właściwości i zalety

Funkcje aminokwasów Kwas asparginowy, Treonina Kwas glutaminowy Arginina Cysteina, Histydyna Fenyloalanina Glicyna Alanina Lizyna Metionina Prolina i hydroksyprolina Seryna Tryptofan, Walina stymuluje kiełkowanie czynnik chelatujący, stymulator wzrostu, stymuluje kiełkowanie, stanowi pulę rezerwową azotu organicznego niezbędnego do syntezy innych aminokwasów i białek odporność na zimno, prekursor poliamin: niezbędna do rozpoczęcia podziałów komórkowych czynnik chelatujący stymuluje kiełkowanie, prekursor tworzenia ligniny i tkanek zdrewniałych czynnik chelatujący, jest prekursorem chlorofilu odporność na chłód, stymuluje syntezę chlorofilu, odgrywa ważną rolę w metabolizmie hormonów i pobudzaniu mechanizmu odporności na wirusy czynnik chelatujący, stymuluje syntezę chlorofilu, stymuluje kiełkowanie stymuluje kiełkowanie; stymuluje syntezę etylenu działanie antystresowe, poprawia rozwój generatywny roślin lub plenność roślin pyłku i zawiązywanie owoców, reguluje równowagę wodną w roślinie prekursor auksyn, uczestniczy w regulacji równowagi wodnej, niezbędna do syntezy chlorofilu prekursor auksyn

Metody przemysłowego uzyskiwania aminokwasów Enzymy PRO TE INY Rodzaj hydrolizy Chemiczna Enzymatyczna Wysoka temperatura TAK NIE ph procesu ph ~ 2 lub 12 neutralne Czynnik hydrolizujący Silne zasady i kwasy Wyselekcjonowane enzymy Neutralizacja ph solami TAK NIE Aktywność biologiczna aminokwasów Wysoki udział aminokwasów prawoskrętnych i zdegradowanych Większość aminokwasów w postaci lewoskrętnej, biologicznie aktywnej

Dolistny koncentrat aminokwasów ZALETY STOSOWANIA: Odżywia azotem Zwiększa odporność na stresy Pełni funkcję adjuwanta Mieszalny z nawozami dolistnymi i ŚOR Dawka: 1-1,5/ha Rozpuszczalny w wodzie azot organiczny Suma aminokwasów (większość w formie lewoskrętnej) 9% >50% Węgiel organiczny >24,5% ph w wodzie 5-6 Zasolenie 0,6-0,8 ds/m

Aminogram

Aminokwasy - nośniki metali bez wad najszybsze wnikanie do rośliny aminokwas jest budulcem białek całkowicie obojętny dla środowiska substancja perpetuum mobile - nic się nie marnuje po 6 godzinach składnik jest już wykorzystywany przez roślinę Ca, Mg, Fe, Mn, Zn, B

Aminokwasy - nośniki metali wyniki Pobranie żelaza (Fe) z różnych form nawozów dolistnych, po 8 godzinach

Trwale zwilża powierzchnię liścia Kontrola NaturalCropSL Wzrost przyczepności i trwałe zwilżenie powierzchni Powłoka polipeptydowa zapobiega parowaniu cieczy Odporność na spłukiwanie

Produkt wprowadzony do obrotu handlowego na terenie Polski, na podstawie Artykułu 5 Ustawy o Nawozach i Nawożeniu z 10 lipca 2007 r Produkt dopuszczony do stosowania w rolnictwie ekologicznym decyzja NE/210/2012 IUNG Puławy

Wyższa efektywność ochrony przed chwastami Czynniki powodujące fitotoksyczność herbicydów sulfonylomocznikowych: Przedawkowanie Zbyt wczesne zastosowanie na rośliny nie zaawansowane we wzroście Użycie niewłaściwej substancji wspomagającej (np. adiuwantu) Zahamowanie wzrostu (skarlenie), chlorozy i purpurowe liście Chlorotyczne plamy u podstawy liścia

Wyższa efektywność ochrony przed chwastami NIE TRAKTOWANA HERBICYDEM ROŚLINA Enzym ALS/AHAS ROŚLINA PO HERBICYDZIE SULFONYLOMOCZNIKOWYM Enzym ALS/AHAS Substrat: purywat/treonina herbicyd leucyna walina izoleucyna leucyna walina izoleucyna Leucyna 21,8 g/l Izoleucyna 14,5 g/l Walina 9,7 g/l

