Ćwiczenie 1. Roztwarzanie materiału roślinnego do określenia zawartości magnezu w materiale roślinnym metodą spektrofotometrii UV-Vis

Podobne dokumenty
Techniki i metody przygotowania próbki mineralizacja, techniki konwencjonalne i mikrofalowe oraz ekstrakcja do fazy stałej (SPE)

Atomowa spektrometria absorpcyjna i emisyjna

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

Przygotowanie próbki do wykonania oznaczeń zawartości metali ciężkich w produktach technicznych.

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

WYZNACZANIE RÓWNOWAŻNIKA CHEMICZNEGO ORAZ MASY ATOMOWEJ MAGNEZU I CYNY

ANALIZA ŚLADOWYCH ZANIECZYSZCZEŃ ŚRODOWISKA I ROK OŚ II

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

PRACOWNIA ANALIZY ILOŚCIOWEJ. Analiza substancji biologicznie aktywnej w preparacie farmaceutycznym kwas acetylosalicylowy

Analiza środowiskowa, żywności i leków CHC l

Chemia środków ochrony roślin Katedra Analizy Środowiska. Instrukcja do ćwiczeń. Ćwiczenie 2

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Pracownia Polimery i Biomateriały

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Rafał Tytus Bray. Politechnika Gdańska Wydział Inżynierii Lądowej i Środowiska września 2017 Ustka

ABSORPCYJNE OCZYSZCZANIE GAZÓW ODLOTOWYCH Z TLENKÓW AZOTU Instrukcja wykonania ćwiczenia 23

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

BADANIE SPECJACJI WAPNIA I MAGNEZU W GLEBIE

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 6. Manganometryczne oznaczenia Mn 2+ i H 2 O 2

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

ANALIZA INSTRUMENTALNA

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

OZNACZANIE UTLENIALNOŚCI WÓD NATURALNYCH

8. MANGANOMETRIA. 8. Manganometria

GOSPODARKA ODPADAMI. Oznaczanie metodą kolumnową wskaźników zanieczyszczeń wymywanych z odpadów

Ćwiczenie 4 Porównanie wydajności różnych technik ekstrakcji w układzie ciało stałeciecz. 1. Wstęp

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Ćwiczenie 5. Badanie właściwości chemicznych aldehydów, ketonów i kwasów karboksylowych. Synteza kwasu sulfanilowego.

ĆWICZENIE I - BIAŁKA. Celem ćwiczenia jest zapoznanie się z właściwościami fizykochemicznymi białek i ich reakcjami charakterystycznymi.

Otrzymywanie siarczanu(vi) amonu i żelaza(ii) soli Mohra (NH 4 ) 2 Fe(SO 4 ) 2 6H 2 O

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

KATALIZA I KINETYKA CHEMICZNA

1 ekwiwalent 4 ekwiwalenty 5 ekwiwalentów

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Badanie procesu starzenia się kwasu ortokrzemowego w roztworach wodnych

Zastosowanie spektrofotometrii (UV-VIS) do oznaczania Fe(III) i Fe(II) w wodzie

CEL ĆWICZENIA Zapoznanie studentów z chemią 14 grupy pierwiastków układu okresowego

UKŁAD OKRESOWY PIERWIASTKÓW, WŁAŚCIWOŚCI CHEMICZNE PIERWIASTKÓW 3 OKRESU

SPRAWOZDANIE Z ĆWICZEŃ Z HIGIENY, TOKSYKOLOGII I BEZPIECZEŃSTWA ŻYWNOŚCI

PODSTAWY LABORATORIUM PRZEMYSŁOWEGO. ĆWICZENIE 3a

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana Wyznaczanie parametrów kolektywnych układu

1 ekwiwalent 6 ekwiwalentów 0,62 ekwiwalentu

Ćwiczenie 3: Ocena fizykochemiczna nawozów stałych fosforowych różne formy P 2 O 5

Spalanie i termiczna degradacja polimerów

Ćwiczenie 1. Badanie wypierania wodoru z wody za pomocą metali

WAGI I WAŻENIE. ROZTWORY

OTRZYMYWANIE ZWIĄZKÓW CHEMICZNYCH: PREPARATYKA TLENKÓW MIEDZI

Recykling surowcowy odpadowego PET (politereftalanu etylenu)

