Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

Podobne dokumenty
ANALIZA INSTRUMENTALNA

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

ĆWICZENIE 2 WSPÓŁOZNACZANIE WODOROTLENKU I WĘGLANÓW METODĄ WARDERA. DZIAŁ: Alkacymetria

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

III A. Roztwory i reakcje zachodzące w roztworach wodnych

Wyznaczanie stałej dysocjacji pk a słabego kwasu metodą konduktometryczną CZĘŚĆ DOŚWIADCZALNA. Tabela wyników pomiaru

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

OZNACZANIE ZAWARTOŚCI MANGANU W GLEBIE

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 ZASADY OCENIANIA

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

Skład zespołu (imię i nazwisko): (podkreślić dane osoby piszącej sprawozdanie):

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

MIANOWANE ROZTWORY KWASÓW I ZASAD, MIARECZKOWANIE JEDNA Z PODSTAWOWYCH TECHNIK W CHEMII ANALITYCZNEJ

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

ĆWICZENIE 4. Oczyszczanie ścieków ze związków fosforu

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Ćwiczenie 1. Technika ważenia oraz wyznaczanie błędów pomiarowych. Ćwiczenie 2. Sprawdzanie pojemności pipety

Katedra Chemii Analitycznej Metody elektroanalityczne. Ćwiczenie nr 5 WOLTAMPEROMETRIA CYKLICZNA

ĆWICZENIE 11. ANALIZA INSTRUMENTALNA KOLORYMETRIA - OZNACZANIE Cr(VI) METODĄ DIFENYLOKARBAZYDOWĄ. DZIAŁ: Kolorymetria

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

Klasa czystości I II III IV V

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2017 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

DEZYNFEKCJA WODY CHLOROWANIE DO PUNKTU

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z FIZYKOCHEMICZNYCH PODSTAW ŻYCIA DLA STUDENTÓW I ROKU BIOLOGII OGÓLNEJ, BIOTECHNOLOGII I BIOINFORMATYKI

AKADEMIA GÓRNICZO-HUTNICZA im. Stanisława Staszica w Krakowie OLIMPIADA O DIAMENTOWY INDEKS AGH 2017/18 CHEMIA - ETAP I

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 5

TARNOWSKI KONKURS CHEMICZNY PWSZ w Tarnowie etap II część doświadczalna

Laboratorium Podstaw Biofizyki

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

Nazwa kwalifikacji: Przygotowywanie sprzętu, odczynników chemicznych i próbek do badań analitycznych Oznaczenie kwalifikacji: A.59 Numer zadania: 01

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 8. Argentometryczne oznaczanie chlorków metodą Fajansa

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2018 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA. Spektrofluorymetryczne oznaczanie Al w postaci chelatowego kompleksu glinu z moryną.

ROZPORZĄDZENIE MINISTRA ŚRODOWISKA 1)

SPEKTROMETRIA FLUORESCENCYJNA CZĄSTECZKOWA. Spektrofluorymetryczne oznaczanie ryboflawiny.

Utylizacja i neutralizacja odpadów Międzywydziałowe Studia Ochrony Środowiska

A4.05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Regulamin BHP pracowni chemicznej. Pokaz szkła. Technika pracy laboratoryjnej

CEL ĆWICZENIA: Zapoznanie się z przykładową procedurą odsalania oczyszczanych preparatów enzymatycznych w procesie klasycznej filtracji żelowej.

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 7

TWARDOŚĆ WODY. Ca(HCO 3 ) HCl = CaCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2. Mg(HCO 3 ) 2 + 2HCl = MgCl 2 + 2H 2 O + 2CO 2

RÓWNOWAGI W ROZTWORACH ELEKTROLITÓW.

Ćw. 5 Absorpcjometria I

Laboratorium 3 Toksykologia żywności

PEHAMETRIA I ROZTWORY BUFOROWE

ĆWICZENIE 7 WSPÓŁOZNACZANIE WAPNIA I MAGNEZU I OBLICZANIE TWARDOŚCI WODY. DZIAŁ: Kompleksometria

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z CHEMII OGÓLNEJ I ANALITYCZNEJ DLA STUDENTÓW I ROKU OCHRONY ŚRODOWISKA

Pracownia analizy ilościowej dla studentów II roku Chemii specjalność Chemia podstawowa i stosowana. Argentometryczne oznaczanie chlorków w mydłach

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 CZĘŚĆ PRAKTYCZNA

Program ćwiczeń laboratoryjnych z fizykochemicznych podstaw życia dla I r Biologii niestacjonarnej

