1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

Podobne dokumenty
OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Laboratorium Podstaw Biofizyki

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

ANALIZA INSTRUMENTALNA

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Przebieg ćwiczeń z Oceanografii Chemicznej w roku akademickim 2012/2013

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

PRZEWODNOŚĆ ROZTWORÓW ELEKTROLITÓW

Laboratorium z bionanostruktur. Prowadzący: mgr inż. Jan Procek Konsultacje: WT D- 1 8A

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

Laboratorium z biofizyki

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

PODSTAWY LABORATORIUM PRZEMYSŁOWEGO. ĆWICZENIE 3a

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 8. Argentometryczne oznaczanie chlorków metodą Fajansa

HODOWLA PERIODYCZNA DROBNOUSTROJÓW

Badanie kinetyki inwersji sacharozy

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z FIZYKOCHEMICZNYCH PODSTAW ŻYCIA DLA STUDENTÓW I ROKU BIOLOGII OGÓLNEJ, BIOTECHNOLOGII I BIOINFORMATYKI

Potencjometryczna metoda oznaczania chlorków w wodach i ściekach z zastosowaniem elektrody jonoselektywnej

Analiza środowiskowa, żywności i leków CHC l

KALIBRACJA. ważny etap procedury analitycznej. Dr hab. inż. Piotr KONIECZKA

KOROZJA. Korozja kontaktowa z depolaryzacja tlenową 1

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 5

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Ćw. 5 Absorpcjometria I

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

ĆWICZENIE 11. ANALIZA INSTRUMENTALNA KOLORYMETRIA - OZNACZANIE Cr(VI) METODĄ DIFENYLOKARBAZYDOWĄ. DZIAŁ: Kolorymetria

Jod. Numer CAS:

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Adsorpcja kwasu octowego na węglu aktywnym. opracowała dr hab. Małgorzata Jóźwiak

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

K1. KONDUKTOMETRYCZNE MIARECZKOWANIE STRĄCENIOWE I KOMPLEKSOMETRYCZNE

TARNOWSKI KONKURS CHEMICZNY PWSZ w Tarnowie etap II część doświadczalna

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 ZASADY OCENIANIA

Podstawy chemii analitycznej: dysocjacja, hydroliza, roztwory buforowe

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Laboratorium Podstaw Biofizyki Pomiar potencjału dyfuzyjnego i błonowego 4

TWARDOŚĆ WODY. Ca(HCO 3 ) HCl = CaCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2. Mg(HCO 3 ) 2 + 2HCl = MgCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA. Spektrofluorymetryczne oznaczanie ryboflawiny.

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z CHEMII OGÓLNEJ I ANALITYCZNEJ DLA STUDENTÓW I ROKU OCHRONY ŚRODOWISKA

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Pomiary spektrofotometryczne

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

Trichlorek fosforu. metoda oznaczania dr EWA GAWĘDA Centralny Instytut Ochrony Pracy Państwowy Instytut Badawczy Warszawa ul.

K02 Instrukcja wykonania ćwiczenia

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 6. Manganometryczne oznaczenia Mn 2+ i H 2 O 2

RSM ROZTWÓR SALETRZANO-MOCZNIKOWY

Nazwa kwalifikacji: Przygotowywanie sprzętu, odczynników chemicznych i próbek do badań analitycznych Oznaczenie kwalifikacji: A.59 Numer zadania: 01

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Oznaczanie chlorowodoru w powietrzu atmosferycznym

TRANSPORT NIEELEKTROLITÓW PRZEZ BŁONY WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PRZEPUSZCZALNOŚCI

Transkrypt:

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH 1.1. przygotowanie 20 g 20% roztworu KSCN w wodzie destylowanej 1.1.1. odważenie 4 g stałego KSCN w stożkowej kolbie ze szlifem 1.1.2. odważenie 16 g wody destylowanej do kolby z odważonym KSCN (roztwór A ) 1.2 przygotowanie wodno-acetonowego (1:1, w:w) 20% roztworu KSCN 1.2.1. odważenie 30g stałego KSCN do stożkowej kolby ze szlifem 1.2.2. odmierzenie cylindrem miarowym 60 ml wody destylowanej do kolby z odważonym KSCN 1.2.3. odmierzenie cylindrem miarowym 76 ml acetonu do kolby z wodnym roztworem KSCN (roztwór B ) Konieczne jest umycie szkła wodnym roztworem detergentu oraz DOKŁADNE wypłukanie wodą kranową i destylowaną przed przystąpieniem do wykonania ćwiczenia. Roztwory powinny po przygotowaniu być przechowywane w zamkniętych naczyniach aceton charakteryzuje się wysoką prężnością par w temperaturze pokojowej i wraz z postępem ćwiczenia stosunek acetonu do wody może ulec zmianie.

2. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW DO BADAŃ JAKOŚCIOWYCH 2.1. Do zlewek - wprowadzić po wzorca 2.2. Do zlewek - wprowadzić po wzorca 2.3. Do zlewki oraz dodać 4.00 ml roztworu A 2.4. Do zlewki oraz dodać 4.00 ml roztworu B A B A B C D Nie należy pobierać roztworów wzorcowych oraz bezpośrednio z kolb miarowych. Należy niewielkie ilości roztworu (ok. 10 ml) przelać do uprzednio opłukanych i wysuszonych i podpisanych zlewek. Wszystkie używane zlewki (á 25.00 ml) powinny być opłukane wodą destylowaną i wysuszone. Objętość (i mniejsze) powinna być odmierzona za pomocą automatycznej pipety wielomiarowej na (1000 µl) W celu uniknięcia kontaminacji roztworów wzorcowych należy używać oddzielnych końcówek do pipet dla każdego roztworu. Objętość 4.00 ml powinna zostać odmierzona za pomocą automatycznej pipety wielomiarowej na 5.00 ml Po przygotowaniu roztworów w zlewkach (wymieszać zawartość!!!) należy przenieść je do kuwet pomiarowych po sztuce na roztwór. Kuwety powinny być wypełnione w co najmniej 95%. Pomiar spektrofotometryczny wymaga zarejestrowania w pamięci urządzenia tzw. wartości blank roztworu którego absorbancja wynosi 0 w całym zakresie rejestrowanego widma. Tą czynność w pomiarach jakościowych przeprowadza się z użyciem kuwety wypełnionej wodą destylowaną. Przed pomiarem spektrofotometrycznym grupa powinna posiadać 4 kuwety z roztworami + 1 kuwetę z wodą destylowaną. Po zarejestrowaniu 4 widm, w zlewkach i należy rozpuścić niewielkie ilości kwasu askorbinowego (Asystent!!!) i zarejestrować dodatkowe dwa widma dla nowootrzymanych roztworów. Po zarejestrowaniu 6 widm należy zawartość ekranu wydrukować i przedstawić asystentowi prowadzącemu ćwiczenie. Zapisać wyniki w miejscu wskazanym przez asystenta.

3. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW DO BADAŃ ILOŚCIOWYCH 3.1. Roztwory do ilościowych oznaczeń jonów 3.1.1. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.1.2. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.1.3. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.1.4. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.1.5. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.1.6. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.1.7. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.1.8. Do zlewki wprowadzić 0,90 ml wzorca oraz 0,10 ml 0,1 mol/l 3.1.9. Do zlewki wprowadzić wzorca 3.1.10. Do zlewki wprowadzić 0,1 mol/l 3.1.11. Do zlewek - dodać po 4,00 ml roztworu B 3.1.12. Do zlewki dodać 4,00 ml roztworu B 0,90 ml 0,10 ml Pomiar spektrofotometryczny przeprowadza się analogicznie jak w części dotyczącej badań jakościowych. Jako wzorzec braku absorbancji ( blank ) w tym przypadku powinien zostać użyty roztwór ślepej próby roztwór

3.2. Roztwory do ilościowych oznaczeń jonów 3.2.1. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.2.2. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.2.3. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.2.4. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.2.5. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.2.6. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.2.7. Do zlewki wprowadzić wzorca oraz 0,1 mol/l 3.2.8. Do zlewki wprowadzić 0,90 ml wzorca oraz 0,10 ml 0,1 mol/l 3.2.9. Do zlewki wprowadzić wzorca 3.2.10. Do zlewki wprowadzić 0,1 mol/l 3.2.11. Do zlewek - dodać po 4,00 ml roztworu B 3.2.12. Do zlewki dodać 4,00 ml roztworu B 3.2.13. W zlewkach - rozpuścić niewielkie ilości kwasu askorbinowego + AA + AA + AA + AA + AA 0,90 ml 0,10 ml + AA + AA + AA + AA + AA Pomiar spektrofotometryczny przeprowadza się analogicznie jak w części dotyczącej badań jakościowych. Jako wzorzec braku absorbancji ( blank ) w tym przypadku powinien zostać użyty roztwór ślepej próby roztwór