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Zakład Chemii Organicznej, Wydział Chemii UMCS Strona 1

Laboratorium 1. Izolacja i wykrywanie trucizn cz. 1

DEZYNFEKCJA WODY CHLOROWANIE DO PUNKTU

WPŁYW SUBSTANCJI TOWARZYSZĄCYCH NA ROZPUSZCZALNOŚĆ OSADÓW

ĆWICZENIE 5. KOPOLIMERYZACJA STYRENU Z BEZWODNIKIEM MALEINOWYM (polimeryzacja w roztworze)

K1. KONDUKTOMETRYCZNE MIARECZKOWANIE STRĄCENIOWE I KOMPLEKSOMETRYCZNE

Zapisz równanie zachodzącej reakcji. Wskaż pierwiastki, związki chemiczne, substraty i produkty reakcji.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Ćwiczenia nr 2: Stężenia

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 5

XLVII Olimpiada Chemiczna

Ćwiczenie 1. Sporządzanie roztworów, rozcieńczanie i określanie stężeń

BADANIE ZAWARTOŚCI ZWIĄZKÓW AZOTU. OZNACZANIE AZOTU AZOTANOWEGO(V) METODĄ KOLORYMETRYCZNĄ.

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 8. Argentometryczne oznaczanie chlorków metodą Fajansa

ZJAWISKA FIZYCZNE I CHEMICZNE

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

ROZPORZĄDZENIA. (4) Środki przewidziane w niniejszym rozporządzeniu są zgodne z opinią Komitetu ds. Wspólnej Organizacji Rynków Rolnych, Artykuł 1

Politechnika Rzeszowska Katedra Technologii Tworzyw Sztucznych. Synteza kationomeru poliuretanowego

Projekt współfinansowany przez Unię Europejską w ramach Europejskiego Funduszu Społecznego

Problemy oznaczania pierwiastków w osadach i glebie Marcin Niemiec, Jacek Antonkiewicz, Małgorzata Koncewicz-Baran, Jerzy Wieczorek

Ćwiczenie 1. Ćwiczenie Temat: Podstawowe reakcje nieorganiczne. Obliczenia stechiometryczne.

XXIV KONKURS CHEMICZNY DLA GIMNAZJALISTÓW ROK SZKOLNY 2016/2017

TARNOWSKI KONKURS CHEMICZNY PWSZ w Tarnowie etap II część doświadczalna

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 ZASADY OCENIANIA

Transkrypt:

Ćwiczenie 1 Roztwarzanie materiału roślinnego do określenia zawartości magnezu w materiale roślinnym metodą spektrofotometrii UV-Vis 1.1. Wprowadzenie Próbki biologiczne, do których należą materiały roślinne, stanowią zróżnicowaną grupę substancji chemicznych o bardzo różnorodnych własnościach. Są to najczęściej układy heterogeniczne charakteryzujące się ogromną zmiennością składu w czasie, zależną w dużej mierze od wpływu otoczenia (środowiska). Tylko nieliczne techniki analityczne umożliwiają badanie makro- i mikroskładników w materiałach biologicznych bez uprzedniego ich przygotowania. Metody analizy wymagają przeważnie rozkładu (mineralizacji, roztworzenia) badanego materiału i przygotowania próbki w postaci roztworu. Roztwarzanie definiowane jest zwykle jako prosty proces rozpuszczania substancji w odpowiedniej cieczy, w niskiej temperaturze z udziałem lub bez reakcji chemicznej, podczas gdy mineralizacja oznacza bardziej złożony proces, dokonywany zwykle w wyższej temperaturze/lub pod zwiększonym ciśnieniem, przy pomocy odczynników i specjalnej aparatury. Różne techniki oznaczania pierwiastków wymagają innego stopnia zniszczenia matrycy organicznej. Gdy określa się całkowitą zawartość pierwiastka, należy wybrać procedurę całkowitego roztwarzania, z uwzględnieniem takich czynników jak metoda oznaczania, skład matrycy, możliwe interferencje, ryzyko strat lub zanieczyszczeń. Do najbardziej popularnych metod roztwarzania próbek biologicznych należą: mineralizacja z użyciem kwasów (na mokro) lub spopielanie (mineralizacja sucha). 1.1.1. Techniki rozkładu próbek na sucho Do podstawowych technik mineralizacji na sucho należą: Spopielanie - polega ono na powolnym rozkładzie materii organicznej w piecu w temperaturze pomiędzy 400-600 c C. W trakcie rozkładu powstaje popiół, złożony 1

