BIOCOUNT. Agar...15,00 ph 6,0± 0,2

Transkrypt

1 BIOCOUNT Biocount (Baird Parker Agar + Neutral.); Biocount (CHROMagar E. coli); Biocount (CHROMagar Listeria); Biocount (CHROMagar Pseudomonas); Biocount (CHROMagar Salmonella); Biocount (CHROMagar Staph aureus); Biocount (Chromogenic Coliform Agar); Biocount (MacConkey Agar + Neutral.); Biocount (MSA + Neutral.); Biocount (MSA) ;Biocount (PCA); Biocount (Pseudomonas Agar + Cetrymid); Biocount (Sabouraud + CH + Neutral.); Biocount (Sabouraud + CH); Biocount (Sabouraud + Neutral.); Biocount (Sabouraud); Biocount (TSA + Neutral.); Biocount (TSA); Biocount (VRBG + Neutral.) WPROWADZENIE I ZASADA DZIAŁANIA Podłoże na płytkach odciskowych Biocount ma średnicę około 55 mm oraz menisk wypukły. Pozwala to na bezpieczne pobieranie materiału do kontroli higieny dłoni, powierzchni sprzętu, stołów, podłóg i ścian metodą odciskową. Siatka na dnie płytki ułatwia policzenie kolonii. Po inkubacji kolonie które pojawiły się na podłożu zostają zliczone. Dla ułatwienia przeliczeń liczby kolonii na cm², dno płytki zostało podzielone siatką na kwadraty o powierzchni 1 cm². Powierzchnia całkowita płytki wynosi 25 cm. Są to podłoża przeznaczone zarówno do ogólnej, jak i selektywnej hodowli drobnoustrojów (m.in. do ogólnej liczby drobnoustrojów, drożdży i pleśni, bakterii z grupy Coli, Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp., Staphylococcus spp., Salmonella spp. Salmonella, Listeria spp.). WERSJE ZESTAWÓW REF 40327/P Biocount (Baird Parker Agar + Neutral.) REF 40414/P Biocount (CHROMagar E. coli) REF 40430/P Biocount (CHROMagar Listeria) REF 40382/P Biocount (CHROMagar Pseudomonas) REF 40420/P Biocount (CHROMagar Salmonella) REF 40425/P Biocount (CHROMagar Staph aureus) REF 40413/P Biocount (Chromogenic Coliform Agar) REF 40482/P Biocount (MacConkey + Neutral.) REF 40480/P Biocount (MSA) REF 40479/P Biocount (MSA + Neutral.) REF 40311/P Biocount (PCA) REF 40481/P Biocount (Pseudomonas + Cetrymid) REF 40097/P Biocount (Sabouraud + CH + Neutral.) REF 40104/P Biocount (Sabouraud + CH) REF 40103/P Biocount (Sabouraud + Neutral.) REF 40101/P Biocount (Sabouraud) REF 40102/P Biocount (TSA + Neutral.) REF 40100/P Biocount (TSA) REF 40341/P Biocount (VRBG + Neutral.) SKŁAD PODŁOŻA w g/l: 40327/P Biocount (Baird Parker Agar + Neutral.) Enzymatyczny hydrolizat kazeiny...10,00 Ekstrakt wołowy...5,00 Ekstrakt drożdżowy...1,00 Glicyna...12,00 Pirogronian sodu...10,00 Chlorek litu...5,00 Emulsja jajeczna...50 ml Telluryn potasu...0,10 Agar...20,00 ph 7,1 ± 0, /P Biocount (CHROMagar E. coli) Chromogenna mieszanina...9,00 Pepton, Ekstrakt drożdżowy i Ekstrakt mięsny...8,30 ph 6,0± 0, /P Biocount (CHROMagar Listeria) Pepton i Ekstrakt drożdżowy...23,00 Mieszanina chromogenna...17,50 Suplement CHROMagar Listeria...9,00 ph 7,0 ± 0, /P Biocount (CHROMagar Pseudomonas) Pepton i Ekstrakt