Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Podobne dokumenty
Rys. 1. Chromatogram i sposób pomiaru podstawowych wielkości chromatograficznych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćwiczenie 1 Analiza jakościowa w chromatografii gazowej Wstęp

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II. OznaczanieBTEX i n-alkanów w wodzie zanieczyszczonej benzyną metodą GC/FID oraz GC/MS 1

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćwiczenie 6 Zastosowanie destylacji z parą wodną oraz ekstrakcji ciecz-ciecz do izolacji eugenolu z goździków Wstęp

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćwiczenie 4 Zastosowanie metody wzorca wewnętrznego do analizy ilościowej techniką GC-FID

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 2

Ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką GC/FID

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

Jakościowa i ilościowa analiza mieszaniny alkoholi techniką chromatografii gazowej

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

12 ZASAD ZIELONEJ CHEMII

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

Ćwiczenie 4 Porównanie wydajności różnych technik ekstrakcji w układzie ciało stałeciecz. 1. Wstęp

Flawedo pokroić w paski o szerokości < 2 mm a następnie paski pokroić w drobną kostkę.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Identyfikacja węglowodorów aromatycznych techniką GC-MS

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Wysokosprawna chromatografia cieczowa w analizie jakościowej i ilościowej

CHROMATOGRAFIA ADSORPCYJNA I PODZIAŁOWA. 1. Rozdział barwników roślinnych metodą chromatografii adsorpcyjnej (techniką kolumnową)

CHROMATOGRAFIA BARWNIKÓW ROŚLINNYCH

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 4

LABORATORIUM CHEMII ORGANICZNEJ PROGRAM ĆWICZEŃ

Wysokosprawna chromatografia cieczowa dobór warunków separacji wybranych związków

Ćwiczenie 1. Ekstrakcja ciągła w aparacie Soxhleta

ROZDZIELENIE OD PODSTAW czyli wszystko (?) O KOLUMNIE CHROMATOGRAFICZNEJ

Wpływ ilości modyfikatora na współczynnik retencji w technice wysokosprawnej chromatografii cieczowej

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

TECHNIKI SEPARACYJNE ĆWICZENIE. Temat: Problemy identyfikacji lotnych kwasów tłuszczowych przy zastosowaniu układu GC-MS (SCAN, SIM, indeksy retencji)

ĆWICZENIE 3: CHROMATOGRAFIA PLANARNA

BADANIE ZAWARTOŚCI WIELOPIERŚCIENIOWYCH WĘGLOWODORÓW AROMATYCZNYCH (OZNACZANIE ANTRACENU W PRÓBKACH GLEBY).

CHROMATOGRAFIA CHROMATOGRAFIA GAZOWA

Kreacja aromatów. Techniki przygotowania próbek. Identyfikacja składników. Wybór składników. Kreacja aromatu

H 3. Limonen. ODCZYNNIKI Skórka z pomarańczy lub mandarynek, chlorek metylenu, bezwodny siarczan sodu.

4A. Chromatografia adsorpcyjna B. Chromatografia podziałowa C. Adsorpcyjne oczyszczanie gazów... 5

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 1

OPTYMALIZACJA EFEKTÓW ROZDZIELANIA W KOLUMNACH KAPILARNYCH DOBÓR PRĘDKOŚCI PRZEPŁYWU GAZU

Adypinian 2-dietyloheksylu

R = CH 3. COOMe O CH 3 CH 3 CH3 CH 3. β-karoten. Rys. 1. Wzory strukturalne chlorofilu a, chlorofilu b oraz β-karotenu.

2-(Dietyloamino)etanol

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

3. Jak zmienią się właściwości żelu krzemionkowego jako fazy stacjonarnej, jeśli zwiążemy go chemicznie z grupą n-oktadecylodimetylosililową?

Jakościowe i ilościowe oznaczanie alkoholi techniką chromatografii gazowej

Ćw. 5 Oznaczanie węglowodorów lekkich w powietrzu atmosferycznym

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 1

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

Materiał obowiązujący do ćwiczeń z analizy instrumentalnej II rok OAM

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

OZNACZENIE JAKOŚCIOWE I ILOŚCIOWE w HPLC

CHROMATOGRAFIA II 18. ANALIZA ILOŚCIOWA METODĄ KALIBRACJI

Oznaczanie lekkich węglowodorów w powietrzu atmosferycznym

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 6-1 w PWN. Warszawa, cop.

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: OCZYSZCZANIE SUBSTANCJI PRZEZ DESTYLACJĘ I EKSTRAKCJĘ

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 2

OZNACZANIE WYBRANYCH FARMACEUTYKÓW W PRÓBACH WODY.

