SKRYPT DO ĆWICZEŃ Z BIOFIZYKI. dla studentów biologii i biotechnologii UMCS w Lublinie. Wydawnictwo Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej

Podobne dokumenty
ĆWICZENIA LABORATORYJNE Z CHEMII FIZYCZNEJ

SPIS TREŚCI CZĘŚĆ LITERATUROWA OBJAŚNIENIE STOSOWANYCH W PRACY SKRÓTÓW... 6 OBJAŚNIENIE STOSOWANYCH W PRACY OZNACZEŃ... 8.

WYKAZ NAJWAŻNIEJSZYCH SYMBOLI

Z47 BADANIA WŁAŚCIWOŚCI ELEKTROFIZJOLOGICZNYCH BŁON KOMÓRKOWYCH

ANALIZA INSTRUMENTALNA

KARTA PRZEDMIOTU. 10. WYMAGANIA WSTĘPNE: 1. Ma podstawową wiedzę i umiejętności z zakresu matematyki, fizyki, mechaniki i termodynamiki.

Uczelnia Łazarskiego Wydział Medyczny Kierunek Lekarski

Potencjał spoczynkowy i czynnościowy

Potencjometryczna metoda oznaczania chlorków w wodach i ściekach z zastosowaniem elektrody jonoselektywnej

Chemia fizyczna kierunek technologia chemiczna Harmonogram laboratorium dla II roku w semestrze zimowym 2015/2016

LABORATORIUM INŻYNIERII MATERIAŁOWEJ

Zestaw ćwiczeń laboratoryjnych z Biofizyki dla kierunku Fizjoterapia

ZAGADNIENIA DO PRZYGOTOWANIA DO ĆWICZEŃ Z BIOFIZYKI DLA STUDENTÓW I ROKU WYDZIAŁU LEKARKIEGO W SEMESTRZE LETNIM 2011/2012 ROKU.

Uczelnia Łazarskiego Wydział Medyczny Kierunek Lekarski

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

1. za pomocą pomiaru SEM (siła elektromotoryczna róŝnica potencjałów dwóch elektrod) i na podstawie wzoru wyznaczenie stęŝenia,

Biofizyka SYLABUS A. Informacje ogólne

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

FIZYKA MOLEKULARNA I CIEPŁO

LABORATORIUM Z FIZYKI i BIOFIZYKI

Sylabus na rok akademicki 2018/2019 Opis przedmiotu kształcenia Nazwa modułu/przedmiotu Biofizyka Grupa szczegółowych efektów

Wszyscy uczestnicy postępowania Zmiana SIWZ

A4.05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Techniki analityczne. Podział technik analitycznych. Metody spektroskopowe. Spektroskopia elektronowa

I Pracownia Fizyczna Dr Urszula Majewska dla Biologii

Kalorymetria. 1. I zasada termodynamiki, Prawo Hessa, Prawo Kirchhoffa (graficzna interpretacja), ciepło właściwe, termodynamiczne funkcje stanu.

Wyznaczanie współczynnika lepkości cieczy oraz zależności lepkości od temperatury

PRACOWNIA FIZYKI MORZA

Prędkości cieczy w rurce są odwrotnie proporcjonalne do powierzchni przekrojów rurki.

SYLABUS. Techniki mikroskopowe. Wydział Biologiczno-Rolniczy. Katedra Biochemii i Biologii Komórki. dr Renata Zadrąg-Tęcza

KARTA INFORMACYJNA PRZEDMIOTU

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

STANDARDOWY SYLABUS PRZEDMIOTU na rok akademicki 2014/2015

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Pytania do ćwiczeń na I-szej Pracowni Fizyki

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

Ćwiczenie 8 (studenci biotechnologii) Potencjometria Potencjometryczne wyznaczanie PK miareczkowania słabego kwasu

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok OAM

Funkcje błon biologicznych

Spektroskopia molekularna. Spektroskopia w podczerwieni

ZAKRES MATERIAŁU OBOWIĄZUJĄCY DO POSZCZEGÓLNYCH GRUP ĆWICZEŃ

Kierunek i poziom studiów: chemia poziom pierwszy Sylabus modułu: Podstawy Chemii B 0310-CH-S1-010