drożdżowy...8,00 Chlorek sodu...8,00 Mieszanina chromogenna...2,20 ph 7,5 ± 0, /P Biocount (CHROMagar Salmonella) Pepton i Ekstrakt drożdżowy...7,00 Mieszanina chromogenna...12,90 ph 7,6 ± 0, /P Biocount (CHROMagar Staph aureus) Pepton i Ekstrakt drożdżowy...40,00 Chlorek sodu...25,00 Mieszanina chromogenna...2,50 ph 6,9 ± 0, /P Biocount (Chromogenic Coliform Agar) Ekstrakt drożdżowy...2,00 Enzymatyczny hydrolizat kazeiny...1,00 Ekstrakt drożdżowy...3,00 Dwuwodorofosforan sodu...2,20 Wodorofosforan dwusodowy...2,70 Pirogronian sodu...1,00 Sorbitol...1,00 Tryptofan...1,00 Tergitol-7...0,15 IPTG...0,10 6-chloro-3-indoksylo-ß-D-galaktopiranozyd...0,20 Sól amonowa cykloheksaminy z kwasem 5-bromo-4-chloro- 3-indoksylo- ß -D-glukuronidowym...0,10 ph 6,8±0, /P Biocount (MacConkey + Neutral.) Hydrolizat żelatynowy...17.,00 Peptony (mięsny i kazeinowy)...3.,00 Laktoza...10,00 Sole żółciowe...1,50 Agar...5,00 Czerwień obojętna...0,03 Fiolet krystaliczny...0,001

2 ph 7,1 ± 0, /P Biocount (MSA) Wyciąg z tkanek zwierzęcych...5,00 Ekstrakt wołowy...1,00 Chlorek sodu...75,00 D-Mannitol...10,00 Czerwień fenolowa.....0,025 ph 7,4 ± 0, /P Biocount (MSA + Neutral.) Wyciąg z tkanek zwierzęcych...5,00 Ekstrakt wołowy...1,00 Chlorek sodu...75,00 D-Mannitol...10,00 Czerwień fenolowa.....0,025 ph 7,4 ± 0, /P Biocount (PCA) Glukoza...1,00 Ekstrakt drożdżowy ,50 Agar A...15,00 ph 7,0 ± 0, /P Biocount (Pseudomonas + Cetrymid) Pankreatynowy wyciąg żelatyny...20,00 Chlorek magnezu...1,40 Siarczan potasu ,00 Cetrymid ,30 Agar A...15,00 Glicerol ,00 ml ph 7,2 ± 0, /P Biocount (Sabouraud + CH + Neutral.) Pepton...10,00 Agar...15,50 D glukoza...40,00 Tween ,00 ml 40104/P Biocount (Sabouraud + CH) Pepton...10,00 Agar...15,50 Glukoza...40,00 Chloramfenikol...0, /P Biocount (Sabouraud + Neutral.) Pepton...10,00 Agar...15,50 D glukoza...40,00 L-histydyna...1, /P Biocount (Sabouraud) Pepton...10,00 Agar...15,50 D glukoza...40, /P Biocount (TSA + Neutral.) Pankreatynowy hydrolizat kazeiny... 15,00 Pepton sojowy...5,00 Chlorek sodu...5,00 L-histydyna...1,00 ph 7,3 ±0, /P Biocount (TSA) Pankreatynowy hydrolizat kazeiny... 15,00 Pepton sojowy...5,00 Chlorek sodu...5,00 ph 7,3 ±0, /P Biocount (VRBG + Neutral.) Pepton...7,00 Ekstrakt drożdżowy...3,00 Glukoza...10,00 Sole żółciowe...1,50 Czerwień obojętna...0,03 Fiolet krystaliczny...0,002 Agar...12,00 ph 7,4±0,2 ŚRODKI OSTROŻNOŚCI Podłoże przeznaczone jest do profesjonalnych badań w diagnostyce in vitro próbek pochodzenia ludzkiego i innych. Oferowany produkt należy traktować jako potencjalnie zakaźny, gdyż zawiera on materiały pochodzenia zwierzęcego. Nie należy używać podłoży uszkodzonych lub przeterminowanych. PRZECHOWYWANIE Przechowywać do podanej daty przydatności, zgodnie z oznaczeniami na opakowaniu zewnętrznym. Użyć przed upływem terminu przydatności. MATERIAŁ DO BADANIA Materiał do badań pobrać z potencjalnego miejsca bytowania mikroorganizmu, zgodnie z przyjętymi w tym zakresie procedurami i niezwłocznie dostarczyć do laboratorium. Jeżeli nie można dokonać posiewu w dniu pobrania materiału, należy stosować podłoża transportowe. Zawsze należy przestrzegać zasad Dobrej praktyki laboratoryjnej dotyczącej pobierania i transportu materiału. POSTĘPOWANIE 1. Doprowadzić płytki do temperatury pokojowej. 