3.3. Roztwory do ilościowych oznaczeń próbek stopów 3.3.1.1. Do zlewki -1 wprowadzić próbki 1 (P1) 3.3.1.2. Do zlewki -2 wprowadzić próbki 1 (P1) 3.3.1.3. Do zlewki -3 wprowadzić próbki 1 (P1) 3.3.2.1. Do zlewki -1 wprowadzić próbki 2 (P2) 3.3.2.2. Do zlewki -2 wprowadzić próbki 2 (P2) 3.3.2.3. Do zlewki -3 wprowadzić próbki 2 (P2) 3.3.3.1. Do zlewki -1 wprowadzić próbki 3 (P3) 3.3.3.2. Do zlewki -2 wprowadzić próbki 3 (P3) 3.3.3.3. Do zlewki -3 wprowadzić próbki 3 (P3) 3.3.4. Do zlewek -1--3 dodać po 4.00 ml roztworu B 3.3.5. Przygotowanymi roztworami napełnić przygotowane kuwety. 3.3.6. W zlewkach -1--3 rozpuścić niewielkie ilości kwasu askorbinowego. 3.3.7. Przygotowanymi roztworami napełnić kolejne, przygotowane kuwety. P1 P2 P3 3 serie P1 P2 P3 3 serie + AA + AA + AA Po wykonaniu ćwiczenia, zebrane dane zostaną przesłane mailem przez asystenta.

INSTRUKCJA WYKONANIA OPISU Wykonać wykresy zależności absorbancji względem długości fali dla roztworów przygotowanych w jakościowej części ćwiczenia. Na podstawie tych zależności omówić celowość stosowania rozpuszczalników organicznych, użycie substancji maskujących oraz zastosowanie w obliczeniach prawa addytywności absorbancji. Wyznaczyć wartości (MOLOWE współczynniki absorbcji) dla i w metodzie rodankowej, wiedząc, że stężenia wzorców wynoszą odpowiednio [Fe]=10 mg/l, [Co]=50 mg/l a długość drogi optycznej wynosi 10 mm. Dla wybranych do oznaczeń ilościowych serii pomiarowych ustalić optymalną długość fali dla oznaczeń i, wykreślić krzywe wzorcowe (2 oddzielne wykresy zawierające po 9 punktów kalibracyjnych + 3 punkty dla próbek / na wykresach mają się znaleźć średnie wartości absorbancji dla badanych próbek z odchyleniem standardowym zmierzonej absorbancji). Na wykresach muszą znaleźć się: równanie prostej przechodzącej przez punkty eksperymentalne dla wzorców (wyznaczoną metodą najmniejszych kwadratów), współczynnik korelacji R 2 dla krzywej. W oparciu o wybraną serię pomiarów wyznaczyć stężenie i w analizowanych roztworach na podstawie krzywych wzorcowych. Wiedząc, że badane próbki uzyskano rozpuszczając próbki stopów Co/Fe w 200 ml kwasu azotowego (V), oblicz ich masę i skład procentowy. Jeżeli opis nie będzie zawierał wszystkich wymienionych punktów, nalicza się punkty ujemne za każdy stwierdzony brak. W ramach oceny za opis będzie brana pod uwagę: dokładność oznaczenia - jeden punkt (z dwóch) za uzyskanie wyniku z dokładnością lepsza/równą 5% (w przypadku uzyskania większej rozbieżności przewiduje się możliwość uzyskania 0.5 punktu za prawidłowe wyjaśnienie przyczyn błędu) staranność wykonania ćwiczenia jeden punkt (z dwóch) za uzyskanie krzywych kalibracji o współczynniku korelacji R 2 lepszym niż 0.98 (po pół punktu za oznaczenie kobaltu(ii) i żelaza(iii)) Obliczenia stężeń proszę wykonywać w jednostkach mg/l (ppm). Takie też proszę przygotowywać rysunki. W przeciwnym wypadku można zapomnieć o zaliczeniu opisu na +2.