Rozwiązywanie problemów w zakresie wylęgu

Transkrypt

1 KARTA INFORMACYJNA Rozwiązywanie problemów w zakresie wylęgu info.hybrid@hendrix-genetics.com

2 Jasne jaja bez oznak rozwoju zarodkowego (niezalężone) 1. Sterylność indorów 2. Nieodpowiednie żywienie lub niewystarczająca ilość wody (lub zbyt gorąco albo zbyt zimno) 3. Nieodpowiednie techniki sztucznego zapłodnienia 4. Jaja uszkodzone przez warunki środowiskowe 5. Jaja magazynowane zbyt długo lub nieprawidłowo 6. Nieodpowiednia fumigacja 7. Choroba stada reprodukcyjnego 1. Wymienić indory. 2. Dokonać przeglądu substancji odżywczych w diecie i procedur dot. poideł. 3. Dokonać przeglądu technik inseminacyjnych i procedur dot. nasienia. 4. Często zabierać jaja z gniazda; chronić przed niekorzystnymi warunkami pogodowymi. 5. Sprawdzać temperaturę (14 16 C), obracać jaja podczas dłuższego magazynowania. 6. Dokonać przeglądu protokołów fumigacji. 7. Sprawdzić protokoły stanu zdrowia, bioasekuracji, szczepień. Wiele martwych zarodków na wczesnym etapie inkubacji 1. Jaja magazynowane zbyt długo lub nieprawidłowo. Poważne wahania temperatury 2. Transport 3. Bardzo wysoka lub niska temperatura na wczesnym etapie inkubacji 4. Zakażenie 5. Zarodki słabiej rozwinięte podczas składania jaj 6. Poważne braki substancji odżywczych 7. Fumigacja 8. Wentylacja 9. Obracanie jaj 1. Sprawdzać temperaturę (14 16 C), często zbierać jaja, wychładzać w odpowiedni sposób i szybko. Obracać jaja podczas magazynowania. 2. Starać się nie uszkodzić jaj w transporcie poprzez wstrząsanie. 3. Sprawdzać temperaturę skorupy i profile. Sprawdzać dokładność odczytów termometru poprzez kalibrację. 4. Sprawdzić procedury mycia i dezynfekcji na fermie i w wylęgarni. 5. Preinkubować lub ocieplić jaja. 6. Sprawdzić poziom np. biotyny, witaminy A, miedzi, witaminy E, boru, kwasu pantotenowego i kwasu linolowego. 7. Sprawdzać dawki i godziny. Fumigant nie został usunięty z urządzenia odpowiednio wcześnie lub na wczesnym etapie inkubacji. 8. Sprawdzić wentylację; może brak wystarczającej wentylacji lub wysoki poziom CO 2 (>1%). 9. Sprawdzać częstotliwość i kąt nachylenia. KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 2

3 Wiele zarodków martwych w środkowej fazie inkubacji 1. Żywienie 2. Nieodpowiednie warunki w inkubatorze temperatura, wilgotność, obracanie, wentylacja 3. Zakażenie 1. Sprawdzić pod kątem braków ryboflawina, witamina B12, biotyna, niacyna, pirydoksyna, kwas pantotenowy, fosfor, bor, kwas linolowy. 2. Sprawdzić kalibrację urządzenia, zmierzyć temperaturę skorupy, zmierzyć utratę wody. 3. Dokonać przeglądu programów mycia i dezynfekcji, monitorować warunki środowiskowe. Nienakłuta skorupa: W pełni rozwinięty zarodek; duży woreczek żółtkowy; może zawierać resztki białka 1. Obracanie jaj 2. Temperatura 3. Wilgotność 4. Wentylacja 5. Przedłużające się magazynowanie jaj 6. Jaja zbyt wychłodzone podczas transferu do klujnika 7. Choroby reproduktorów 1. Sprawdzić system obracania jaj; częstotliwość (24-90 razy dziennie), kąt (45 ). 2. Sprawdzać temperaturę. Zbyt niska w inkubatorach lub zbyt wysoka w klujnikach. 3. Sprawdzić wilgotność. Zbyt wysoka podczas inkubacji lub bezpośrednio po transferze do klujników. 4. Zapewnić odpowiednią wentylację. 5. Skrócić czas magazynowania jaj lub poprawić warunki magazynowania (niższa temperatura, obracanie). 6. Sprawdzać temperaturę pomieszczeń i skorup. 7. Monitorować protokoły bioasekuracji i szczepień. KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 3