głównie z węglanów i tlenków, który następnie roztwarza się w odpowiednim kwasie lub mieszaninie kwasów. Mineralizacja niskotemperaturowa w plazmie tlenowej - strumień bardzo czystego tlenu wzbudzonego w polu generatora wysokiej częstotliwości (ponad 27 MHz) czyli tzw. strumień plazmy tlenowej o temperaturze 80-200 C kieruje się na analizowaną próbkę powodując jej spalenie (utlenienie). Zamknięty układ i brak konieczności stosowania dodatkowych odczynników ogranicza możliwość zanieczyszczania próbki. Wadą metody jest długi czas przebiegu procesu (od kilku do kilkunastu godzin). Mineralizacja próbki w bombie tlenowej- próbkę umieszcza się w kwarcowej łódeczce w zamkniętym hermetycznie naczyniu ciśnieniowym, tzw. bombie tlenowej. Naczynie napełnia się tlenem pod ciśnieniem 0,2 do 6,0 MPa i elektrycznie inicjuje zapłon. Stosuje się ją do rozkładu próbek biologicznych i żywności. Rozkład próbki w butli Schönigera - próbkę poddaje się spaleniu w atmosferze tlenu pod ciśnieniem atmosferycznym w kolbie szklanej lub kwarcowej. Powstałe gazowe produkty rozkładu absorbowane są w roztworze pochłaniającym (kwas siarkowy(vi) lub nadtlenek wodoru). Technikę tę stosuje się często do oznaczania pierwiastków głównych w materiale roślinnym. Mineralizacja próbki w układzie dynamicznym stosowana najczęściej w organicznej analizie elementarnej. Polega na umieszczeniu próbki w łódeczce znajdującej się w rurze kwarcowej ogrzewanej do temp. 800-1000ºC, przez którą przepływa najczęściej strumień czystego tlenu. Gazowe produkty rozpadu materii organicznej zatrzymywane są przez absorbenty wypełnione odpowiednio dobranymi substancjami. Udział poszczególnych pierwiastków (C, H, N, O, S) w próbce wyznacza się na podstawie przyrostu masy odpowiednich absorbentów. Stapianie - polega na stapianiu sproszkowanej próbki z topnikami takimi jak węglany alkaliczne, boraks, w tyglu grafitowym umieszczonym w piecu. Po ochłodzeniu otrzymany stop rozpuszcza się w kwasach. Metoda stosowana jest przeważnie dla próbek trudno poddających się roztwarzaniu w bezpośredniej reakcji z kwasami. W analityce środowiska metodę tę wykorzystuje się sporadyczne z powodu wysokiego poziomu tła (duże ilości topnika oraz kontakt w podwyższonej temperaturze z materiałem naczynia) oraz strat lotnych składników próbki. 2