Oznaczanie SO 2 w powietrzu atmosferycznym

Oznaczanie mocznika w płynach ustrojowych metodą hydrolizy enzymatycznej

Analiza miareczkowa. Alkalimetryczne oznaczenie kwasu siarkowego (VI) H 2 SO 4 mianowanym roztworem wodorotlenku sodu NaOH

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI SŁABEGO KWASU ORGANICZNEGO

CEL ĆWICZENIA Zapoznanie studentów z chemią 14 grupy pierwiastków układu okresowego

CHEMIA ŚRODKÓW BIOAKTYWNYCH I KOSMETYKÓW PRACOWNIA CHEMII ANALITYCZNEJ. Ćwiczenie 9

RSM ROZTWÓR SALETRZANO-MOCZNIKOWY

PODSTAWOWE TECHNIKI PRACY LABORATORYJNEJ: WAŻENIE, SUSZENIE, STRĄCANIE OSADÓW, SĄCZENIE

ĆWICZENIE 13. ANALIZA INSTRUMENTALNA Miareczkowanie Potencjometryczne

MATERIAŁY DO ĆWICZEŃ LABORATORYJNYCH Z CHEMII OGÓLNEJ I ANALITYCZNEJ DLA STUDENTÓW I ROKU NAUCZANIA BIOLOGII I PRZYRODY STUDIÓW DZIENNYCH

Reakcje utleniania i redukcji Reakcje metali z wodorotlenkiem sodu (6 mol/dm 3 )

SEMINARIUM Z ZADAŃ ALKACYMETRIA

Laboratorium Budownictwa WBiA

Analiza instrumentalna

Potencjometryczna metoda oznaczania chlorków w wodach i ściekach z zastosowaniem elektrody jonoselektywnej

STĘŻENIE JONÓW WODOROWYCH. DYSOCJACJA JONOWA. REAKTYWNOŚĆ METALI

OZNACZANIE INDEKSU FENOLOWEGO W WODZIE

Jod. Numer CAS:

EGZAMIN POTWIERDZAJĄCY KWALIFIKACJE W ZAWODZIE Rok 2019 ZASADY OCENIANIA

KINETYKA HYDROLIZY SACHAROZY

ANALIZA OBJĘTOŚCIOWA

Badanie procesu starzenia się kwasu ortokrzemowego w roztworach wodnych

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Adsorpcja kwasu octowego na węglu aktywnym. opracowała dr hab. Małgorzata Jóźwiak

II. ODŻELAZIANIE LITERATURA. Zakres wiadomości obowiązujących do zaliczenia przed przystąpieniem do wykonania. ćwiczenia:

Transkrypt:

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej Metoda: Spektrofotometria UV-Vis Cel ćwiczenia: Celem ćwiczenia jest zapoznanie studenta z fotometryczną metodą badania stanów równowagi chemicznej w roztworach oraz wyznaczenie stałej dysocjacji kwasowej czerwieni fenolowej na podstawie pomiarów spektrofotometrycznych. Odczynniki Czerwień fenolowa cz.d.a., roztwór wodny o stężeniu 0.02% Roztwór podstawowy wg Brittona i Robinsona oraz inne sole i roztwory Roztwór NaoH o stężeniu 0,2 mol/dm 3 Aparatura i sprzęt laboratoryjny Kolby miarowe o pojemności 10 cm 3 20 szt. oraz pipety o różnych pojemnościach Spektrofotometr UV-Vis Sposób wykonania: Serie buforów do pomiarów absorbancji można wykonać na dwa sposoby, z roztworu podstawowego wg Brittona i Robinsona lub roztworów buforowych różnych substancji. Sposób 1. 1. Sporządzić serię buforów w kolbach o pojemności 10 cm 3 dodając roztwór wg Brittona i Robinsona oraz roztwór NaOH zgodnie z tabelą podaną poniżej. Roztwór Objętość roztworu wg Objętość roztworu NaOH ph Brittona i Robinsona o stężeniu 0,2 mol/dm 3 1 5,0 cm 3 0,00 cm 3 1,81 2 5,0 cm 3 0,25 cm 3 1,98 3 5,0 cm 3 0,50 cm 3 2,21 4 5,0 cm 3 0,75 cm 3 2,56 5 5,0 cm 3 1,00 cm 3 3,29 6 5,0 cm 3 1,25 cm 3 4,10 7 5,0 cm 3 1,50 cm 3 4,56 8 5,0 cm 3 1,75 cm 3 5,02 9 5,0 cm 3 2,00 cm 3 5,72 10 5,0 cm 3 2,25 cm 3 6,37 11 5,0 cm 3 2,50 cm 3 6,80 12 5,0 cm 3 2,75 cm 3 7,24 13 5,0 cm 3 3,00 cm 3 7,96 14 5,0 cm 3 3,25 cm 3 8,69 15 5,0 cm 3 3,50 cm 3 9,15 16 5,0 cm 3 3,75 cm 3 9,62 17 5,0 cm 3 4,00 cm 3 10,38 18 5,0 cm 3 4,25 cm 3 11,20 19 5,0 cm 3 4,50 cm 3 11,58 1

