PRZYDATNOŚĆ TESTÓW ENZYMATYCZNYCH DO OCENY JAKOŚCI BAKTERIOLOGICZNEJ WODY

Podobne dokumenty
Nauka Przyroda Technologie

Mikrobiologia wód SYLABUS A. Informacje ogólne

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 996

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1380

Państwowy Powiatowy Inspektor Sanitarny w Jaworznie

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1099

Wyniki badań biegłości/porównań międzylaboratoryjnych uzyskane przez laboratorium ChŚPWiK sp. z o.o. w 2015 roku

BADANIA MIKROBIOLOGICZNE PRÓBEK WODY

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 578

Wykaz badań prowadzonych przez laboratorium - woda

OPTYMALIZACJA PROCESU UZDATNIANIA WODY POWIERZCHNIOWEJ Z WYKORZYSTANIEM SZTUCZNEJ INFILTRACJI NA PRZYKŁADZIE ZUW W STARYM SĄCZU

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 576

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 578

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 630

STAN MIKROBIOLOGICZNY WÓD Z KRAKOWSKICH FONTANN

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 589

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 610

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1264

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 404

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 893

BRAK PRZYDATNOSCI A WARUNKOWA PRZYDATNŚĆ WPS

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1433

LISTA USŁUG PROWADZONYCH W RAMACH ZAKRESU ELASTYCZNEGO

BADANIA WODY Z INSTALACJI SIECI WEWNĘTRZNEJ (ISW) W RAMACH BADAŃ WŁAŚCICIELSKICH

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 617

ISBN

LISTA BADAŃ PROWADZONYCH W RAMACH ZAKRESU ELASTYCZNEGO LISTA BADAŃ PROWADZONYCH W RAMACH ZAKRESU ELASTYCZNEGO ŻYWNOŚĆ

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1319

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 459

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 576

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 610

Olsztyn Rodzaj próbki: Woda z basenu, niecka basenowa :40. metody. Fizyczne, chemiczne i organoleptyczne badania wody

HIGIENA W PRZEMYŚLE CUKROWNICZYM SANITARY CONDITIONS IN THE SUGAR INDUSTRY

SPRAWOZDANIE Z BADAŃ NR 9174/ZL/16

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1029 wydany przez POLSKIE CENTRUM AKREDYTACJI Warszawa ul. Szczotkarska 42

Państwowy Powiatowy Inspektor Sanitarny w Jaworznie

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 513

LISTA BADAŃ PROWADZONYCH W RAMACH ELASTYCZNEGO ZAKRESU AKREDYTACJI NR 1/LEM wydanie nr 7 z dnia Technika Real - time PCR

Kontrola pożywek mikrobiologicznych. Sekcja Badań Epidemiologicznych

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1633

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1298

SPRAWOZDANIE Z BADAŃ NR 9945/ZL/16

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 578

Ocena obszarowa jakości wody na terenie gminy Jodłownik za rok 2014.

BADANIA PODATNOŚCI ŚCIEKÓW Z ZAKŁADU CUKIERNICZEGO NA OCZYSZCZANIE METODĄ OSADU CZYNNEGO

Powiatowa Stacja Sanitarno-Epidemiologiczna w Olecku

Nadzór Państwowej Inspekcji Sanitarnej w zakresie bezpieczeństwa zdrowotnego wody

Ćwiczenie 4-5 Mikrobiologiczne kryteria oceny sanitarnej wody

Conception of reuse of the waste from onshore and offshore in the aspect of

Ocena obszarowa jakości wody na terenie gminy Łukowica za rok 2015.

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1651

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 630

LISTA BADAŃ PROWADZONYCH W RAMACH ELASTYCZNEGO ZAKRESU AKREDYTACJI NR 1/LEM wydanie nr 6 z dnia Technika Real - time PCR

Olsztyn Rodzaj próbki: Woda z basenu, niecka basenowa :10. metody. Fizyczne, chemiczne i organoleptyczne badania wody

Zakres badań wykonywanych w Laboratorium Środowiskowym.