2. W razie potrzeby podsuszyć płytki w cieplarce. 3. Posiać materiał badany przez przyłożenie i delikatne dociśnięcie podłoża do badanej powierzchni. 4. Umieścić płytkę w cieplarce.

3 Temperatura i czas inkubacji zależy od zamierzeń użytkownika i obowiązujących standardów. Najczęściej stosowany czas inkubacji wynosi godzin, a w przypadku mikroorganizmów wolnorosnących może być przedłużony. ODCZYT I INTERPRETACJA 1. Po inkubacji obserwować wzrost drobnoustrojów. 2. Zliczyć kolonie, co ułatwia siatka na dnie płytki. 3. Każde laboratorium powinno wypracować własny program monitoringu czystości oraz przyjąć własne normy. Ważne jest, aby pobierać próbki zawsze w ten sam sposób. Biocount (Baird Parker + Neutral.) Wzrost ATCC 6538 ATCC Proteus mirabilis ATCC Micrococcus luteus ATCC Staphylococcus epidermidis ATCC Bacillus subtilis ATCC 6633 braksłaby słabydobry słabydobry braksłaby czarne, błyszczące, wypukłe śr. 1,0-1,5 mm z wąskim, białym, regularnym brzegiem, otoczone strefą przejaśnienia o średnicy 2-5 mm po 24 godz strefa przejaśnienia po 36 godz. Szeroka, mętną strefa, rozszerzająca się na przezroczyste podłoże 48 godz brązowo-czarne czarne lub brązowe bez przejaśnienia czarne ciemnobrązowe, matowe Biocount (CHROMagar E. coli) E. coli niebieskie pozostałe G (-) bakterie Biocount (CHROMagar Listeria) Listeria monocytogenes jasnoniebieske pozostałe bezbarwna lub niebieskie Biocount (CHROMagar Pseudomonas) Pseudomonas niebiesko-zielone bakterie Gram (+) i większość wzrost zahamowany Enterobacteriaceae UWAGA: Identyfikacja Pseudomonas spp. musi być dodatkowo potwierdzona. Niektóre, oporne bakterie Gram (-) mogą dawać fałszywie pozytywny wynik na podłożu CHROMagar Pseudomonas. Biocount (CHROMagar Salmonella) Wzrost Salmonella (w tym S. jasnopurpurowy typhi) (buraczkowy). E. coli ATCC niebieskie S. aureus ATCC zahamowany 40425/P Biocount (CHROMagar Staph aureus) różowe do fiołkowego pozostałe gatunki niebieskie lub Biocount (Chromogenic Coliform Agar) ATCC Wzrost Escherichia coli ciemnoniebieski do fioletowy Citrobacter freundii 8090 różowy do czerwony Enterococcus faecalis zahamowany - Pseudomonas aeruginosa Enterobacter aerogenes różowy do czerwony Biocount (MacConkey + Neutral.) laktozo-dodatnie ceglasto-czerwone, otoczone pierścieniem strąconych soli żółciowych laktozo-ujemne Biocount (MSA) Biocount (MSA + Neutral.) ATCC 6538 oraz ATCC Staphylococcus epidermidis ATCC żółte lub białe, duże, otoczone