2. Do kolbek miarowych z roztworami buforowymi przygotowanymi powyżej należy odmierzyć dokładnie po 0,5 cm 3 0.02% roztworu wskaźnika czerwieni fenolowej. Kolbki uzupełnić do kreski wodą destylowaną. Roztwory w kolbach dokładnie wymieszać. 3. Pomiar wykonać w kuwetach kwarcowych o szerokości 1 cm, w tym celu należy pobrać 2 cm 3 substancji oznaczanej i przenieś do kuwety pomiarowej. Odnośnikiem w pomiarach jest druga kuweta kwarcowa napełniona wodą destylowaną. 4. Zarejestrować widmo absorpcji dla roztworu nr 5 i 16 w granicach długości fali od 350 do 650 nm, w odstępach co 10 nm, zapisując wartości absorbancji. Następnie wybierając dwie analityczne długości fali (maksima absorbancji) wykonujemy pomiary dla pozostałych roztworów również zapisując wartości absorbancji. Sposób 2. 1. Sporządzić serię buforów w kolbach o pojemności 10 cm 3 zgodnie z tabelą poniżej. stężenie związek wykonanie ph 1. 0.05 mol/kg potasu triwodorodiszczawian m naważki = 0.1262 g dwuwodny (KH 3 C 4 O. 8 2H 2 O) 1.68 2. roztwór nasycony potasu wodorowinian w 25 o C (KHC 4 H 4 O 6 ) m naważki = 0.064 g 3.56 3. 0.05 mol/kg potasu wodoroftalan dwuwodny (KHC 8 H 4 O. 4 2H 2 O) m naważki = 0.1012 g 4.01 4. 0.01 mol/dm 3 kwas octowy 1 cm 3 0.1 M 0.1 mol/dm 3 (CH 3 COOH) sodu octan trójwodny m naważki = 0.082 g 5.41 (CH 3 COONa. 3H 2 O) 5. 0.025 mol/kg disodu wodorofosforan m naważki = 0.0893 g 0.025 mol/kg (Na 2 HPO. 4 12H 2 O) potasu diwodorofosforan m naważki = 0.0339 g 6.87 6. 0.03043 mol/kg 0.008695 mol/kg (KH 2 PO 4 ) disodu wodorofosforan (Na 2 HPO. 4 12H 2 O) potasu diwodorofosforan (KH 2 PO 4 ) 7. 0.01 mol/kg tetraboran sodu dziesięciowodny (Na 2 B 4 O. 7 10H 2 O) 8. 0.025 mol/kg sodu wodorowęglan (NaHCO 3 ) 0.025 mol/kg sodu węglan (Na 2 CO. 3 10H 2 O) 9. roztwór nasycony w 25 o C wapnia wodorotlenek [Ca(OH) 2 ] m naważki = 0.1085 g m naważki = 0.0118 g m naważki = 0.1901 g m naważki = 0.0209 g m naważki = 0.0713 g m naważki = 0.015 g 7.41 9.18 10.01 12.45 Substancje naważamy bezpośrednio w kolbach miarowych, następnie dodajemy 5 cm 3 wody destylowanej, rozpuszczamy związki i postępujemy zgodnie z dalszymi instrukcjami. 2

