CHARAKTERYSTYKA POPULACJI PYRENOPHORA TERES WYSTĘPUJĄCEJ NA JĘCZMIENIU JARYM W WIELKOPOLSCE*

Podobne dokumenty
PW Zadanie 3.3: Monitoring zmian zdolności chorobotwórczych populacji patogenów z kompleksu Stagonospora spp. / S.

Najważniejsze choroby rzepaku ozimego (BBCH 30-33). Jak je zwalczać?

Wykorzystanie krajowych i światowych zasobów genowych w pracach badawczych oraz hodowlanych pszenicy

WPŁYW MIESZANINY PROPIONIBACTERIUM FREUDENREICHII I LACTOBACILLUS RHAMNOSUS NA ZDROWOTNOŚĆ I PLON RZEPAKU OZIMEGO

Sprawozdanie z prac PW obszar/zdanie 6.10 L. BOROS, T. GÓRAL

Ochrona fungicydowa zbóż - mieszaniny czynią cuda!

PW : / S.

SEGREGACJA TRANSGRESYWNA POKOLENIA F 2 KUKURYDZY W PODATNOŚCI NA FUSARIUM SPP.

Zabieg T3 - ochroń kłos przez groźnymi chorobami!

AKTUALNA SYGNALIZACJA WYSTĘPOWANIA CHORÓB I SZKODNIKÓW W UPRAWACH ROLNICZYCH NA DZIEŃ r.

WYSTĘPOWANIE NA ODMIANACH PSZENICY OZIMEJ KOMPLEKSU CHORÓB PODSTAWY ŹDŹBŁA W ZALEŻNOŚCI OD SPOSOBU UPRAWY I TERMINU SIEWU

OGRANICZENIE NASILENIA WYSTĘPOWANIA CHORÓB GRZYBOWYCH W MIESZANKACH ZBÓŻ JARYCH

Efektywne fungicydy na zboża: Priaxor

Zwalczanie alternariozy ziemniaka oraz zarazy w jednym zabiegu!

Nasilenie występowania głównych patogenów ziemniaka na terenie Polski w latach

Zdrowotność jęczmienia jarego uprawianego w systemie konwencjonalnym i ekologicznym z uwzględnieniem konwersji

Zadanie 3.5. Monitoring zmian zdolności chorobotwórczych populacji organizmów szkodliwych kukurydzy

Ochrona fungicydowa liści i kłosa w zbożach

owies mszyce mszyca czeremchowo-zbożowa - 5 mszyc na 1 źdźbło mszyca zbożowa - 5 mszyc na kłosie

Zagrożenia ze strony grzyba Rhizoctonia solani na plantacjach buraka cukrowego

Choroby podstawy źdźbła - rozpoznawanie, prewencja i zwalczanie

Tocata Duo. Skuteczność, opłacalność, plon! To się liczy!

Monitoring zmian zdolności chorobotwórczych populacji organizmów szkodliwych dla roślin oleistych

Ocena podatności odmian rzepaku jarego na zgniliznę twardzikową

Zwalczanie alternariozy i zarazy ziemniaka z dodatkową korzyścią!

Modele ochrony zbóż jako element integrowanej produkcji

ZMIANY W PLONOWANIU, STRUKTURZE PLONU I BUDOWIE PRZESTRZENNEJ ŁANU DWÓCH ODMIAN OWSA W ZALEŻNOŚCI OD GĘSTOŚCI SIEWU

Septorioza w zbożach ozimych: czym ją skutecznie zwalczyć?