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1415

Państwowy Powiatowy Inspektor Sanitarny w Cieszynie 2015 r.

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1164

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 513

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1554

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1303

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1272

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1455

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1633

DECYZJA. P a a v>twowy Powiatowy inspektor Sanitarny^ Gryfino, dnia 29 czerwca 2017 roku

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 489

Dotyczy: obszarowej oceny jakości wody przeznaczonej do spożycia przez ludzi dla Miasta Bukowno za 2014 rok.

Wyniki badań laboratoryjnych i opis bezpieczeństwa produktu Nr Zleceniodawca:

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1473

Państwowy Powiatowy Inspektor Sanitarny w Cieszynie zgodnie z 16

Instrukcja do ćwiczeń

RAPORT Z BADAŃ REALIZOWANYCH W RAMACH OCENY STĘŻENIA BIOAEROZOLU ZANIECZYSZCZAJĄCEGO POWIETRZE NA PODSTAWIE LICZEBNOŚCI WYBRANYCH GRUP DROBNOUSTROJÓW

Centralne Laboratorium Badania Wody i Ścieków Przedsiębiorstwo Wodociągów i Kanalizacji Okręgu Częstochowskiego S.A.

NHK-430-M-05/19 Bochnia, dnia 15 stycznia 2019r.

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 618

Ocena stanu / potencjału ekologicznego, stanu chemicznego i ocena stanu wód rzecznych.

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 739

Dyrektywa 98/79/WE. Polskie Normy zharmonizowane opublikowane do Wykaz norm z dyrektywy znajduje się również na

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 610

Zakres działalności Laboratorium Środowiskowego dla którego spełnione jest wymaganie normy PN-EN ISO/IEC 17025:

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 513

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1195

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1531

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 543

SPRAWOZDANIE Z BADAŃ NR 9980/ZL/16

Wykaz badań prowadzonych przez Laboratorium Badania Wody

SPRAWOZDANIE Z BADAŃ NR 10393/ZL/17

ZABEZPIECZENIE LUDNOŚCI WOJEWÓDZTWA LUBUSKIEGO W WODĘ PITNĄ

ZAKRES: AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1214

Rodzaj działalności/badane cechy/metoda. Dokumenty odniesienia Obecność i liczba Clostridium. Najbardziej prawdopodobna liczba

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1473

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1079

Dotyczy: obszarowej oceny jakości wody przeznaczonej do spożycia przez ludzi dla Gminy Bolesław za 2016 rok.

NHK-430-M-26/18 Bochnia, dnia 06 luty 2018r.

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 610

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 513

Interpretacja wyników analiz ilości i obecności drobnoustrojów zgodnie z zasadami badań mikrobiologicznych żywności i pasz?

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1448

SPRAWOZDANIE Z BADAŃ NR 2459/ZL/17

Transkrypt:

mgr inż. Justyna Klein*, dr hab. Barbara Kołwzan*, mgr Barbara Umińska-Wasiluk*, mgr inż. Hanna Moriki** * Instytut Inżynierii Ochrony Środowiska Politechniki Wrocławskiej, Wybrzeże S. Wyspiańskiego 27, 50-370 Wrocław ** MPWiK Sp. z o.o., ul. Na Grobli 14/16, 50-421 Wrocław * Institute of Environment Protection Engineering Wrocław University of Technology ** Municipal Water and Wastewater Company PRZYDATNOŚĆ TESTÓW ENZYMATYCZNYCH DO OCENY JAKOŚCI BAKTERIOLOGICZNEJ WODY USEFULNESS OF ENZYME TESTS FOR ASSESSING BACTERIOLOGICAL WATER QUALITY Streszczenie Celem przedstawionych badań było określenie przydatności komercyjnych testów enzymatycznych Colitag i Colilert do oceny jakości bakteriologicznej wody przeznaczonej do celów wodociągowych. Przeprowadzono badania modelowe, w których do wody wodociągowej wprowadzono szczepy wzorcowe Escherichia coli, Citrobacter spp. oraz Pseudomonas fluorescens. Wykrywalność Escherichia coli w próbkach wody wodociągowej za pomocą badanych testów była zbliżona do metody klasycznej. Test enzymatyczne okazały się przynajmniej tak dobre, jak referencyjne metody do wykrywania i ilościowego oznaczania E. coli w wodzie przeznaczonej do spożycia, natomiast oznaczenie liczebności bakterii z grupy coli w wodzie za pomocą obu testów dało znacznie wyższe wartości NPL w porównaniu do metody klasycznej. Dotyczy to przede wszystkim NPL bakterii z grupy coli oznaczanej w wodzie powierzchniowej, gdzie przekroczenia były stosunkowo duże. Abstract The aim of this study was to determine the usefulness of commercial enzyme tests Colilert and Colitag to assess the bacteriological quality of water for water supply purposes. Model studies, in which tap water was introduced to the standard strains of Escherichia coli, Citrobacter spp. and Pseudomonas fluorescens. The detection of Escherichia coli in water samples tested by the tests was similar to the classic method. Enzymatic test proved to be at least as good as the reference method for the detection and quantification of E. coli in drinking water. However, in the water the abundance determination of coliforms using both tests gave a significantly higher value MPN compared to the traditional method. Primarily it applies to coliforms denoted in raw water, where the levels were high.

114 1. WSTĘP Bakterie, wirusy i inne mikroorganizmy są szeroko rozpowszechnione w środowisku wodnym, ale tylko niektóre z nich stanowią problem zdrowotny. Źródłem drobnoustrojów chorobotwórczych przenoszonych drogą wodną są najczęściej ścieki oraz spływy powierzchniowe. Możliwość zakażenia ludzi zmusza do stałej kontroli sanitarno-higienicznej zarówno wody przeznaczonej do spożycia, jak również wody w basenach kąpielowych, a także w zbiornikach wodnych mających znaczenie rekreacyjne [12]. Mikroorganizmy chorobotwórcze występują w ściekach i w wodach powierzchniowych w znacznie mniejszych ilościach niż pozostałe drobnoustroje. Dlatego też badania rutynowe koncentrują się przede wszystkim na wykrywaniu bakterii wskazujących na kałowe zanieczyszczenie wody. W sposób klasyczny organizmy wskaźnikowe, takie jak bakterie z grupy coli i Escherichia coli mogą być wykrywane przy wykorzystaniu metody fermentacyjno-probówkowej oraz metodą filtracji membranowej [11, 12]. Wadą tych oznaczeń jest głównie ich czasochłonność. Alternatywnymi w stosunku do metod konwencjonalnych są testy enzymatyczne bazujące na wykrywaniu obecności dwóch konstytutywnych enzymów wytwarzanych przez te bakterie wskaźnikowe: galaktozydazy i glukuronidazy [1, 13]. Efekty działania tych enzymów wykrywane są dzięki zastosowaniu oznaczonych chromogenie lub fluorogennie substratów. Komercyjnie używanych jest kilka tego typu testów takich jak Colitag TM i Colilert (AC). Podstawową zaletą omawianych testów jest wyraźnie skrócenie czasu wykonania analiz do 18 24 godzin ze względu na brak konieczności wykonywania potwierdzeń [8 10]. Testy okazały się wielkim sukcesem, ale mają także kilka mankamentów [3-5]. Jednym z nich jest fakt, że nie wszystkie szczepy E. coli pochodzące z ludzkich odchodów są fluorogenne. Ponadto mikroalgi i makrofity mogą produkować β-glukuronidazę i β-galaktozydazę, które w dużych stężeniach mogą być przyczyną uzyskiwania wyników fałszywie dodatnich [2]. Testy tego rodzaju mogą być używane zarówno, jako testy jakościowe (obecne/nieobecne), jak i testy ilościowe. Przy czułości 1 mikroorganizm badanej próbki testy nie wymagają przygotowywania pożywek, filtrowania próbek ani potwierdzania wyników [6 7]. Celem przedstawionych badań było określenie przydatności testów Colitag i Colilert do oceny jakości bakteriologicznej wody przeznaczonej na cele wodociągowe. 2. MATERIAŁY METODY Materiał do badań mikrobiologicznych stanowiły próbki wody powierzchniowej i wody z sieci wodociągowej. Analizę bakteriologiczną próbek wody wykonano za pomocą testów enzymatycznych oraz metod klasycznych. Zastosowane testy enzymatyczne ColitagTM