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

POLITECHNIKA ŚWIĘTOKRZYSKA w Kielcach WYDZIAŁ MECHATRONIKI I BUDOWY MASZYN KATEDRA URZĄDZEŃ MECHATRONICZNYCH LABORATORIUM FIZYKI INSTRUKCJA

Wyznaczanie współczynnika lepkości cieczy oraz zależności lepkości od temperatury

Metody Badań Składu Chemicznego

KARTA KURSU. Bioinformatyka, I stopień, stacjonarne, 2018/2019, semestr 1. Opis kursu (cele kształcenia)

Budowa i zróżnicowanie neuronów - elektrofizjologia neuronu

SYLABUS DOTYCZY CYKLU KSZTAŁCENIA (skrajne daty) ZP Prakt. jakie?)

Ćwiczenie 1: Podstawowe parametry stanu.

ISBN

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

Wykaz ćwiczeń laboratoryjnych z fizyki(stare ćwiczenia)

Błona komórkowa grubość od 50 do 100 A. Istnieje pewna różnica potencjałów, po obu stronach błony, czyli na błonie panuje pewne

WYZNACZANIE ROZMIARÓW

Oznaczanie zawartości fluorków w naparze herbacianym z wykorzystaniem potencjometrii bezpośredniej

Waldemar GORZKOWSKI Andrzej KOTLICKI OLIMPIADA FIZYCZNA. Wybrane zadania doświadczalne z rozwiązaniami

PRAWO WODNE: URZĄDZENIA POMIAROWE W AKWAKULTURZE DR INŻ. ANNA M. WIŚNIEWSKA

SYLABUS DOTYCZY CYKLU KSZTAŁCENIA

Błona komórkowa grubość od 50 do 100 A. Istnieje pewna różnica potencjałów, po obu stronach błony, czyli na błonie panuje pewne

Uniwersytet Śląski w Katowicach str. 1 Wydział

Uniwersytet Śląski w Katowicach str. 1 Wydział Biologii i Ochrony Środowiska

SYLABUS DOTYCZY CYKLU KSZTAŁCENIA Wydział Medyczny. Wydział Matematyczno-Przyrodniczy

ANALIZA SPEKTRALNA I POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE. Instrukcja wykonawcza

Tematyka ćwiczeń laboratoryjnych z Biofizyki dla studentów I roku Kierunku Lekarsko-Dentystycznego w Zabrzu w roku akademickim 2017/18

LABORATORIUM Z PODSTAW BIOFIZYKI ĆWICZENIE NR 4 1. CEL ĆWICZENIA

WOJSKOWA AKADEMIA TECHNICZNA Wydział Mechaniczny Katedra Pojazdów Mechanicznych i Transportu LABORATORIUM TERMODYNAMIKI TECHNICZNEJ

Właściwości błony komórkowej

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

UNIWERSYTET MARII CURIE-SKŁODOWSKIEJ W LUBLINIE

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

TRANSPORT NIEELEKTROLITÓW PRZEZ BŁONY WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PRZEPUSZCZALNOŚCI

PRACOWNIA CHEMII. Wygaszanie fluorescencji (Fiz4)

ĆWICZENIE NR 3 POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE

Podstawowe informacje o przedmiocie (niezależne od cyklu)

METODYKA WYBRANYCH POMIARÓW. w inżynierii rolniczej i agrofizyce. pod redakcją AGNIESZKI KALETY

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

1. Część teoretyczna. Przepływ jednofazowy przez złoże nieruchome i ruchome

Ćwiczenie 1 Metody pomiarowe i opracowywanie danych doświadczalnych.