Występowanie chorób pszenicy ozimej w zależności od wybranych czynników agrotechnicznych

Monitoring występowania i zmian patogeniczności w populacjach nekrotroficznych patogenów zbóż

Otrzymywanie czystych izolatów grzyba Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary z zanieczyszczonych sklerocjów

Chorobotwórczość mączniaka prawdziwego jęczmienia (Blumeria graminis f.sp. hordei) w Polsce w latach

Zabieg fungicydowy T1 dopasowany do obecnych warunków polowych

Wyższa sztuka walki z mączniakiem

Charakterystyka materiałów hodowlanych pszenicy ozimej pod względem odporności na rdzę brunatną (Puccinia triticina)

Zaraza ziemniaka - Phytophthora infestans (Mont.) de By 1. Systematyka Rząd: Pythiales Rodzina: Pythiaceae Rodzaj: Phytophthora

Ochrona kukurydzy przed chorobami powinna być przeprowadzona wszystkimi dostępnymi metodami nie tylko chemicznymi

Wirulencja populacji Puccinia striiformis sprawcy rdzy żółtej na pszenżycie w Polsce

Jak radzić sobie z chorobami grzybowymi zbóż?

Przydatność odmian pszenicy jarej do jesiennych siewów

Źródła odporności na rdzę żółtą, rdzę brunatną i rdzę źdźbłową w polskich materiałach hodowlanych pszenicy

Wirusy występujące na zbożach w Polsce

KOMBAJNY ZBOŻOWE W ROLNICTWIE POLSKIM W LATACH

Zadanie 6.2. Śledzenie zmian patogeniczności w populacjach Clavibacter michiganensis

WPŁYW TERMINU WYKONANIA JESIENNYCH ZABIEGÓW FUNGICYDOWYCH NA NASILENIE OBJAWÓW SUCHEJ ZGNILIZNY KAPUSTNYCH NA RZEPAKU W REGIONIE DOLNEGO ŚLĄSKA

WPŁYW WARUNKÓW POGODY NA PORAŻENIE ZBÓŻ OZIMYCH PATOGENAMI LIŚCI I KŁOSÓW

Zastosowanie markerów RAPD do określenia podobieństwa genetycznego odmian jęczmienia ozimego (Hordeum vulgare L.)

System wczesnego ostrzegania Stacja Doświadczalna BASF w Gurczu woj. Pomorskie, r.

275 SC. Gigant NOWOŚĆ! Chcesz go poznać! fungicyd. Kompletna i długotrwała ochrona zbóż przed chorobami grzybowymi w terminie liścia flagowego.

Nauka Przyroda Technologie

Zwalczanie chorób buraka cukrowego może być proste i skuteczne!

Bezopryskowa ochrona fungicydowa jęczmienia jarego

CECHY GEOMETRYCZNE ZIARNA WYBRANYCH ODMIAN ZBÓŻ

Określenie przydatności odmian do uprawy w zasiewach mieszanych pszenicy ozimej

NR 228 BIULETYN INSTYTUTU HODOWLI I AKLIMATYZACJI ROŚLIN 2003

KRZYSZTOF KUBIAK I. WSTĘP

Quantum MZ 690 WG. Energia w czystej postaci! fungicyd mankozeb, dimetomorf

Grzyby uprawne w produkcji żywności tradycyjnej

Healthiness of broad bean stem base depending on applied protection. Zdrowotność podstawy pędu bobu w zależności od zastosowanej ochrony

Topsin + Mantrac w Zielonym Paku

Działania prowadzone w ramach zadania

WIADOMOŚCI - INFORMACJE - OPINIE

Wyższa sztuka walki z mączniakiem

Osiris. Zobacz efekt Osiris

WPŁYW BIOLOGICZNYCH I CHEMICZNYCH ZAPRAW NASIENNYCH NA PARAMETRY WIGOROWE ZIARNA ZBÓŻ

Podatność polskich materiałów hodowlanych pszenicy na rdzę źdźbłową

NR 280 BIULETYN INSTYTUTU HODOWLI I AKLIMATYZACJI ROŚLIN 2016

Jesienne siewy zbóż? Tylko z dobrą zaprawą!

Ocena potencjału biomasy stałej z rolnictwa

Ochrona zbóż przed chorobami grzybowymi z wirtuozerią!