i Colilert (AC) bazują na wykrywaniu obecności dwóch konstytutywnych enzymów wytwarzanych przez te bakterie wskaźnikowe: galaktozydazy i glukuronidazy. Testy wykonano zgodnie z procedurą podaną przez producentów. W celach porównawczych analizy wykonano metodami referencyjnymi, zgodnie z procedurą ujętą w Polskich Normach: PN-EN ISO 9308-1:2004, PN-75C-04615 ark. 05, PN-77C-04615 ark. 07. 115 3. WYNIKI BADAŃ Na wstępie wykonano badania modelowe, w których do wody wodociągowej wprowadzono szczepy wzorcowe Escherichia coli, Pseudomonas fluorescens oraz Citrobacter spp. Celem badań było określenie wykrywalności w wodzie bakterii wzorcowych za pomocą testów enzymatycznych. Próbki badane były równolegle metodą tradycyjną i przy zastosowaniu testów enzymatycznych. Wyniki analizy bakteriologicznej wody wodociągowej przeprowadzonej testem Colitag i Colilert były zbliżone. Wykazano, że wykrywalność Escherichia coli w próbkach wody wodociągowej za pomocą testów enzymatycznych była tylko nieco niższa, w porównaniu do metody klasycznej (tab. 1). Tab. 1. Porównanie wykrywalności Escherichia coli (szczep wzorcowy firmy IDEXX) w wodzie wodociągowej metodą filtracji membranowej oraz testami enzymatycznymi) Nazwa próbki Metoda E. coli (szczep IDEXX) wprowadzony do wody NPL bakterii z grupy coli NPL E. coli nie nie Colilert-18 + 144 144 Colilert-18 + 144 144 Colitag + 143 143 Colitag + 143 143 nie FM (jtk/100 cm 3 ) FM (jtk/100 cm 3 ) + 184 184 + 171 171

116 Ciekawy wydał się także problem, czy wykrywalność Escherichia coli może zależeć od liczby innych bakterii obecnych równocześnie w analizowanych próbkach wody. Dlatego też obok E. coli do wody modelowej wprowadzono bakterie typowo wodne należące do gatunku Pseudomonas fuorescens. Stwierdzono, że ich obecność nie miała znaczącego wpływu na wynik analizy (tab. 2). Tab. 2. Wpływ Pseudomoas fluorescens na wykrywalność Escherichia coli testem Colilert Data analizy Liczba Pseudomonas fluorescens Średnia liczba E. coli 0 15 16.11.2009 10 3 16,5 10 4 16,5 0 26,5 17.11.2009 10 3 27,5 10 4 27,5 Biorąc pod uwagę fakt, że testy enzymatyczne nie wymagają potwierdzeń, ustalenie możliwości ich wykorzystania jest ważne z punktu widzenia ochrony zdrowia publicznego, może bowiem znacznie przyspieszyć ewentualną reakcję w przypadku stwierdzenia obecności E. coli w wodzie, uniemożliwiając dotarcie skażonej wody do konsumentów. Wyeliminowanie etapu potwierdzeń, koniecznego w metodzie tradycyjnej, pozwala na oszczędność czasu i wyklucza potrzebę działania w oparciu o niepotwierdzone wyniki wstępne. Teoretycznie zaoszczędzony czas może być wykorzystany na dodatkowe badania lub częstsze analizy. Testy mają również jedną praktyczną zaletę mogą być stosowane do badania wody z dużą zawartością zawiesin, co ma szczególne znaczenie przy analizie bakteriologicznej wody prowadzonej metodą filtrów membranowych. Obecność zawiesin przypadkach powodowała zatykanie porów w filtrze i uniemożliwiała sączenie. W przypadku testów enzymatycznych obecność zawiesin nie ma żadnego wpływu na odczyt wyników. Oznaczenie liczebności bakterii z grupy coli za pomocą obu testów dawało zawsze znacznie wyższe wartości NPL, w porównaniu do metody klasycznej (tab. 3). Dotyczy to przede wszystkim NPL bakterii z grupy coli w wodzie powierzchniowej, gdzie przekroczenia były stosunkowo duże. Oznacza to, że stosowanie testów enzymatycznych do wykrywania bakterii z grupy coli może być obarczone stosunkowo dużym błędem. Powyższe wnioski potwierdzają wyniki