Laboratorium z biofizyki

DIPOLOWY MODEL SERCA

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

I. KARTA PRZEDMIOTU CEL PRZEDMIOTU

Politechnika Krakowska im. Tadeusza Kościuszki. Karta przedmiotu. obowiązuje studentów rozpoczynających studia w roku akademickim 2013/2014

KINETYKA INWERSJI SACHAROZY

Sylabus na rok akademicki 2015/2016

Ćw. 2: Analiza błędów i niepewności pomiarowych

Pomiar energii wiązania deuteronu. Celem ćwiczenia jest wyznaczenie energii wiązania deuteronu

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne. Lekarsko-Biotechnologiczny i Medycyny Laboratoryjnej. nie dotyczy

Laboratorium. Hydrostatyczne Układy Napędowe

WYBRANE ZAGADNIENIA Z CHEMII KOSMETYKÓW

Spis treści CZĘŚĆ I. PROCES ANALITYCZNY 15. Wykaz skrótów i symboli używanych w książce... 11

POLITECHNIKA ŁÓDZKA INSTRUKCJA Z LABORATORIUM W ZAKŁADZIE BIOFIZYKI. Ćwiczenie 3 ANALIZA TRANSPORTU SUBSTANCJI NISKOCZĄSTECZKOWYCH PRZEZ

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana Dobór metody analitycznej

Opis modułu kształcenia / przedmiotu (sylabus)

Instytut Fizyki Doświadczalnej Wydział Matematyki, Fizyki i Informatyki UNIWERSYTET GDAŃSKI

WZPiNoS KUL Jana Pawła II Rok akademicki 2016/2017 Instytut Inżynierii Środowiska Kierunek: Inżynieria środowiska II stopnia

Transkrypt:

SKRYPT DO ĆWICZEŃ Z BIOFIZYKI dla studentów biologii i biotechnologii UMCS w Lublinie Wydawnictwo Uniwersytetu Marii Curie-Skłodowskiej

SKRYPT DO ĆWICZEŃ Z BIOFIZYKI dla studentów biologii i biotechnologii UMCS w Lublinie REDAKCJA prof. dr hab. Kazimierz Trębacz AUTORZY Halina Dziubińska, Agnieszka Charzewska, Elżbieta Król, Maria Stolarz, Elżbieta Koperwas, Kamila Kupisz, Maciej Krupa W YDAW NICTW O UNIWERSYTETU M ARII CURIE-SKŁODOWSKIEJ LUBLIN 2010

SPIS TREŚCI 1. Potencjały czynnościowe u roślin - pomiar potencjału elektrycznego metodą zewnątrzkomórkową... 9 1.1. Własności potencjałów czynnościowych... 9 1.2. Mechanizm jonowy potencjałów czynnościowych u roślin... 12 1.3. Charakterystyka układu pomiarowego i obiektu b ad ań... 12 1.4. Wykonanie ćw iczenia... 13 1.4.1. Pomiar progu pobudliwości... 13 1.4.2. Wyznaczanie okresu refrakcji... 14 1.5. Sprawozdanie... 14 2. Pomiar potencjału transmembranowego oraz amplitudy potencjałów czynnościowych metodą wewnątrzkomórkową... 15 2.1. W prowadzenie... 15 2.2. Charakterystyka odpowiedzi na bodźce świetlne i termiczne u Conocephalum conicum... 16 2.3. Układ pomiarowy... 17 2.3.1. Przygotowanie materiału roślinnego... 18 2.3.2. Przygotowanie mikroelektrod i rozpoczęcie pom iaru... 19 2.4. Sprawozdanie... 19 3. Pomiar potencjału elektrycznego sztucznej błony kationoselektywnej. Wyznaczanie stosunku przepuszczalności K+/Na+... 20 3.1. Membrany biologiczne... 20 3.2. Membrany syntetyczne... 20 3.3. Selektywność jonitów... 21 3.4. Potencjał transmembranowy... 22 3.5. Wykonanie ćw iczenia... 23 3.6. Sprawozdanie... 24 4. Pomiar potencjału transmembranowego i oporu komórek glonów metodą otwartej w akuoli... 25 4.1. W prowadzenie... 25 4.2. Potencjał równowagi... 27 4.3. Wykonanie ćw iczenia... 28 4.4. Sprawozdanie... 30 5. Pomiar aktywności kanałów jonowych metodą patch-clamp u roślin... 31 5.1. W prowadzenie... 31 5.2. Metody otrzymywania protoplastów... 33 5.3. Przygotowanie pipety pom iarow ej... 34