4 Nakłuta skorupa: W pełni rozwinięty zarodek żywy lub obumarły w skorupie 1. Niska wilgotność podczas inkubacji lub wykluwania 2. Wysoka temperatura podczas wykluwania 3. Niska temperatura przez długi czas 4. Słaba wentylacja lub nadmierna fumigacja podczas wylęgania 5. Niewystarczające obracanie przez pierwsze 12 dni 6. Nieodpowiednie obchodzenie się z jajami podczas transferu 7. Przedłużające się magazynowanie jaj 8. Fumigacja 9. Jaja nasadzone ostrym końcem w górę 1. Sprawdzać poziom utraty wody w momencie transferu i podczas oceny plonowania piskląt. 2. Sprawdzić profile temperatury. Sprawdzać dokładność 3. Sprawdzić profile temperatury oraz temperaturę skorupy. Sprawdzać dokładność 4. Sprawdzać poziom dwutlenku węgla. 5. Sprawdzić system obracania jaj. 6. Zmniejszyć prędkość tego procesu. 7. Sprawdzić warunki magazynowania jaj, temperaturę (14-16 C), obracanie jaj. 8. Nadmierna fumigacja podczas wylęgania. 9. Sprawdzić zbieranie jaj. Wiele nakłuć; zarodek przyklejony do skorupy 1. Zbyt dużo resztek białka w związku z wysoką wilgotnością względną i/ lub niską temperaturą inkubacji 2. Niska wilgotność podczas wykluwania 1. Monitorować utratę wody podczas transferu i temperaturę zarodka podczas inkubacji. 2. Zalecane ponad 32 C po pojawieniu się pierwszych oznak nakłuwania skorupy. KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 4

5 Mała komora powietrzna w jaju, szeroki obszar nakłuwania skorupy, nie do końca przecięta błona, czerwone stawy skokowe, opuchnięte pisklę, niewchłonięte białko, nie w pełni wciągnięte żółtko, utrata masy jaja <10% 1. Wysoka wilgotność inkubatora 2. Bardzo gruba skorupa 3. Niska temperatura inkubatora 1. Sprawdzać utratę wody podczas transferu do klujnika. 2. Dokonać przeglądu profili. 3. Sprawdzić profil. Sprawdzać dokładność Przedwczesne klucie; krwawe pępki 1. Zbyt wysoka temperatura w inkubatorach lub klujniku 1. Sprawdzać temperaturę skorupy. Sprawdzać dokładność KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 5

6 Strupy na pępku 1. Wysoka temperatura klujnika; pisklę rozwija się szybko i nie w całości wchłania woreczek żółtkowy, wskutek czego powstaje strup 1. Sprawdzić profile temperatury. Sprawdzać dokładność Nitki w pępku 1. Wysoka wilgotność w klujniku; naczynia krwionośne pępowiny nie wysychają i nie odpadają w normalny sposób 1. Dokonać przeglądu profili wilgotności klujnika. Deformacje 1. Transport 2. Żywienie 3. Wysoka lub niska temperatura inkubatora 4. Wentylacja 5. Obracanie jaj 6. Ułożenie jaj 7. Dziedziczność 1. Unikać wstrząsania. Transportować jaja ostrym końcem w dół. 2. Sprawdzić niedobory np. biotyny, ryboflawiny, cynku lub manganu. 3. Sprawdzać temperaturę skorupy. Sprawdzać dokładność 4. Szukać oznak niedostatecznej wentylacji lub skorup z niską porowatością i przepuszczalnością. 5. Sprawdzić system obracania jaj, częstotliwość (24-90 razy dziennie), kąt (45 ). 6. Sprawdzić tace lęgowe pod kątem ułożenia jaj ostrym końcem w górę. KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 6

