowa instrukcja do ćwiczenia.

4-Chlorofenol. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE. Najważniejsze właściwości fizykochemiczne 4-chlorofenolu:

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ZASTOSOWANIE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ DO OZNACZANIA BENZOESANU SODU W PRODUKTACH SPOŻYWCZYCH

PORÓWNANIE FAZ STACJONARNYCH STOSOWANYCH W HPLC

4,4 -Metylenodianilina

Zadanie 4. Zastosowanie wysokosprawnej chromatografii cieczowej do oznaczania benzoesanu sodu w produktach przemysłowych

2-Cyjanoakrylan etylu

Oznaczanie wybranych farmaceutyków w próbach wody

Bifenylo-4-amina. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE. mgr inż. ANNA JEŻEWSKA 1 prof. dr hab. BOGUSŁAW BUSZEWSKI 2 1 Centralny Instytut Ochrony Pracy

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

PP7: Wymiana jonowa i chromatografia jonowymienna oznaczanie kationów i anionów

Jakościowa i ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką chromatografii gazowej

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 2

Cyjanamid. Numer CAS: N C N

2,2 -Dichloro-4,4 - -metylenodianilina

Anilina. Numer CAS: anilina, metoda analityczna, metoda chromatografii cieczowej, powietrze na stanowiskach

Azirydyna. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

Techniki immunochemiczne. opierają się na specyficznych oddziaływaniach między antygenami a przeciwciałami

Diacetyl. Numer CAS:

Numer CAS: o C (101,3 kpa)

Instrukcja ćwiczenia laboratoryjnego HPLC-2 Nowoczesne techniki analityczne

Fenol, o-, m- i p-krezol metoda oznaczania

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

Kontrola produktu leczniczego. Piotr Podsadni

Jakościowe i ilościowe oznaczanie alkoholi techniką chromatografii gazowej

ZASTOSOWANIE CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ W BIOTECHNOLOGII ŚRODOWISKOWEJ

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Prof. dr hab. inż. M. Kamiński 2006/7 Katedra Chemii Analitycznej Wydział Chemiczny PG. Ćwiczenie: LC / GC. Instrukcja ogólna

ANALIZA INSTRUMENTALNA

4,4 -Metylenodianilina

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

NH 2. Numer CAS:

Metoda analityczna oznaczania chlorku winylu uwalnianego z materiałów i wyrobów do żywności

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

HPLC? HPLC cz.1. Analiza chromatograficzna. Klasyfikacja metod chromatograficznych

Chlorek chloroacetylu

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

Cz. 5. Podstawy instrumentalizacji chromatografii. aparatura chromatograficzna w skali analitycznej i modelowej - -- w części przypomnienie -

NH 2 CH 3. Numer CAS:

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 6-1 w PWN. Warszawa, cop.

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Ślesin, 29 maja 2019 XXV Sympozjum Analityka od podstaw

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

n-heksanal Numer CAS: CH 3 (CH 2 ) 4 CHO

2-(Dietyloamino)etanol

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

Chromatogramy Załącznik do instrukcji z Technik Rozdzielania Mieszanin

3-Amino-1,2,4-triazol

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

Kwas trichlorooctowy

Pytania z Wysokosprawnej chromatografii cieczowej

CHROMATOGRAFIA II 18. ANALIZA ILOŚCIOWA METODĄ KALIBRACJI

Ćwiczenie 4 Zastosowanie metody wzorca wewnętrznego do analizy ilościowej techniką GC-FID

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

ĆWICZENIE 5 Barwniki roślinne. Ekstrakcja barwników asymilacyjnych. Rozpuszczalność chlorofilu

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

XXIV KONKURS CHEMICZNY DLA GIMNAZJALISTÓW ROK SZKOLNY 2016/2017

Analiza instrumentalna

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Naftalen metoda oznaczenia

Ćwiczenie 1 Analiza jakościowa w chromatografii gazowej Wstęp

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Izoterma rozpuszczalności w układzie trójskładnikowym

Bezwodnik trimelitowy

EKSTRAKCJA KOFEINY Z PRÓBEK KAWY

Transkrypt:

UNIWERSYTET GDAŃSKI WYDZIAŁ CHEMII KATEDRA ANALIZY ŚRODOWISKA Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych Ćwiczenie nr 3 Wykrywanie benzoesanu denatonium w skażonym alkoholu etylowym metodą wysokosprawnej chromatografii cieczowej Gdańsk, 2017