6 Spis treści 5.4. Wykonanie ćwiczenia... 35 5.5. Sprawozdanie... 36 6. Pomiar stężenia fizjologicznie aktywnych jonów za pomocą elektrod jonoselektywnych (potencjometria)... 37 6.1. Pojęcie p H... 37 6.2. Roztwory buforow e... 38 6.3. Pomiar stężenia jonów przy użyciu elektrod jonoselektywnych... 39 6.4. Wykonanie ćwiczenia... 40 6.4.1. Pomiar p H... 40 6.4.2. Cechowanie elektrody CI -selektywnej i pomiar pcl wybranych roztworów... 41 6.4.3. Cechowanie elektrody K+-selektywnej i pomiar pk wybranych roztworów... 42 6.5. Sprawozdanie... 42 7. Wyznaczanie widma absorpcji barwników organicznych (spektrofotometria). Prawo Lamberta-Beera... 43 7.1. Absorpcja światła. Prawa absorpcji światła... 43 7.2. Zasada działania spektrofotometru... 45 7.3. Wykonanie ćwiczenia... 45 7.4. Sprawozdanie... 46 7.4.1. Metoda najmniejszych kwadratów... 46 8. Pomiar natężenia światła. Wyznaczanie widma promieniowania różnych źródeł światła... 47 8.1. Źródła światła... 47 8.2. Filtry... 49 8.3. Pomiar natężenia światła... 49 8.4. Układ pomiarowy... 50 8.5. Wykonanie ćwiczenia... 50 8.6. Sprawozdanie... 50 9. Pomiar wielkości komórek wątrobowca za pomocą mikroskopu. Podstawy statystyki... 51 9.1. Mikroskop i jego klasyfikacje... 51 9.1.1. Podział mikroskopów ze względu na rodzaj użytego promieniowania... 52 9.1.2. Podział mikroskopów ze względu na metody obrazowania.... 53 9.1.3. Podział mikroskopów ze względu na zjawiska fizyczne będące podstawą ich działania... 54 9.2. Podstawowe wielkości używane przy statystycznym opracowaniu danych doświadczalnych... 55 9.2.1. Średnia arytmetyczna pomiarów... 55

Spis treści 9.2.2. Błędy przypadkow e... 55 9.3. Wykonanie ćwiczenia i przygotowanie sprawozdania... 56 9.3.1. Cechowanie m ikroskopu... 56 9.3.2. Pomiar pola powierzchni przekroju komórek wątrobowca Conocephalum conicum... 57 10. Ruchy cytoplazmy. Podstawy statystyki... 59 10.1. Podstawowe zagadnienia związane z ruchem cytoplazmy w olbrzymich komórkach glonów... 59 10.2. Podstawowe wielkości używane przy statystycznym opracowywaniu danych doświadczalnych... 60 10.2.1. Średnia... 60 10.2.2. Rozrzut... 60 10.2.3. W spółzależność... 61 10.3. Wykonanie ćwiczenia... 62 10.4. Sprawozdanie... 64 11. Wyznaczanie izotermy błonki monomolekularnej metodą Wilhelmy ego.. 65 11.1. Napięcie powierzchniowe... 65 11.2. Błonki m onom olekularne... 66 11.3. Metoda p o m ia ru... 67 11.4. Wykonanie ćwiczenia... 68 11.5. Sprawozdanie... 69 12. Pomiar gęstości oleju oraz gęstości płynu biologicznego metodą Stokesa. 70 12.1. L epkość... 70 12.2. Spadanie kuli w cieczy lepkiej w zakresie opływu laminarnego... 71 12.2.1. Pomiar lepkości... 71 12.2.2. Pomiar gęstości cieczy... 73 12.3. Wykonanie ćwiczenia... 74 12.3.1. Badanie lepkości oleju:... 74 12.3.2. Badanie gęstości płynu biologicznego... 74 12.4. Sprawozdanie... 75 13. Analiza rytmu biologicznego na przykładzie ruchów cirkumnutacyjnych. 76 13.1. W prow adzenie... 76 13.2. M etoda rejestracji ruchów roślin i opracowanie otrzymanych danych 77 13.3. Wykonanie ćwiczenia i przygotowanie spraw ozdania... 77 7