117 Tab. 3. Porównanie wykrywalności bakterii z grupy coli (szczep wzorcowy Citrobacter sp.) w wodzie wodociągowej metodą filtracji membranowej oraz testami enzymatycznymi Nazwa próbki Metoda Citrobacter wprowadzony do wody NPL bakterii z grupy coli nie nie nie Colilert-18 + 33 Colilert-18 + 35 Colitag + 21 Colitag + 23 FM (jtk/100 cm 3 ) + 16 FM (jtk/100 cm 3 ) + 16 analizy 100 próbek wody wykonanej metodą klasyczną oraz testem Colilert przez laboratorium MPWiK we Wrocławiu. Badaniom poddano wodę powierzchniową oraz wodę po różnych etapach procesu oczyszczania. W tabeli 4 podano wartości uzyskane w wodzie powierzchniowej, gdzie liczba bakterii z grupy coli oznaczana testem Colilert różniła się czasami o kilka rzędów od wyników uzyskanych metodą fermentacyjno-probówkową. Podsumowując, prezentowane dane potwierdzają wyniki uzyskane we wcześniejszych badaniach przeprowadzanych w Szwecji, Stanach Zjednoczonych i Wielkiej Brytanii [3-6]. Testy enzymatyczne okazały się przynajmniej tak dobre, jak referencyjne metody fermentacyjno-probówkowe i filtracji membranowej do wykrywania i ilościowego oznaczania bakterii grupy coli i E. coli w wodzie przeznaczonej do spożycia. Wyniki te wskazują, iż badane testy mogą być alternatywą dla klasycznych długotrwałych badań jakości wody na obecność bakterii grupy coli i E. coli w wodzie przeznaczonej do spożycia. W oparciu o wyciągnięte z tego badania wnioski należy stwierdzić, że konieczne jest przeprowadzenie dalszych badań w celu oceny przydatności obu testów enzymatycznych do badania jakości innych rodzajów wód, a w szczególności wód powierzchniowych.

118 Tab. 4. Porównanie wykrywalności bakterii z grupy coli w wodzie powierzchniowej metodą fermentacyjno-probówkową oraz testem Colilert-18 Miejsce i data poboru próbki NPL grupy coli Colilert-18 NPL E. coli Metoda fermentacyjnoprobówkowa NPL bakterii grupy coli (PN-75C- 04615 ark. 05) NPL bakterii grupy coli typu fekalnego (PN-77C-04615 ark. 07) 07.05.2008 440 30 280 23 Odra 01.07.2008 24196 20 140 23 07.10.2008 1918 144 790 230 07.05.2008 1987 147 1300 230 11.06.2008 4106 6131 490 490 Oława 02.07.2008 6131 487 790 230 10.09.2008 2603 323 330 330 15.10.2008 934 171 170 170 Nysa Kłodzka (Pompownia Michałów) 11.06.2008 6131 218 350 31 02.07.2008 2359 41 220 130 05.08.2008 2420 152 790 230 15.10.2008 933 134 330 170 16.06.2008 40 4 17 8 30.06.2008 88 6 8 8 Oława (Pompownia Czechnica) 07.07.2008 291 2 23 13 14.07.2008 172 2 14 2 28.07.2008 88 6 2 2 15.09.2008 214 4 17 17 20.10.2008 248 4 8 8 4. WNIOSKI 1. Badania wykazały, że wykrywalność bakterii z grupy coli i Escherichia coli metodami klasycznymi i enzymatycznymi była zbliżona rzędem wielkości. 2. Testy Colitag i Colilert wykazały kilka zalet w porównaniu do metody trady - cyjnej, takich jak skrócenie czasu analizy i wyeliminowanie etapu potwierdzeń.