I CEL ĆWICZENIA Celem ćwiczenia jest analiza benzoesanu denatonium w próbkach skażonego alkoholu etylowego oraz w próbkach odkażonych przez dodanie chloranu(i) sodu (podchlorynu sodu, NaOCl). Analiza jakościowa zostanie wykonana poprzez porównanie czasu retencji analitu z czasem retencji wzorca otrzymanych w tych samych warunkach chromatograficznych. II ODKAŻANIE ALKOHOLU Benzoesan denatonium odkryto przypadkowo w Edynburgu w roku 1958. W laboratoriach firmy Macfarlan Smith podczas prac nad lidokainą jeden z naukowców odkrył, że otrzymany biały puder miał bardzo gorzki smak. BENZOESAN DENATONIUM o biały krystaliczny proszek lub granulki o bezzapachowy ale ekstremalnie gorzki C H 3 N H O C H 3 H 3 C N + O - C H 3 O o temperatura topnienia 163-170 ºC o rozpuszczalność w wodzie 5% w temp. 20 ºC o może powodować reakcje alergiczne u osób uczulonych na lidokainę lub podobne związki o nie ulega bioakumulacji o działania kancerogennego, teratogennego czy mutagennego u ludzi nie stwierdzono Człowiek może wykryć lekko gorzki smak benzoesanu denatonium już przy stężeniu 50 ppb a bardzo gorzki smak wyczuwa przy stężeniu 1-10 ppm. Do testowania intensywności gorzkiego smaku wykorzystywani są jedynie ludzie (już od 18 miesiąca życia). W 1982 roku benzoesan denatonium został umieszczony w Księdze Rekordów Guinnessa jako najbardziej gorzka substancja znana człowiekowi. W 1958 roku produkt został zrejestrowany jako środek denaturujący pod marką Bitrex w Zjednoczonym Królestwie, a w 1960 roku w Stanach Zjednoczonych. Bitrex i logo Bitrex (i wszystkie tłumaczenia) są zastrzeżone przez firmę Macfarlan Smith i nie mogą być używane ani kopiowane w żadnej formie na etykietkach, w materiałach ilustracyjnych, na opakowaniach, w reklamie czy materiałach promocyjnych bez pisemnej zgody firmy Macfarlan Smith. Warunki uzyskania zgody od firmy Macfarlan Smith to:

o przejście testów każdego produktu w laboratoriach Macfarlan Smith; pozwala na upewnienie się, że będzie on stabilny i na poziomie zapewniającym bezpieczeństwo, o zastosowanie minimalnego poziomu Bitrex-u zapewniający gorzki smak (10-100 ppm), o wszystkie prace graficzne związane z etykietkami, opakowaniami, reklamą itp. z użyciem logo Bitrex muszą być zaaprobowane przez firmę Macfarlan Smith, o wszelkie zmiany dotyczące produktów, dla których wcześniej została uzyskana zgoda muszą być ponownie zaakceptowane przez Macfarlan Smith. Ze względu na niestwierdzone szkodliwe działanie jest uniwersalnym środkiem do skażania produktów spirytusowych. Niestety pomimo obowiązującego prawa, wciąż pojawiają się problemy związane ze zbyt małą niż wyznaczona ilością benzoesanu denatonium w wyrobach alkoholowych oraz z usuwaniem gorzkiego smaku poprzez dodanie chloranu(i) sodu (podchlorynu sodu). CHLORAN(I) SODU (NaOCl, podchloryn sodu) o rozpuszczony w wodzie jest przeźroczystym żółtozielonym płynem o ph od 12 do 13, który działa silnie utleniająco o procentowość NaOCI odnosi się do ilości czynnego chloru, maksymalnie 12,5%. Po raz pierwszy podchloryn, najprawdopodobniej w postaci podchlorynu potasowego (KOCI), został wytworzony w XVIII wieku przez francuskiego chemika C.L. Berthollet a. Podchloryny znalazły zastosowanie jako środki do bielenia tekstyliów i innych materiałów organicznych czy w odkażaniu ran (działa odkażająco na wszystkie drobnoustroje, grzyby i wirusy). Odkażające właściwości zadecydowały o wykorzystaniu 5% roztworu NaOCl jako środka płuczącego podczas leczenia kanałowego zębów. Zuba i jego zespół opracowali metodę oznaczania benzoesanu denatonium za pomocą HPLC z detekcją DAD. Opracowaną metodę zastosowali także do badania efektywności usuwania benzoesanu denatonium za pomocą podchlorynu sodu. Dodatkowo wykorzystali także spektormetrię mas (zarówno w trybie pracy jonów dodatnich, jak i ujemnych). Udowodnili, że dodanie NaOCl (o zawartości 12 15% aktywnego chloru) w ilości odpowiadającej stężeniu 50 µl na litr spirytusu skażonego (3 mgl -1 benzoesanu denatonium) powoduje spadek stężenia jonów denatonium w roztworze. Po dodaniu NaOCl w ilości odpowiadającej 200 µl na litr alkoholu usuwa te jony całkowicie powodując zanik gorzkiego smaku przy stosunkowo niezmienionym ph roztworu. Jony benzoesanowe zniknęły dopiero po