Zadanie 1. Temat. Zastosowanie chromatografii gazowej z detektorem wychwytu elektronów w analizie chlorowcopochodnych w próbkach powietrza

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

PRZEWODNIK PO PRZEDMIOCIE

Zastosowanie dwuwymiarowej chromatografii cienkowarstwowej do separacji kumaryn

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 5

Techniki immunochemiczne. opierają się na specyficznych oddziaływaniach między antygenami a przeciwciałami

Projekt współfinansowany przez Unię Europejską w ramach Europejskiego Funduszu Społecznego O O

Numer CAS: o C (101,3 kpa)

Laboratorium. Technologia i Analiza Aromatów Spożywczych

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 5, 4 dodr. Warszawa, 2015.

Disulfid allilowo-propylowy

Synteza eteru allilowo-cykloheksylowego w reakcji alkilowania cykloheksanolu bromkiem allilu w warunkach PTC.

2-Metylonaftalen. metoda oznaczania UWAGI WSTĘPNE

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Numer CAS: OCH 3

Formularz opisu kursu (sylabus przedmiotu) na rok akademicki 2011/2010

Prof. dr hab. inż. M. Kamiński 2006/7 Katedra Chemii Analitycznej Wydział Chemiczny PG. Ćwiczenie: LC / GC. Instrukcja ogólna

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 3

Noty wyjaśniające do Nomenklatury scalonej Unii Europejskiej (2018/C 7/03)

OH OCH 3. Eugenol Eugenol jest pochodną gwajakolu (2-metoksyfenolu, orto hydroksyanizolu): Gwajakol

Fenol, o-, m- i p-krezol metoda oznaczania

Lotne związki organiczne

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

4-Metylopent-3-en-2-on

PODSTAWY CHROMATOGRAFII GAZOWEJ

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Analiza instrumentalna

Transkrypt:

UNIWERSYTET GDAŃSKI WYDZIAŁ CHEMII Pracownia studencka Zakład Analizy Środowiska Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych Ćwiczenie nr 6 Wyodrębnianie i analiza terpenów ANALIZA PRODUKTÓW POCHODZENIA NATURALNEGO Gdańsk, 203

Celem ćwiczenia jest wykonanie analizy jakościowej terpenów z owoców cytrusowych (pomarańczy, mandarynki lub cytryny) lub z igieł sosny. Zostaną zastosowane dwie metody przygotowania próbek: a. ekstrakcja heksanem (próbka I), b. destylacja z parą wodną (próbka II). Po wykonaniu analiz należy porównać i ocenić 2 metody przygotowania próbek do analizy lotnych związków pochodzenia roślinnego. Zidentyfikować anality na podstawie czasów retencji, indeksów Kováts a oraz widm mas. Zinterpretować widma mas alkanów i terpenów. Prawidłowo wykonane sprawozdanie powinno zawierać pełną dokumentację analizy (należy załączyć uzyskane chromatogramy i widma mas wraz z odpowiednim opisem). Ekstrakcja olejku eterycznego (próbka I) Ekstrahować około 0,5 g części pomarańczowej skórki (nie albedo) za pomocą 3 ml heksanu mieszając przez około 5 min i pozostawić na około 5 min a następnie przesączyć ekstrakt do naczynka. Jeżeli będzie to konieczne to zatężyć ekstrakt w strumieniu azotu do około 00 µl. Ekstrakcję terpenów z igieł sosny wykonać analogicznie. Destylacja z parą wodną (próbka II) Na płytce ceramicznej pokroić skórkę pomarańczową na kawałki o długości ok. 0,5 cm, a następnie zważyć ok. 4 gramów. Próbkę umieścić w zestawie do destylacji z parą wodną i dodać 20 ml wody. W kolbie okrągłodennej o pojemności 000 ml powinno znajdować się około 500 ml wody (proszę pamiętać o dodaniu kaolinu). Wodę w kolbie doprowadzić do wrzenia (regulator mocy ustawiony na 6-7) i przeprowadzić destylację z parą wodną. Destylację przerwać po otrzymaniu około 20 ml destylatu. Do destylatu dodać 20 ml dichlorometanu. Wykonać ekstrakcję ( minuta wytrząsania) otrzymanej próbki. Za pomocą rozdzielacza rozdzielić warstwę dichlorometanową zawierającą wyekstrahowane terpeny, wysuszyć bezwodnym siarczanem sodu i przesączyć przez sączek do kolbki. Następnie odparować rozpuszczalnik za pomocą odparowywacza obrotowego do objętości około ml. Jeżeli będzie to konieczne to zatężyć ekstrakt w strumieniu azotu do około 00 µl. Ekstrakcję terpenów z igieł sosny wykonać analogicznie. Analiza chromatograficzna w programowanej temperaturze Chromatograf GC z detektorem FID, kolumna chromatograficzna RTX-5 30 m, 0,25 mm średnica wewnętrzna, 0,25 µm grubość fazy stacjonarnej, Program temperaturowy: 60-20 C, narost 3 C/min, Temperatura dozownika: 220 C, 2