1.1.2. Techniki mineralizacji na mokro Rozkład matrycy odbywa się za pomocą jednego lub kilku mocnych kwasów mineralnych z dodatkiem lub bez innych związków o właściwościach utleniających. Utleniaczami są zazwyczaj HNO 3, H 2 SO 4, HCIO 4 oraz H 2 O 2. Rozkład próbki odbywa się pod wpływem tlenu uwalnianego z tych kwasów w podwyższonej temperaturze. Do podstawowych technik rozkładu próbek na mokro zaliczamy: Rozpuszczanie w kwasach na gorąco do destrukcji materii organicznej stosuje się najczęściej kwas azotowy(v). Mineralizacja z wykorzystaniem ultradźwięków - naczynko reakcyjne z próbką i dodaną mieszaniną utleniającą umieszcza się w łaźni ultradźwiękowej. Energia ultradźwiękowa znacznie przyśpiesza proces rozkładu. Technika ta stosowana jest do roztwarzania stałych próbek środowiskowych. Mineralizacja za pomocą promieniowania UV - polega na naświetlaniu mineralizowanego roztworu w kwarcowym naczyniu reakcyjnym nisko- lub wysokociśnieniową lampą ultrafioletową. Technika ta stosowana jest do mineralizacji próbek wód, ścieków, płynów ustrojowych czy napojów. Mineralizacja ciśnieniowa z wykorzystaniem energii mikrofalowej - jest to najczęściej połączenie trzech technik mineralizacji: mineralizacji z zastosowaniem kwasu(ów) i innych substancji mineralizujących, w układzie zamkniętym-ciśnieniowym w tzw. bombie teflonowej'" oraz z zastosowaniem energii mikrofalowej. Podczas gdy rozkład próbki przez trawienie w kwasach, bądź też stapianie z solami metali alkalicznych jest oparty na zastosowaniu energii chemicznej i energii cieplnej, mineralizacja mikrofalowa zachodzi w wyniku działania promieniowania elektromagnetycznego o częstotliwości 2450 MHz, co powoduje wytworzenie ciepła wzmagającego reakcje chemiczne prowadzące do rozkładu próbki. 1.1.3. Magnez jako jeden z najważniejszych biopierwiastków Magnez został odkryty w 1775 roku przez Josepha Blacka. Jest on jednym z najważniejszych biopierwiastków, niezbędnym do przeprowadzania ponad stu reakcji biochemicznych, w których działa jako aktywator enzymów. Pierwiastek ten bierze udział w procesie fotosyntezy, w konstrukcji błon komórkowych. Odpowiada za wydolność układu nerwowego, kostnego, pokarmowego czy też krążenia. Hamuje procesy starzenia oraz miażdżycę. 60 % magnezu znajduje się w kościach, 39 % w tkankach mięśniowych, natomiast 1 % występuje w płynach 3

międzykomórkowych. Niedobór magnezu prowadzi do nadpobudliwości psychoruchowej, zaburzeń koncentracji, nadmiernej nerwowości, skurczów mięśni, drżenia powiek, bezsenności oraz osteoporozy. Pomimo, iż znaczne ilości magnezu występują w produktach zbożowych (nasionach, mąkach z pełnego przemiału, soi, kaszach nie oczyszczonych), orzechach, suszonych i świeżych owocach, pierwiastek ten słabo wchłania się z pożywienia zaledwie 15-40%. Jest to związane z obecnością niektórych związków, które tworzą kompleksy z magnezem i uniemożliwiają łączenie aminokwasów z jonami magnezowymi. Takimi związkami są np.: np. kwas fitynowy, szczawiowy (jarzyny i otręby zbóż), fosforowy (ryby) oraz wolne nasycone kwasy tłuszczowe (tłuste mięsa i tłusty nabiał). 1.2. Cel ćwiczenia Celem ćwiczenia jest przygotowanie próbki materiału roślinnego do oznaczenia zawartości magnezu metodą spektrofotometrii UV-Vis. 1.3. Wykonanie ćwiczenia 1.3.1. Roztwarzanie materiału roślinnego (mineralizacja na mokro) Odważyć nie więcej niż 0,2 g liści borówki brusznicy, przenieść ilościowo do kolby okrągłodennej poj. 250 ml i dodać 10 ml stężonego kwasu azotowego(v). Kolbę umieścić w płaszczu grzejnym, połączyć z chłodnicą zwrotną, włączyć zasilanie wody chłodzącej i rozpocząć ogrzewanie do momentu całkowitego roztworzenia próbki i zaniku wydzielania się tlenków azotu. W miarę potrzeby dodać kilka ml stężonego roztworu HNO 3, lecz nie ogrzewać dłużej niż 2 godziny. Po ochłodzeniu roztworu wprowadzić 10 ml 30% nadtlenek wodoru i kontynuować ogrzewanie do całkowitego odbarwienia roztworu (w razie konieczności wprowadzić dodatkową 5 ml porcję wody utlenionej). Wyłączyć ogrzewanie płaszcza grzejnego i poczekać do ostudzenia roztworu. Zawartość kolby przenieść ilościowo przez sączek do kolby miarowej poj. 50 ml i uzupełnić wodą destylowaną do kreski. Tak sporządzony roztwór roztworzonego materiału roślinnego może zostać wykorzystany do oznaczania zawartości magnezu w materiale roślinnym metodą spektrofotometrii UV-Vis. 1.3.2 Oznaczenie zawartości magnezu w materiale roślinnym metodą spektrofotometrii UV-Vis a. Przygotowanie roztworów wzorcowych Do 6 kolb miarowych o pojemności 50 ml wprowadzić kolejno: 0; 50; 100; 150; 200 i 250 l 4