żółtą obwódką małe i otoczone czerwoną lub purpurową obwódką. E. coli ATCC Biocount (PCA) Wzrost ATCC Enterococcus feacalis ATCC E. coli ATCC Bacillus subtilis ATCC /P Biocount (Sabouraud + CH + Neutral.) Candida albicans ATCC duże, białe E. coli ATCC zahamowany 40104/P Biocount (Sabouraud + CH) Candida albicans ATCC duże, białe E. coli ATCC zahamowany 40103/P Biocount (Sabouraud + Neutral.) Wzrost Enterococcus feacalis ATCC dobry E. coli ATCC dobry ATCC dobry 40101/P Biocount (Sabouraud) Candida albicans ATCC Aspergillus niger ATCC duże białe kolonie kremowe, makroskopowo czarne konidofory 40102/P Biocount (TSA + Neutral.) Pseudomonas aeruginosa duże, szare, z lekko ATCC metaliczną powierzchnią, wyniesiony środek,

4 ATCC 40100/P Biocount (TSA) Candida albicans ATCC ATCC podłoże odbarwione na jasnozielony kolor duże, kremowożółte kolonie duże, białe duże, kremowożółte kolonie 40341/P Biocount (VRBG + Neutral.) Enterobacter aerogenes czerwono-różowe ATCC E. coli ATCC czerwono-różowe z precypitatem soli żółciowych Salmonella enteritidis jasnoróżowe ATCC zahamowany KONTROLA JAKOŚCI Właściwości odżywcze i wybiórcze podłoża są weryfikowane przy użyciu szczepów wzorcowych z kolekcji ATCC. Ocena wzrostu oraz wykaz zastosowanych szczepów wzorcowych jest podany w Świadectwie Kontroli Jakości. OGRANICZENIA TESTU Wzrost na podłożu zależy od indywidualnych wymagań każdego mikroorganizmu. Może się zdarzyć, że szczep o specyficznych wymaganiach nie wyrośnie, zwłaszcza na podłożach selektywnych z dodatkiem antybiotyków. OCENA PODŁOŻA BioMaxima S. A. Centrum Mikrobiologii po wykonaniu gotowych podłoży na płytkach każdą serię bada szczepami wzorcowymi z kolekcji ATCC zgodnie z normą PN-EN oraz publikacją CLSI M22 A3 POSTĘPOWANIE ZE ZUŻYTYMI PODŁOŻAMI Każde laboratorium usuwa zużyte podłoża i wytworzone ścieki zgodnie z procedurą obowiązującą w danej jednostce. LITERATURA 1. Zabovitz E. Evans JB. Niven Jr. CF J. Bact. 1955; 70: Baird-Parker AC. J. Appl. Bact. 1962; 25: (1) Sharpe Elizabeth, Neave FK, Reiter R, J. Appl. Bact. 1962; 25: (3) Baird-Parker AC, Davenport Elizabeth. J. Appl. Bact. 1965; 28: (3) Wg opisu producenta firmy CHROMagar Microbiology. 6. CHROMagar Listeria method for detecting Listeria monocytogenes Excerpts from AFNOR validation study Muriel COIGNARD, ASEPT SARL, Laval, France December AFNRO validation CHR- 21/1-12/01 13 dec do 13 dec Rambach A. (1990), Environ. Microbiol. 56:301 Greenwald R. Henderson R.W. and Yappan S. (1991). J. Clin. Microbiol. 29: Gaillot et al J. Clin. Microbiol. 