dodaniu NaOCl w ilości odpowiadającej 80 ml na litr alkoholu. W tak otrzymanym roztworze ph osiągnęło wartość 11-12 co uniemożliwia użycie tego alkoholu dla celów konsumpcyjnych. Dzięki tym badaniom wiemy o tym, że jeśli w produkcie spirytusowym potwierdzona zostanie obecność jonów benzoesanowych to możemy przypuszczać, iż wcześniej w takim produkcie znajdował się benzoesan denatonium. Wśród zidentyfikowanych produktów degradacji benzoesanu denatonium są min. N,N-dibenzylamina czy chlorek sodu. III WYKONANIE ĆWICZENIA 1. Przygotowanie próbek Wykorzystując gotowy roztwór podstawowy benzoesanu denatonium o stężeniu równym 1000 mg/l; należy przygotować rozcieńczenia o stężeniach równych: 100; 75; 50 i 20 mg/l. Do kolb miarowych o objętości 10 ml, przeprowadzić odpowiednio: 1; 0,75; 0,5; i 0,2 ml roztworu podstawowego i uzupełnić kolbę do kreski etanolem. Następnie należy wykonać analizę chromatograficzną (HPLC) próbek alkoholu zawierających określoną ilość benzoesanu denatonium a także próbki czystego alkoholu. Na podstawie uzyskanych wyników, przygotować krzywą kalibracyjną. Należy również przeprowadzić analizę otrzymanej próbki skażonego alkoholu i ocenić stężenie jonów denatonium w tej próbce na podstawie przygotowanej wcześniej krzywej kalibracyjnej. W kolejnym etapie należy pobrać 1 ml próbki skażonego alkoholu i usunąć jony denatonium za pomocą chloranu(i) sodu (o zawartości 10 15% aktywnego chloru). Potrzebną objętość NaOCl należy obliczyć wiedząc, że: A. dodanie NaOCl (o zawartości 12 15% aktywnego chloru) w ilości odpowiadającej stężeniu 50 µl na litr spirytusu skażonego Bitrexem (3 mg/l) powoduje spadek stężenia jonów denatonium w roztworze; B. dodanie NaOCl w ilości odpowiadającej 200 µl na litr alkoholu usuwa te jony całkowicie, co wystarczy do zneutralizowania gorzkiego smaku; C. jony benzoesanowe znikają z roztworu dopiero po dodaniu NaOCl w ilości odpowiadającej 80 ml na litr alkoholu.

