ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

Podobne dokumenty
Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

13. TERMODYNAMIKA WYZNACZANIE ENTALPII REAKCJI ZOBOJĘTNIANIA MOCNEJ ZASADY MOCNYMI KWASAMI I ENTALPII PROCESU ROZPUSZCZANIA SOLI

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY (REAKCJA ENZYMATYCZNA I CHEMICZNA)

ANALIZA INSTRUMENTALNA

Ćwiczenie 1. Zależność szybkości reakcji chemicznych od stężenia reagujących substancji.

3. Badanie kinetyki enzymów

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Laboratorium 5. Wpływ temperatury na aktywność enzymów. Inaktywacja termiczna

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Badanie kinetyki inwersji sacharozy

d[a] = dt gdzie: [A] - stężenie aspiryny [OH - ] - stężenie jonów hydroksylowych - ] K[A][OH

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

KATALIZA I KINETYKA CHEMICZNA

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

WYZNACZANIE RÓWNOWAŻNIKA CHEMICZNEGO ORAZ MASY ATOMOWEJ MAGNEZU I CYNY

Ćwiczenie 7. Wyznaczanie stałej szybkości oraz parametrów termodynamicznych reakcji hydrolizy aspiryny.

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Katedra Chemii Analitycznej Metody elektroanalityczne. Ćwiczenie nr 5 WOLTAMPEROMETRIA CYKLICZNA

A4.05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

Laboratorium Inżynierii Bioreaktorów

Ćwiczenie 1. Badanie wypierania wodoru z wody za pomocą metali

Nazwa kwalifikacji: Przygotowywanie sprzętu, odczynników chemicznych i próbek do badań analitycznych Oznaczenie kwalifikacji: A.59 Numer zadania: 01

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

Polarymetryczne oznaczanie stężenia i skręcalności właściwej substancji optycznie czynnych

A4.04 Instrukcja wykonania ćwiczenia

KINETYKA INWERSJI SACHAROZY

RÓWNOWAGA I SZYBKOŚĆ REAKCJI CHEMICZNEJ

Ćwiczenie 3: Ocena fizykochemiczna nawozów stałych fosforowych różne formy P 2 O 5

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Izoterma rozpuszczalności w układzie trójskładnikowym

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

ALGALTOXKIT F Procedura testu

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 5

BADANIE WŁASNOŚCI KOENZYMÓW OKSYDOREDUKTAZ

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI SŁABEGO KWASU ORGANICZNEGO

ANALIZA SPEKTRALNA I POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE. Instrukcja wykonawcza

WPŁYW ILOŚCI MODYFIKATORA NA WSPÓŁCZYNNIK RETENCJI W TECHNICE WYSOKOSPRAWNEJ CHROMATOGRAFII CIECZOWEJ

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

ANALIZA TŁUSZCZÓW WŁAŚCIWYCH CZ II

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 ZASADY OCENIANIA

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

PRZEWODNOŚĆ ROZTWORÓW ELEKTROLITÓW

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

CEL ĆWICZENIA Zapoznanie studentów z chemią 14 grupy pierwiastków układu okresowego

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

VI. OCENA NARAŻENIA ZAWODOWEGO I ŚRODOWISKOWEGO NA DZIAŁANIE KSENOBIOTYKÓW

Kinetyka chemiczna jest działem fizykochemii zajmującym się szybkością i mechanizmem reakcji chemicznych w różnych warunkach. a RT.

Wyznaczanie stałej dysocjacji pk a słabego kwasu metodą konduktometryczną CZĘŚĆ DOŚWIADCZALNA. Tabela wyników pomiaru

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Laboratorium 8. Badanie stresu oksydacyjnego jako efektu działania czynników toksycznych

Laboratorium Budownictwa WBiA

XXIV KONKURS CHEMICZNY DLA GIMNAZJALISTÓW ROK SZKOLNY 2016/2017

RSM ROZTWÓR SALETRZANO-MOCZNIKOWY

Transkrypt:

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji Odczynniki chemiczne związek kompleksowy [CoCl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 ; stężony HNO 3 (16M); Szkło i sprzęt laboratoryjny kolby miarowe 50 ml (6 sztuk), stoper, spekol, kuwety plastikowe, pipeta automatyczna (5mL), tipsy, probówki z korkiem (4 sztuki) waga analityczna, spekol, termostat, stoper; Uwaga: Prowadzący podejmuje decyzję o wyborze procedury II-A. Wpływ stężenia kwasu 1. Przygotować stoper. 2. Ustawić termostat łaźni wodnej na 60 C. 3. Przygotować w trzy naważki związku kompleksowego [CoCl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 w taki sposób, aby po rozpuszczeniu ich w 50 ml roztworze kwasu azotowego(v) otrzymać roztwory o stężeniach 0.015 M. 4. Przygotować w trzech oznakowanych kolbach miarowych o objętości 50 ml roztwory HNO 3 o stężeniach odpowiednio 0.10 M (a-i), 0.30 M (a-ii) i 0.50 M (a-iii) wykorzystując stężony HNO 3 (16M). 5. Umieścić wszystkie kolby zawierające kwas w termostatowanej łaźni wodnej (uważając, aby się nie przewróciły) i poczekać, aż temperatura roztworów osiągnie wymaganą wartość. 6. Włączyć spekol 10 minut przed pomiarem.