Wyniki doświadczenia w kukurydzy 2014 Instytut Ochrony Roślin Poznań 120 Średnia masa i wysokość rośliny (08.07.2014) 123,1 100 80 99,1 98,6 85 83,9 92,3 60 40 20 0 Średnia masa (dag) Średnia wysokość (cm) Kontrola dikamba + nikosulfuron + rimsulfuron dikamba + nikosulfuron + rimsulfuron + koncentrat aminokwasów

Wyniki doświadczenia w kukurydzy 2014 Instytut Ochrony Roślin Poznań 3 Masa kolb z 2 mb. rzędu 2,28 2,45 2 1,71 1 0 Kontrola dikamba + nikosulfuron + rimsulfuron dikamba + nikosulfuron + rimsulfuron + koncentrat aminokwasów

Pobieranie aminokwasów przez rośliny Już w połowie ubiegłego wieku zaobserwowano, że rośliny są zdolne pobierać aminokwasy (Virtanen i Linkola 1946). W ostatnich kilkunastu latach zagadnieniu pozyskiwania aminokwasów przez korzenie roślin poświęcono wiele prac, w których wykazano, że aminokwasy mogą być pobierane w relatywnie znaczących ilościach zarówno w warunkach laboratoryjnych (np. Persson i Näsholm 2001), jak i w warunkach polowych (np. Näsholm i współaut. 1998). W badaniach na pszenicy wykazano, że także rośliny hodowlane mogą pobierać około 20% podawanej glicyny bez uprzedniej mineralizacji (Näsholm i współaut. 2001). Za pobieraniem aminokwasów w warunkach naturalnych z gleby przemawia także fakt, że ilość nieorganicznego azotu w glebie niektórych ekosystemów nie zaspokaja potrzeb roślin, co wskazuje, że rośliny muszą pobierać także azot organiczny (Kielland 1994). Obecnie wiadomo, że azot organiczny pod postacią aminokwasów może być znaczącym źródłem azotu w odżywianiu roślin (Lipson i Näsholm, 2001). Jednak w materii organicznej gleby azot organiczny występuje głównie w formie białek (Kaye i Hart 1997), a wolne aminokwasy w glebie powstają w wyniku hydrolizy białek i peptydów, katalizowanej przez proteazy wydzielane przez mikroorganizmy. Jednak badania przeprowadzone kilka lat temu wskazują na korzenie roślin jako dodatkowe źródło proteaz (Godlewski i Adamczyk 2007). Wyniki te zostały potwierdzone także przez Paungfoo-Lonhienne i współaut. (2008) rok później. Wydzielanie enzymów proteolitycznych z pewnością może mieć znacznie w odżywianiu azotowym roślin, na co wskazują badania wykonane na sterylnych hodowlach pszenicy, w których siewki Triticum aestivum osiągały największą masę na podłożu Murashige i Skoog a, w którym zastąpiono azot nieorganiczny białkiem (kazeiną). Obecność kazeiny w podłożu rekompensowała brak azotu nieorganicznego (Adamczyk i współaut. 2008). Badania zjawiska Wydzielania enzymow proteolitycznych do podłoża sugerują, że w sterylnych warunkach rośliny mogą skutecznie wykorzystywać białka podłoża jako źródło azotu.

Aminokwasy pochodzenia zwierzęcego i roślinnego porównanie Giuseppe Colla - Characterization & analytical methods the case of amino acids/ hydrolyzed proteins, 2014 EBIC Workshop, Brussels

WYNIKI POLOWE

RZEPAK OZIMY NOWE MIASTO LUBAWSKIE GR MARIAN ZELLMA

2015.02.19 NOWE MIASTO LUBAWSKIE GR MARIAN ZELLMA

Liczba rozgałęzień na roślinie - 2015.07.02 NOWE MIASTO LUBAWSKIE GR MARIAN ZELLMA 18 16 14 12 10 8 6 4 2 0 17 14 liczba rozgałęzień/roślinę kontrola NATURALCROP SL

Liczba łuszczyn na roślinie - 2015.07.02 NOWE MIASTO LUBAWSKIE GR MARIAN ZELLMA 600 571 500 465 400 300 200 100 0 kontrola liczba łuszczyn/roślinę NATURALCROP SL