119 3. Test enzymatyczne okazały się przynajmniej tak dobre, jak referencyjne metody fermentacyjno-probówkowe i filtracji membranowej do wykrywania i iloś - ciowego oznaczania bakterii grupy coli i E. coli w wodzie przeznaczonej do spożycia. Stwierdzono także, że obecność innych bakterii, w tym Pseudomonas fluorescens nie miała wpływu na wynik analizy. 4. Oznaczenie liczebności bakterii z grupy coli za pomocą obu testów dawało wyższe wartości NPL w porównaniu do metody klasycznej i ich stosowanie w przypadku wód silnie zanieczyszczonych mikroorganizmami może być problematyczne. Publikację wyników badań sfinansowano w ramach projektu Badania służące rozwojowi naukowemu kadry oraz badania służące kształtowaniu specjalizacji naukowej Instytutu Inżynierii Ochrony Środowiska Politechniki Wrocławskiej nr 33-223-9. PISMIENNICTWO [1] Cowburn J.K., Goodall T., Fricker E. J., Walter K.S., Fricker C.R.: A preliminary study of the use of colilert for water quality monitoring. Lett. Appl. Microbiol. 1994, 19:50-52. [2] Davies, C.M., Apte S.C., Peterson S.M., Stauber J.L.: Plant and algal interference in bacterial 3-D-galactosidase and 3-D-glucuronidase assays. Appl. Environ. Microbiol. 1994, 60:3959-3964. [3] Eckner K.F.: Comparison of Membrane Filtration and Multiple-Tube Fermentation by the Colilert and Enterolert Methods for Detection of Waterborne Coliform Bacteria, Escherichia coli, and Enterococci Used in Drinking and bathing Water Quality Monitoring in Soutern Sweden, Applied and Environmental Microbiology, Aug. 1998, 64, 8: 3079 3083. [4] Edberg S.C., Allen M.J., Smith D.B.: The National Collaborative Study: National field evaluation of a defined substrate method for the simultaneous enumeration of total coliforms and Escherichia coli from drinking water: comparison with the standard multiple tube fermentation method. Appl. Environ. Microbiol. 1988, 54:1595-1601. [5] Fricker C.R., Fricker E.J., Goodall T., Cowburn J.: Qualitative procedures for the detection of E. coli, coliforms and enterococci in water using QuantiTray and Enterolert. In Proceedings of the Water Quality Technology Conference, New Orleans. American Water Works Association, Denver, Colo., 1995, 2031 2036. [6] Fricker E.J., Fricker C.R.: Use of two presence/absence systems for the detection of E. coli and coliforms from water. Water Res. 1996. 30:2226 2228. [7] http://www.wioa.org.au/conference_papers/2000/pdf/paper14.pdf., Hanko E.: Colilert - what s al the fuss about? [8] http://www.hpa-standardmethods.org.uk/documents/water/pdf/w18.pdf [9] http://www.idexx.com/water [10] htpp:/www.tigret.pl [11] Kołwzan B.: Zastosowanie czujników biologicznych (biosensorów) do oceny jakości wody. Ochrona Środowiska 2009, 4: 3 14. [12] Kołwzan B., Adamiak W., Grabas K., Pawełczyk A.: Podstawy mikrobiologii w ochronie środowiska (dokument elektroniczny): Oficyna Wydaw. PWr, Wrocław 2005. [13] Trepeta R.W., Edberg S.C.: Methylumbelliferyl-3-D-glucuronide-based medium for rapid isolation and identification of Escherichia coli. J. Clin. Microbiol. 1984, 19:172-174.