7. Skalibrować spekol na pustą kuwetę ustawiając długość fali 550 nm (lub zakres fali 350 700 nm jeśli pomiar wykonywany jest na spektrofotometrze). 8. Gdy temperatura wszystkich roztworów kwasu osiągnie wymaganą wartość, rozpuścić pierwszą naważkę związku kompleksowego [CoCl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 w pierwszym roztworze termostatowanego kwasu i zawartość kolby dokładnie wymieszać (roztwór a-i). 9. Odmierzyć do suchej kuwety 2 cm 3 otrzymanego roztworu, kuwetę włożyć do spekola, odczytać wartość absorbancji (A o ) i zapisać godzinę (t o ). 10. Pozostałą ilość roztworu soli włożyć na powrót do termostatowanej łaźni wodnej. 11. Kolejno w 5-cio minutowych odstępach czasu należy pobierać po 2 ml-porcje odpowiedniego roztworu, umieszczać w kuwecie, odczytywać wartość absorbcji zapisując jednocześnie godzinę. W taki sposób zarejestrować ok. 10 (lub 20) pomiarów. Po odpipetowaniu 2 ml roztworu, pozostałą ilość roztworu należy każdorazowo zamknąć szczelnie w kolbie miarowej i na powrót umieścić go w termostacie. 12. Zapisywać dokładny czas, a uzyskane wyniki zamieścić w dzienniku laboratoryjnym. 13. Procedurę opisaną w punktach 1-12 powtórzyć dla pozostałych dwóch (a-ii i a-iii) roztworów kompleksów w kwasie. 14. Po 3 godzinach zarejestrować dla wszystkich uzyskanych roztworów ostatnią wartość absorbancji (A ) i godzinę (t ). pomiar [H + ] kompleks T [ 0 C] k obs a-i 0.1 M 0.015 M 60 a-ii 0.3 M 0.015 M 60 a-iii 0.5 M 0.015 M 60 II-B. Wpływ stężenia kompleksu 1. Przygotować stoper. 2. Ustawić termostat łaźni wodnej na 60 C. 3. Przygotować w trzech oznakowanych kolbach naważki związku kompleksowego [CoCl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 w taki sposób, aby po rozpuszczeniu ich w 50 ml roztworze kwasu

azotowego(v) otrzymać roztwory o stężeniach kompleksu wynoszących odpowiednio 0.005 M (b-i), 0.010 M (b-ii) i 0.015 M (b-iii). 4. Przygotować w trzech oznakowanych kolbach miarowych o objętości 50 ml roztwory HNO 3 o stężeniu 0.30 M wykorzystując stężony HNO 3 (16M). 5. Umieścić wszystkie kolby zawierające kwas w termostatowanej łaźni wodnej (uważając, aby się nie przewróciły) i poczekać, aż temperatura roztworów osiągnie wymaganą wartość. 6. Włączyć spekol 10 minut przed pomiarem. 7. Skalibrować spekol na pustą kuwetę ustawiając długość fali 550 nm (lub zakres fali 350 700 nm jeśli pomiar wykonywany jest na spektrofotometrze). 8. Gdy temperatura wszystkich roztworów kwasu osiągnie wymaganą wartość, rozpuścić pierwszą naważkę związku kompleksowego [CoCl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 w roztworze termostatowanego kwasu (b-i) i zawartość kolby dokładnie wymieszać. 9. Odmierzyć do suchej kuwety 2 cm 3 otrzymanego roztworu, kuwetę włożyć do spekola, odczytać wartość absorbancji (A o ) i zapisać godzinę (t o ). 10. Pozostałą ilość roztworu soli włożyć na powrót do termostatowanej łaźni wodnej. 11. Kolejno w 5-cio minutowych odstępach czasu należy pobierać po 2 ml-porcje odpowiedniego roztworu, umieszczać w kuwecie, odczytywać wartość absorbcji zapisując jednocześnie godzinę. W taki sposób zarejestrować ok. 10 pomiarów. Po odpipetowaniu 2 ml roztworu należy każdorazowo zamknąć kolbę miarową i na powrót umieścić ją w termostacie. 12. Zapisywać dokładny czas, a uzyskane wyniki zamieścić w dzienniku laboratoryjnym. 13. Opisaną w punktach 1-12 procedurę przeprowadzić dla pozostałych dwóch roztworów kompleksów w kwasie (b-ii i b-iii). 14. Po 3 godzinach zarejestrować dla wszystkich uzyskanych roztworów ostatnią wartość absorbancji (A ) i godzinę (t ). pomiar [H + ] kompleks T [ 0 C] k obs b-i 0.3 M 0.005 M 60