7 Nieprawidłowe ułożenie: Normalna pozycja dłuższa oś zarodka taka sama jak dłuższa oś jaja; głowa w tępym końcu jaja;głowa na prawo i pod prawym skrzydłem; dziób w kierunku komory powietrznej; stopy w kierunku głowy 1. Jaja inkubowane w odwrotnej pozycji 2. Wysoka temperatura w inkubatorze 3. Niewystarczające lub niewłaściwe obracanie jaj 4. Wysoka wilgotność 5. Jaja o okrągłym kształcie lub bardzo duże jaja 6. Braki żywieniowe 1. Sprawdzić ułożenie jaj na tacach lęgowych. 2. Sprawdzać temperaturę skorupy. Sprawdzać dokładność 3. Sprawdzić system obracania, częstotliwość, kąt. 4. Dokonać przeglądu profili wilgotności klujnika oraz utratę wody podczas transferu. 5. Sprawdzić proces selekcji jaj. 6. Sprawdzić poziom witamin A i B12 oraz kwasu linolowego. Eksplodujące jaja/zbuki 1. Zakażenie w gnieździe 2. Brak higieny, niedokładne umycie lub dezynfekcja z udziałem zakażonego sprzętu 3. Zakażenie w wylęgarni 4. Spocone jaja 5. Zakażenie od wcześniejszych zbuków 1. Nie nakładać jaj z podłoża, sprawdzić częstotliwość zbioru, sprawdzić dezynfekcję gniazda i unikać wilgotnych punktów. 2. Roztwory odkażające w odpowiedniej temperaturze i stężeniu. Często wymieniać roztwory. 3. Dokonać przeglądu programów mycia i dezynfekcji inkubatorów, tac lęgowych i koszy. Nie rozprowadzać skażonego powietrza. 4. Utrzymywać jaja w odpowiedniej temperaturze i unikać silnych fluktuacji. Odpowiednio ocieplić. 5. Jeżeli jajo eksploduje, przed użyciem preparatów dezynfekujących należy usunąć cały materiał organiczny. KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 7

8 Problemy z kończynami 1. Uszkodzenia kończyn podczas wykluwania lub trzymanie piskląt na gładkiej powierzchni 2. Wysokie temperatury 1. Używać podkładek w gładkich tacach lęgowych. 2. Sprawdzać temperaturę skorupy podczas inkubacji i robić przegląd profili wylęgu. Krótki dziób, brak dzioba, zniekształcenia części twarzowej 1. Wysokie temperatury w pierwszych dniach inkubacji 2. Niedobory żywieniowe (niacyna) 3. Dziedziczność 4. Zmiany podczas etapów rozwojowych 1. Sprawdzać temperaturę skorupy. Sprawdzać dokładność 2. Sprawdzić formuły żywieniowe. KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 8

9 Odsłonięty mózg 1. Zbyt wysoka temperatura w 1-3 dniu inkubacji 2. Niski poziom tlenu w 1-3 dniu inkubacji 1. Sprawdzać temperaturę skorupy. Sprawdzać dokładność 2. Sprawdzać wentylację. Czerwone stawy skokowe u wyklutych piskląt lub u niewyklutych, które nakłuły skorupę 1. Wysoka wilgotność inkubatora lub klujnika; pisklęta klują się z nadmiernie powiększonym brzuchem, co utrudnia im opuszczenie skorupy 2. Niska temperatura inkubatora 3. Wysoka temperatura klujnika 4. Przedłużające się wypychanie skorupy podczas fazy kłucia i klucia spowodowane niską wilgotnością w klujniku (długi czas otwarcia okna wylęgu) 5. Niedobory witaminowe 6. Grube skorupy, jak u młodych stad 1. Sprawdzać utratę wody. 2. Sprawdzać temperaturę skorupy. Sprawdzać dokładność 3. Obniżyć temperaturę klujnika. 4. Nasadzić jaja, by wykluwały się w sposób jednorodny. 5. Dokonać przeglądu równowagi substancji odżywczych. 6. Konkretne profile inkubacji. KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 9