Przy obliczeniach należy zastosować następujący wzór: N = x (A lub B lub C) gdzie: N ilość NaOCl którą należy dodać do 1 ml próbki analitycznej wyrażona w µl x wyznaczone stężenie Bitrexu wyrażone w mg/l (ppm) A lub B lub C wartości odpowiednio: 0,017; 0,067 i 26,667 stanowiące warianty neutralizacji jonów benzoesanu denatonium opisane powyżej Następnie próbkę należy odwirować (10 min., 4000 obr./min), po czym roztwór znad osadu przesączyć, sprawdzić ph roztworu za pomocą papierka wskaźnikowego i poddać analizie chromatograficznej. 2. Analiza HPLC Podczas ćwiczeń zostanie wykorzystany chromatograf cieczowy z detektorem spektrofotometrycznym UV-Vis (SCHIMADZU SPD-20A) wyposażony w dozownik typu zaworu z pętlą o objętości 20 µl. Do analizy zostanie wykorzystana kolumna analityczna o wymiarach 150 4,6 mm (PhenoSphere-Next 5 µm C18 firmy Phenomenex). Wypełnienie stanowi żel krzemionkowy z chemicznie związanymi grupami oktadecylowymi, czyli tzw. faza odwrócona RP-18. Średnica ziaren - 5 µm. Fazą ruchomą jest mieszanina: 0,1% wodny roztwór H3PO4/acetonitryl w stosunku 70:30 (v/v); rozdział izokratyczny. Prędkość przepływu fazy ruchomej: 0,7 ml/min. Czas analizy 12 minut. Maksimum absorpcji promieniowania UV jonu denatonium wynosi 205 nm natomiast jon benzoesanowy charakteryzuje się dwoma maksimami absorpcji: około 205 i 230 nm. Pomiary stężenia benzoesanu denatonium najczęściej prowadzi się przy długości fali 210 nm. HPLC - UWAGI OGÓLNE: Fazę ruchomą należy przed użyciem odgazować przez 15 min w łaźni ultradźwiękowej. Przed rozpoczęciem analiz należy przemyć kolumnę fazą ruchomą w ciągu minimum. 30 minut aż do uzyskania stabilnej linii zerowej (przepływ 0,7 ml/min). Po zakończeniu analiz należy koniecznie przemyć kolumnę mieszaniną wody i acetonitrylu w stosunku 40:60 w ciągu minimum 30 minut aż do uzyskania stabilnej linii zerowej.

Nie wolno doprowadzić do zapowietrzenia pomp poprzez zaciągnięcie powietrza przez rurki, używanie nieodgazowanych rozpuszczalników lub pozostawienie rurek, które nie są zanurzone w odpowiedniej ilości cieczy. Przed każdą analizą należy przemyć strzykawkę oraz pętlę dozownika kilkakrotnie rozpuszczalnikiem a następnie jednokrotnie badaną próbką. Dozując próbkę za pomocą strzykawki nie wolno wprowadzić do dozownika pęcherzyków powietrza. 3. Sprawozdanie Opisać warunki przeprowadzonych analiz chromatograficznych. Zamieścić w sprawozdaniu odpowiednio opracowane chromatogramy i krzywą kalibracyjną. Dokonać analizy chromatogramów próbek alkoholu skażonego oraz próbek alkoholu potraktowanych chloranem(i) sodu i ocenić powstałe różnice w stężeniach analitów. Przedstawić dyskusję wyników i wnioski. SPRZĘT I SZKŁO LABORATORYJNE - strzykawka do HPLC (50 µ)l; - cylinder miarowy 100 ml 2 szt.; - pipety szklane poj. 1 ml 4 szt.; - pipeta szklana poj. 0,2 ml 1 szt.; - naczynka szklane poj. 4 ml 10 szt.; - wirówka; - probówki wirówkowe 4 szt. - papierki wskaźnikowe; - zestaw HPLC z detektorem spektrofotometrycznym UV-Vis. ODCZYNNIKI - roztwór 0,1% H3PO4 w 1 litrze wody wykonany poprzez rozpuszczenie 1 ml 85% H3PO4 w 1 litrze wody; - faza ruchoma o składzie: 0,1% wodny roztwór H3PO4/acetonitryl w stosunku 70:30 (v/v); - faza ruchoma o składzie: woda/acetonitryl w stosunku 70:30 (v/v); - roztwór podstawowy benzoesanu denatonium o stężeniu równym 2 mg/ml; - roztwory benzoesanu denatonium w etanolu o stężeniach równych: 0, 5, 10, 20 i 40 mg/l; - acetonitryl do mycia strzykawek;

- acetonitryl; - woda dejonizowana; - kwas octowy; - alkohol etylowy 99,8%; - chloran(i) sodu (NaOCl, podchloryn sodu ) o zawartości 10 15% aktywnego chloru. V Literatura: 1. D. Zuba, C. Świegoda, B. Byrska, W. Lechowicz, Oznaczanie benzoesanu denatonium (Bitrexu) w skażonych wyrobach spirytusowych, Probl. Forensic Sci., 2005; 63:275 287. 2. Zuba D, Świegoda C, Byrska B, Lechowicz W. Ocena efektywności metody usuwania benzoesanu denatonium (Bitrexu) ze skażonych wyrobów spirytusowych za pomocą podchlorynu sodu. Probl. Forensic Sci. 2005; 63:288 298. 3. www.endodoncja.pl 3. Szczepaniak W., Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN, W-wa, 1996. 4. Witkiewicz Z., Podstawy chromatografii, WNT, W-wa, 1995, 2005.