b-ii 0.3 M 0.010 M 60 b-iii 0.3 M 0.015 M 60 II-C. Wpływ temperatury 1. Przygotować stoper. 2. Ustawić termostat łaźni wodnej na 45 C (c-i). 3. Przygotować w trzech oznakowanych kolbach naważki związku kompleksowego [CoCl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 w taki sposób, aby po rozpuszczeniu ich w 50 ml roztworze kwasu azotowego(v) otrzymać trzy roztwory o stężeniu 0.010 M. 4. Przygotować w trzech oznakowanych kolbach miarowych o objętości 50 ml roztwory HNO 3 o stężeniu 0.30 M wykorzystując stężony HNO 3 (16M). 5. Umieścić wszystkie kolby zawierające kwas w termostatowanej łaźni wodnej (uważając, aby się nie przewróciły) i poczekać, aż temperatura roztworów osiągnie wymaganą wartość. 6. Włączyć spekol 10 minut przed pomiarem. 7. Skalibrować spekol na pustą kuwetę ustawiając długość fali 550 nm (lub zakres fali 350 700 nm jeśli pomiar wykonywany jest na spektrofotometrze). 8. Gdy temperatura wszystkich roztworów kwasu osiągnie wymaganą wartość, rozpuścić pierwszą naważkę związku kompleksowego [CoCl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 w roztworze termostatowanego kwasu i zawartość kolby dokładnie wymieszać. 9. Odmierzyć do suchej kuwety 2 cm 3 otrzymanego roztworu, kuwetę włożyć do spekola, odczytać wartość absorbancji (A o ) i zapisać godzinę (t o ). 10. Pozostałą ilość roztworu soli włożyć na powrót do termostatowanej łaźni wodnej. 11. Kolejno w 5-cio minutowych odstępach czasu należy pobierać po 2 ml-porcje odpowiedniego roztworu, umieszczać w kuwecie, odczytywać wartość absorbcji zapisując jednocześnie godzinę. W taki sposób zarejestrować ok. 10 pomiarów. Po odpipetowaniu 2 ml roztworu należy każdorazowo zamknąć kolbę miarową i na powrót umieścić ją w termostacie. 12. Zapisywać dokładny czas, a uzyskane wyniki zamieścić w dzienniku laboratoryjnym. 13. Po wykonaniu pomiarów w danej temperaturze ustawić termostat łaźni wodnej na 55 C i powtórzyć procedurę opisaną w punktach 8 12.

14. Punkt 13 powtórzyć dla temperatury 65 C 15. Po 3 godzinach zarejestrować dla wszystkich uzyskanych roztworów (termostatowanych w danej temperaturze ostatnią wartość absorbancji (A ) i godzinę (t ). pomiar [H + ] kompleks T [ 0 C] k obs c-i 0.3 M 0.010 M 45 c-ii 0.3 M 0.010 M 55 c-iii 0.3 M 0.010 M 65 Opracowanie wyników 1. Wartość molowego współczynnika ekstynkcji przy 550 nm dla kompleksu [CoCl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 wynosi = 2.10 [m 2 mol -1 ]. 2. Z wartości molowego współczynnika ekstynkcji wyznaczyć wartość A 0. 3. Na podstawie uzyskanych wyników przygotować i uzupełnić poniższą tabelę: czas t [s] (A t ) (A t A 0 ) ln(a t A 0 ) (A t A 0 ) 1 4. Sporządzić 3 wykresy zależności: a) (A t A 0 ) = f(t); b) ln(a t A 0 ) = f(t); c) (A t A 0 ) 1 = f(t) i na tej podstawie określić rząd reakcji. 5. Na podstawie odpowiedniego wykresu wyznaczyć wartość stałej szybkości reakcji akwatacji. 6. Napisać ogólne wyrażenie obrazujące szybkość badanej reakcji. 7. Wyjaśnić, dlaczego do przygotowania roztworów zastosowano HNO 3, a nie HCl. 8. Podać zapis reakcji akwatacji i zaproponować mechanizm.

Literatura 1. Wilkinson G.; Gillard R.D.; McClevery J.A., Comprehensive Coordination Chemistry; Pergamon Press, Oxford, 1:1-31; 2:23; 4:817 (1987). 2. Butler I.S.; Harrod J.F., Inorganic Chemistry; Benjamin/Cummings, Redwood City, Ca, 189ff (1989). 3. Nakamoto K., Infrared and Raman Spectra of Inorganic and Coordination Compounds; Wiley, New York (1997). 4. Huheey J.E., Inorganic Chemistry, 3 rd Ed.; Harper & Row: New York, 524 (1983). 5. Szczepaniak W., Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN, Warszawa, (1998). 6. Cyga ski A., Metody elektroanalityczne, WNT, Warszawa (1991). 7. Gran G., Determination of the Equivalence Point In Potentiometric Titrations. Part II in Analyst, 77:661 (1952).