10 Krwotok; czerwona skóra; krwawienie błony chorioallantois 1. Czerwona skóra 2. Krwawienie błony chorioallantois 3. Braki żywieniowe 4. Zakażenie grzybicze i bakteryjne 5. Zbyt wysoka temperatura 6. Dziedziczność 1. Sprawdzić, czy temperatura inkubatora lub klujnika nie jest zbyt wysoka. 2. Sprawdzić, czy obchodzenie się z jajami podczas transferu jest prawidłowe. 3. Sprawdzić witaminę K i witaminę E. 4. Wyhodować kultury pleśni lub innych mikroorganizmów wywołujących zakażenia. 5. Sprawdzać temperaturę skorupy. Odsłonięte narządy wewnętrzne 1. Zbyt wysoka temperatura inkubatora 1. Sprawdzać temperaturę zarodka w okresie inkubacji. Sprawdzać dokładność KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 10

11 Nieprawidłowości oczu (brak oka) 1. Wysoka temperatura inkubatora w pierwszym tygodniu 2. Niski poziom tlenu w pierwszym tygodniu 1. Sprawdzać temperaturę skorupy. Sprawdzać dokładność 2. Sprawdzać poziom tlenu. Słabe pisklę 1. Wysoka temperatura klujnika 2. Słaba wentylacja klujnika 3. Nadmierna fumigacja 4. Zakażenie 1. Sprawdzać temperaturę klujnika. Sprawdzać dokładność 2. Sprawdzić profile wentylacji. 3. Sprawdzić dawkowanie i czas wykorzystania wentylacji po każdym transferze. 4. Sprawdzać stan zdrowia. KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 11

12 Klejące pisklęta; pisklęta oblepione białkiem 1. Niska temperatura inkubacji 2. Wysoka wilgotność inkubacji 3. Nieprawidłowe obracanie jaj 4. Niewystarczająca wentylacja lub nadmierna fumigacja 5. Stare jaja 1. Sprawdzać temperaturę skorupy. Sprawdzać dokładność 2. Sprawdzać utratę wody. 3. Sprawdzić system obracania, częstotliwość, kąt. 4. Dokonać przeglądu wentylacji pomieszczenia. Zapewnić dopływ w 100% świeżego, łagodnego powietrza. 5. Unikać wykorzystania jaj magazynowanych zbyt długo. Pisklę utknęło w skorupie, jest suche; pisklę z fragmentami skorupy przyklejonymi do piór 1. Zbyt niska wilgotność podczas inkubacji i/lub klucia się 2. Nieodpowiednie obracanie jaj 3. Popękane jaja lub niska jakość skorupy 1. Sprawdzać utratę wody. Nie wentylować nadmiernie. 2. Sprawdzić system obracania jaj, częstotliwość (minimum 8 razy dziennie), kąt. 3. Często zbierać jaja, zamknąć gniazdo w nocy. Dokonać przeglądu wymagań żywieniowych. KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 12