38: International Organization for Standarization. Water quality: Enumeration of E. coli and coliform bacteria. Part I- Membrane filtration methods for bacteria with low bacterial background flora. ISO : Kilian M. and Bülow P., 1976, Acta Pathol. Microbiol. Scand Sect. B, 84: Manafi M. and Kneifel W., 1989, Zentralbl. Hyg., 189: MacConkey A. J. Hygiene 1905; 5: American Public Health Association Standard Methods for the Examination of Water i Sewage 1946; wyd. 9, American Public Health Association Standard Methods for the Examination of Dairy Products 1948; wyd. 9, Chapman G. H. J. Bact. 1945; 50: Koch F. E. Zentbl. Bakt. ParasitKde (Abt. 1) 1942; 149: Gunn B. A., Dunkelberg W. E., Creitz J. R. Am. J. Clin. Path. 1972; 57: Carlier G. I. M., 1948, Brit. J. Derm. Syph., 60: Sabouraud K., 1892, Ann. Dermatol. Syphilol, 3: Bacteriological Analytical Manual, 8th Edition, Revision A, AOAC, Washington D.C. 21. Murray PR, Baren EJ, Jorgensen JH, Pfaller MA, Yolken RH (editors) 2003, Manual of clinical Microbiology, 8th ed., ASM, Washington, D.C. 22. Hall and Hartnett, 1964, Public Hlth. Rep., 79: Richardson (Ed)., 1985, Standard Methods for the Examination of Dairy Products, 15th ed., APHA, Washington, D.C. 24. MacFaddin J.F., 1985, Media for Isolation- Cultivation-Identification-Maintenance of Medical Bacteria, Vol. I, Williams and Wilkins, Baltimore. 25. Brummer, 1976, Appl. Environ. Microbiol., 32: Favero (Chairm), 1967, Biological Contamination Control Committee, a state of the art report., Am. Assoc. for contamination control. 27. Murray PR, Baron, Pfaller, and Yolken (Eds.), 2003, In Manual of Clinical Microbiology, 8th ed., ASM, Washington, D.C. 28. The United States Pharmacopoeia / National Formulary, 2008, USP 31, The United States Pharmacopoeial Convention Inc., Rockville, MD. 29. Indian Pharmacopoeia, 2007, Govt. of India, Ministry of Health and Family Welfare, New Delhi, India. 30. Gunn B. A., Ohashi D K., Gaydos C. A., Holt E. S., 1977, J. Clin. Microbiol., 5(6) : Forbes B. A., Sahm A. S. and Weissfeld D. F., 1998, Bailey and Scotts Diagnostic Microbiology, 10th Ed., Mosby Inc. St. Louis, Mo. 32. Hossel DA, Felderink I., Koopmans m. Van Rossen F Optimalisation of a MacConkey-type medium for the enumeration of Enterobacteriaceae. Lab Pratice, 27: World Health Organisation Technical Report Series No Mossel DAA, Van Der Zee H, Hardon AP. Van Netten P The enumeration of Thermotrophicytypesamongst the Enterobacteriaceae colonising perishable foods J. Appl. Bact. 6: American Public Health Association Standard Methods for the Examination of Dairy Products 1972; 13 th: edition APHA Inc. New York. 36. American Public Health Association Recommended Methods for the Microbiological Examination of Foods 1958; APHA Inc. New York. 37. American Public Health Association Standard Methods for the Examination of Water and

5 Wastewater 1960; 11 th: edition APHA Inc. New York. 38. Sabouraud R. Les Teignes, 1910; Masson Paris Aktualizacja: [BG] Zajrzyj do instrukcji używania Wyrób do diagnostyki in vitro Przestrzegać zakresu temperatur Tabela symboli Sprawdź w instrukcji obsługi Kod partii (numer serii) Użyć przed Wytwórca Numer katalogowy