wzorcowego roztworu soli magnezu o stężeniu 1000 ppm. Następnie do każdej kolby dodać 5,0 ml roztworu żółcieni tytanowej, 1,0 ml 1 % roztworu alkoholu poliwinylowego i 25 ml wody. Wymieszać, a następnie mieszając dodawać kroplami do każdej kolby 5,0 ml 1,0 M roztworu NaOH. Uzupełnić kolby wodą do kreski i dokładnie wymieszać. Po upływie 15 min. zmierzyć absorbancję roztworów przy =545 nm. b. Oznaczanie zawartości magnezu w badanej próbce Pobrać 10 ml roztworu uzyskanego po roztworzeniu próbki i wprowadzić do kolby o pojemności 50,0 ml. Następnie do kolby dodać 5,0 ml roztworu żółcieni tytanowej, 1,0 ml 1 % roztworu alkoholu poliwinylowego i 10 ml wody. Wymieszać, a następnie mieszając dodawać kroplami do kolby 6,0 M roztwór NaOH do zmiany zabarwienia oraz 5,0 ml 1,0 M roztworu NaOH. Uzupełnić kolby wodą do kreski i dokładnie wymieszać. Po upływie 15 min. zmierzyć absorbancję roztworów przy =545 nm. 1.4. Odczynniki i sprzęt laboratoryjny Roztwarzanie materiału roślinnego (mineralizacja na mokro) Zestaw do mineralizacji na mokro płaszcz grzejny, regulator napięcia, chłodnica zwrotna, kolba okrągłodenna poj. 250 ml, Waga analityczna 1 szt., Wysuszone liście borówki brusznicy, Stężony kwas azotowy(v), 30% nadtlenek wodoru (w butelce zakręcanej 200 ml) kolba miarowa poj. 50 ml z korkiem, cylindry miarowe poj. 10 cm 3-2 szt., lejek szklany mały 2 szt, lejek szklany średni 1 szt., łyżeczka metalowa 1szt., naczynko wagowe 1 szt., bagietka szklana 1 szt., sączki. 5

Oznaczenie zawartości magnezu w materiale roślinnym metodą spektrofotometrii UV-Vis kolba miarowa poj. 50 ml 7 szt., 100 ml wodnego roztworu wzorcowego magnezu o stężeniu 1000 ppm (kolba stożkowa), 1000 ml wodnego roztworu żółcieni tytanowej o stężeniu 0,05%, 1000 ml wodnego roztworu alkoholu poliwinylowego o stężeniu 1%, 500 ml wodnego roztworu 1M NaOH, 100 ml wodnego roztworu 6 M NaOH, strzykawka 250 μl 1 szt., pipeta 1 ml 1 szt., pipeta 2 ml 7 szt., pipeta 5 ml 2 szt., cylinder 10 ml 2 szt., pipeta Pasteura 5 szt., cenki Opracowanie wyników 1. W sprawozdaniu należy dokładnie opisać część doświadczalną. 2. Metodą krzywej kalibracyjnej obliczyć zawartość magnezu w badanej próbce. 3. Skomentować uzyskane wyniki. Literatura 1. Kabata-Pendias A., Pendias H. 1999. Biogeochemia pierwiastków śladowych. PWN, Warszawa 2. Piotr Stepnowski, Elżbieta Synak, Beata Szafranek, Zbigniew Kaczyński. 2010. Monitoring i analityka zanieczyszczeń w środowisku. Uniwersytet Gdański, Gdańsk. 3. http://www.ptmag.pl 6