13 Pisklęta wykluwają się późno 1. Duże jaja i stare stado reprodukcyjne 2. Jaja magazynowane zbyt długo 3. Temperatura inkubacji 4. Wilgotność inkubacji 5. Chów wsobny i/lub słabe zarodki 1. Dokonać przeglądu czasu inkubacji; zarodki mogą wymagać dodatkowej inkubacji. 2. Ocieplić lub preinkubować. 3. Sprawdzać, czy w pierwszym tygodniu temperatura inkubacji nie jest zbyt niska. Sprawdzać dokładność 4. Sprawdzać poziom wilgotności w inkubatorze. Zbyt duży odsetek wczesnych upadków piskląt 1. Nieodpowiednie warunki transportu 2. Pisklęta zbyt długo przetrzymane bez dostępu do paszy i wody 3. Choroby lub zakażenie mikrobami 4. Niewystarczająca sanityzacja wylęgarni 5. Nieodpowiednie żywienie lub zanieczyszczona pasza (leki, fungicydy, trucizny) 1. Monitorować temperaturę i wentylację samochodu transportującego pisklęta. W momencie dostawy temperatura mierzona w odbycie pisklęcia powinna wynosić od 39,4 C do 40,0 C. 2. Pisklęta należy wyciągać z aparatów lęgowych w odpowiednim momencie zgodnie z harmonogramem dostaw. 3. Dokonać przeglądu protokołów bioasekuracji i szczepień. Nasadzać tylko czyste, niepopękane jaja. Sprawdzić programy i jakość żywienia. 4. Dokonać przeglądu protokołów dezynfekcji. Sprawdzić dachy, kanały oraz osłonięte miejsca. 5. Sprawdzić programy i jakość żywienia. Bibliografia Dostępne na życzenie. Hybrid Turkeys Przedstawione tutaj informacje stanowią jedynie zalecenia, które mogą różnić się zależnie od regionu geograficznego. Celem tej karty informacyjnej jest wsparcie hodowców w doskonaleniu produkcji indyka. Jeżeli nie zaznaczono inaczej, przedstawione w niniejszym dokumencie informacje stanowią własność Hybrid Turkeys. Powielanie lub publikacja tego materiału przy użyciu jakichkolwiek środków wymaga zgody Hybrid Turkeys. info.hybrid@hendrix-genetics.com KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 13

14 Bibliografia 1. Abbott, U.K Poultry Digest Anonymous Denver: Robbins Incubator Company. 3. Anonymous Glastonbury, Conn.: Arbor Acres, Inc. 4. Deeming D.C Practical aspects of commercial incubation in poultry. Ed. Deeming D.C. Ratite conference books. Pgs Elibol O., Brake J Poultry Science. vol. 85 no Elibol, O., and J. Brake Br. Poult. Sci. 45: Elibol O. and J. Brake Poultry Science 87: Fauziah O., Purton MD, Solomon SE, 1996: Br. Poult. Sci. 37, Hodgetts B. 1987: Int. Hatch. Pract. 1, (6) Hulet M MPF Convention March Lam KM, Vasconcelos AC, Bickford AA Microb Pathog. 19(3): Mauldin J.M., Poult. Dig. 57, Mauldin J Breakout Analyses Guide for Hatcheries. Bulletin 1166 Cooperative Extension Service The University of Georgia 14. Proudfoot F.G., Stewart DKR, Can. J. Anim. Sci. 50, Oviedo-Rondon EO, Wineland MJ XXIV World s Poultry Congress 5-9 August 2012 Salvador Bahia Brazil 16. Romanoff, A.L., and A.J. Romanoff Pathogenesis of the avian embryo. New York: Wiley-Interscience. 17. Smith TW. Mississippi State University. Publication Tona, K., O. Onagbesan, B. De Ketelaere, E. Decupere and V. Bruggeman, J. Appl. Poult. Res., 13: Wilson, H. R Pgs in Avian Incubation. S.G. Tullett, ed. Butterworth Heinemann, London, UK. 20. Wilson H. R Animal Science Department, Florida Cooperative Extension Service, Institute of Food and Agricultural Sciences, University of Florida. Hybrid Turkeys Przedstawione tutaj informacje stanowią jedynie zalecenia, które mogą różnić się zależnie od regionu geograficznego. Celem tej karty informacyjnej jest wsparcie hodowców w doskonaleniu produkcji indyka. Jeżeli nie zaznaczono inaczej, przedstawione w niniejszym dokumencie informacje stanowią własność Hybrid Turkeys. Powielanie lub publikacja tego materiału przy użyciu jakichkolwiek środków wymaga zgody Hybrid Turkeys. info.hybrid@hendrix-genetics.com KARTA INFORMACYJNA ROZWIĄZYWANIE PROBLEMÓW W ZAKRESIE WYLĘGU 14