2. Do kolbek miarowych z roztworami buforowymi kolejno od 1 do 9 przygotowanych powyżej należy odmierzyć dokładnie po 1.0 cm 3 0.01% roztworu wskaźnika czerwieni fenolowej. Kolbki uzupełnić do kreski wodą destylowaną. Roztwory w kolbach dokładnie wymieszać. 3. Pomiar wykonać w kuwetach kwarcowych o szerokości 1 cm, w tym celu należy pobrać 2 cm 3 substancji oznaczanej i przenieś do kuwety pomiarowej. Odnośnikiem w pomiarach jest druga kuweta kwarcowa napełniona wodą destylowaną. 4. Zarejestrować widmo absorpcji dla roztworu nr 2 i 8 w granicach długości fali od 350 do 650 nm, w odstępach co 10 nm, zapisując wartości absorbancji. Następnie wybierając dwie analityczne długości fali (maksima absorbancji) wykonujemy pomiary dla pozostałych 8 roztworów również zapisując wartości absorbancji. Opracowanie wyników: 1. Sporządzić tabelę długości fali światła, przy których absorbancje osiągają maksimum oraz absorbancje odpowiadające tym długościom, np. λ max [nm] λ max1 λ max2 ph 1 ph 2 ph 3 ph n-1 ph n 2. Na podstawie pomiarów zestawionych w powyższej tabeli wykreślić zależność absorbancji od ph roztworów przy λ max1 i przy λ max2. 3. Znaleźć stałą dysocjacji wskaźnika sposobem graficznym i uzasadnić przeprowadzone postępowanie. Literatura: 1. W. Szczepaniak, Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN 2005. 2. J. Minczewski, Z. Marczenko, Chemia Analityczna, tom 3, Analiza Instrumentalna, PWN 1998. 3. A. Cygański, Metody spektroskopowe w chemii analitycznej, WNT 2002. 3

Wyznaczanie składu kompleksu metodami Yoe a Jonesa (stosunku molowego) oraz Joba (zmian ciągłych) Metoda: Spektrofotometria UV-Vis Cel ćwiczenia: Celem ćwiczenia jest wyznaczenie składu kompleksu kobaltu(ii) z nitrozo-r-solą w buforze octanowym o ph = 5.6 Odczynniki Chlorek kobaltu(ii) cz.d.a., roztwór o stężeniu 0.001 mol/cm 3 Bufor octanowy o ph=5.6 Nitrozo-R-sól cz.d.a., roztwór o stężeniu 0.001 mol/cm 3 Aparatura i sprzęt laboratoryjny Kolby miarowe o pojemności 10 cm 3 28 szt. Pipeta jednomiarowa pojemności 2 cm 3 1 szt. Pipeta wielomiarowa pojemności 5 cm 3 2 szt. Pipeta wielomiarowa pojemności 10 cm 3 2 szt. Spektrofotometr Sposób wykonania: 1. Wyznaczenie składu kompleksu kobaltu(ii) z nitrozo-r-solą, metodą Yoe a-jonesa. Do piętnastu kolbek miarowych o pojemności 10 cm 3 wprowadzić po 2 cm 3 buforu octanowego, a następnie odmierzyć podane w tabeli ilości roztworów soli kobaltu(ii) oraz nitrozo- R-soli. Numer próbki 1 2 3 13 14 15 Objętość Co(II) [ml] 1 1 1 1 1 1 Objętość nrs [ml] 0.0 0.4 0.8 4.8 5.2 5.6 Zawartość kolbek uzupełnić wodą destylowaną do kreski. Dokładnie wymieszać i po upływie 10 minut zmierzyć absorbancję wszystkich próbek w kuwetach 1 cm, wobec wody jako odnośnika przy długości fali 530 nm. 2. Wyznaczenie składu kompleksu kobaltu(ii) z nitrozo-r-solą, metodą Joba. Do trzynastu kolbek miarowych o pojemności 10 cm 3 wprowadzić po 2 cm 3 buforu octanowego, a następnie odmierzyć podane w tabeli ilości roztworów soli kobaltu(ii) oraz nitrozo- R-soli. 4

Numer próbki 1 2 3 11 12 13 Objętość Co(II) [ml] 0.0 0.4 0.8 4.0 4.4 4.8 Objętość nrs [ml] 4.8 4.4 4.0 0.8 0.4 0.0 Zawartość kolbek uzupełnić wodą destylowaną do kreski. Dokładnie wymieszać i po upływie 10 minut zmierzyć absorbancję wszystkich próbek w kuwetach 1 cm, wobec wody jako odnośnika przy długości fali 530 nm. Opracowanie wyników: 1. Zgodnie z danymi uzyskanymi w pkt. 1 wykonać wykresy: a) zależności absorbancji od ilości cm 3 nitrozo-r-soli w kolejnych mierzonych próbkach 2. Sporządzić wykresy zgodne z danymi uzyskanymi w pkt. 2: a) w układzie osi współrzędnych według podanego wzoru: A 0 1 2 3... N ml Metalu N 3 2 1 0 ml Ligandu 3. Porównać uzyskane dla każdego kompleksu wykresy i wyznaczyć składy badanych kompleksów. Literatura: 1. W. Szczepaniak, Metody instrumentalne w analizie chemicznej, PWN 2005. 2. J. Minczewski, Z. Marczenko, Chemia Analityczna, tom 3, Analiza Instrumentalna, PWN 1998. 3. A. Cygański, Metody spektroskopowe w chemii analitycznej, WNT 2002. 5