Temperatura detektora: 220 C, Dzielnik przepływu: :50, Gaz nośny: argon, stały przepływ ml/min, Powietrze: 400 kpa, Wodór: 40 kpa, Czas analizy: 20 min. Analiza jakościowa poprzez porównanie czasu retencji analitu z czasem retencji wzorca wyznaczonych w tych samych warunkach chromatograficznych (w programowanej temperaturze) Należy wykonać analizę próbki badanej oraz analizę roztworów wzorcowych. Odczytać z chromatogramów i porównać czasy retencji. Zidentyfikować składniki próbki. Wyznaczyć zawartość procentową składników próbki metodą normalizacji wewnętrznej. Wyznaczenie indeksów Kováts a w warunkach programowanej temperatury Należy wykonać analizę próbki oraz roztworu wzorcowego: mieszaniny 3-ciu n-alkanów od n-c 9 do n-c i wyznaczyć indeksy. Porównać uzyskane indeksy z danymi literaturowymi zawartymi w tabeli. Tabela. Wartości indeksów Kováts a dla wybranych terpenów (Adams, 2009). Nazwa Wzór strukturalny Indeks limonen 024 α-pinen 932 β-pinen 974 Analiza GC-MS Ze względu na ograniczenia czasowe studenci otrzymują widma mas alkanów oraz terpenów wyizolowanych z badanych próbek, które wraz z obliczonymi indeksami retencji posłużą do identyfikacji związków. 3

Zagadnienia do przygotowania:. Terpeny biosynteza, występowanie, budowa. 2. Metody izolacji olejków eterycznych, metody analizy. 3. Chromatografia gazowa teoria procesu chromatograficznego, sprzęt, optymalizacja warunków analizy, analiza ilościowa i jakościowa. 4. Połączenie chromatografii gazowej ze spektrometrią mas metody jonizacji, widma mas, identyfikacja związków organicznych. Literatura. Piotr Stepnowski, Elżbieta Synak, Beata Szafranek, Zbigniew Kaczyński. Techniki separacyjne. Wydawnictwo Uniwersytetu Gdańskiego, Gdańsk 200, 2. Walenty Szczepaniak. Metody instrumentalne w analizie chemiczne.j PWN, W-wa, 996. 3. Ryszard Kocjan (red.). Chemia analityczna. Podręcznik dla studentów. Tom 2. PZWL, W-wa, 2000. 4. Zygfryd Witkiewicz. Podstawy chromatografii. WNT, Warszawa, 2005. 5. Robert P. Adams. Identification of Essential Oil Components By Gas Chromatography/Mass Spectrometry. Allured Pub Corp. USA, 2009. Materiały do opracowania (proszę przynieść wydrukowane na zajęcia) 2 3 4 Rys.. Chromatogram GC roztworu wzorcowego alkanów: C9, C0, C, C2 Rys. 2. Widmo mas (EI) nonanu C 9 H 20 (pik nr na rys.). 4

Rys. 3. Widmo mas (EI) dekanu C 0 H 22 (pik nr 2 na rys.). Rys. 4. Widmo mas (EI) undekanu C H 24 (pik nr 3 na rys.). Rys. 5. Widmo mas (EI) dodekanu C 2 H 26 (pik nr 4 na rys.). Rys. 6. Chromatogram GC/MS ekstraktu terpenów ze skórki mandarynki. 5

limonen Rys. 7. Widmo mas (EI) piku nr na rys. 6. Rys. 8 Chromatogram GC/MS ekstraktu terpenów z igieł sosny. pinen Rys. 9 Widmo mas (EI) piku nr na rys. 8. 6

Szkło i odczynniki roztwór wzorcowy mieszaniny n-alkanów: n-c 9, n-c 0, n-c przygotowany poprzez rozpuszczenie 2 µl każdego związku w ml heksanu, roztwór wzorcowy limonenu, roztwór wzorcowy α-pinenu, chlorek metylenu do mycia strzykawki 2 szt strzykawka do GC 0 µl 2 szt Ekstrakcja olejku eterycznego ze skórek owoców cytrusowych (próbka I) kolbka stożkowa z korkiem 0 ml 3 szt naczynko zakręcane,5 ml oraz mały lejek i sączki 3 szt, pipeta 5 ml, pompka do pipet, heksan 50 ml nóż i płytka do krojenia Destylacja z parą wodną (próbka II): chlorek metylenu o obj. 00 ml, bagietka szklana, pipeta o obj. 5 ml, pompka do pipet, lejek średni + odpowiednie sączki, rozdzielacz o obj. 00 lub 200 ml + mały lejek, cylinder miarowy o obj. 25 ml, kolbka z dnem konicznym o obj. 50 ml, 2 kolbki płaskodenne o obj. 50 ml + korki szklane, bezwodny siarczan sodu + łyżka, kamyczki wrzenie, folia aluminiowa, zestaw do mikrodestylacji z parą wodną z wydajną chłodnicą, statyw 7