Wpływ różnych substancji aktywnych fungicydów na plonowanie odmian jęczmienia jarego o zróżnicowanej genetycznej odporności na mączniaka prawdziwego

Pszenica jara: jakie nasiona wybrać?

Groźne choroby buraka cukrowego - czym je zwalczać?

Początki uprawy buraków

Priaxor. Fungicyd do ochrony Twoich plonów i Twojego portfela!

Mączniak prawdziwy zbóż i traw: kiedy zwalczanie będzie skuteczne?

Skuteczne sposoby na zwalczanie mączniaka prawdziwego

Menara Doskonała solo Świetna w duecie

Metody zwalczania chorób grzybowych w kukurydzy

MONITORING ODPORNOŚCI VENTURIA INAEQUALIS NA FUNGICYDY STROBILURYNOWE I DODYNOWE

Ekonomiczna opłacalność chemicznego zwalczania chorób, szkodników i chwastów w rzepaku ozimym

Uniwersalne rozwiązanie na choroby grzybowe

Quantum MZ 690 WG. Energia w czystej postaci! fungicyd mankozeb, dimetomorf

SPRAWOZDANIE. pt.: Uprawy polowe metodami ekologicznymi: Określenie dobrych praktyk w uprawach polowych metodami ekologicznymi.

Ocena przezimowania, aktualne zalecenia i rekomendacje.

Przewidywane procedury rejestracji i kontroli uprawy odmian transgenicznych w Polsce

Manitoba 425 SC. fungicyd. Czuwa nad Twoim zbożem!

Badanie odporności rzepaku ozimego na porażenie przez Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary

Reakcja odmian pszenżyta ozimego na długoterminowe przechowywanie w banku genów

FLUKSAPYROKSAD NOWA STRATEGIA W ZWALCZANIU CHORÓB LIŚCI JĘCZMIENIA JAREGO

Safir 125 SC. Bogactwo zalet! fungicyd epoksykonazol

Quantum MZ 690 WG. fungicyd mankozeb, dimetomorf. Energia w czystej postaci!

KARTA PRZEDMIOTU. 1. Informacje ogólne. Szczegółowa uprawa roślin R.C7

WYSTĘPOWANIE WYBRANYCH GENÓW ODPORNOŚCI NA PARCH JABŁONI U ODMIAN I GATUNKÓW DZIKICH UŻYWANYCH W PROGRAMACH HODOWLANYCH JABŁONI.

Liść flagowy: zadbaj o jego prawidłową kondycję!

Nauka Przyroda Technologie

Zamir 400 EW. fungicyd. Niepohamowana siła!

WYKRYWANIE MICRODOCHIUM NIVALE VAR. NIVALE I M. NIVALE VAR. MAJUS W PSZENICY OZIMEJ UPRAWIANEJ W RÓŻNYCH SYSTEMACH PRODUKCJI

PAŃSTWOWA INSPEKCJA OCHRONY ROŚLIN I NASIENNICTWA

Transkrypt:

Fragm. Agron. 32(1) 2015, 66 72 CHARAKTERYSTYKA POPULACJI PYRENOPHORA TERES WYSTĘPUJĄCEJ NA JĘCZMIENIU JARYM W WIELKOPOLSCE* Agata Korbas 1, Tomasz Kosiada Katedra Fitopatologii i Nasiennictwa, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu, ul. Dąbrowskiego 159, 60-594 Poznań Synopsis. Plamistość siatkowa jęczmienia powodowana przez P. teres. Jest jedną z ważniejszych chorób jęczmienia. Celem badań było określenie zróżnicowania populacji P. teres pochodzącej z terenu Wielkopolski pod względem morfologii, patogeniczności oraz ewentualnych zależności tego zróżnicowania a różnic genetycznych określonych przy pomocy RAPD-PCR. Między kulturami grzyba nie stwierdzono wyraźnych różnic w wyglądzie grzybni oraz w wielkości zarodników. Minimalna długość zarodników wynosiła 20,6 μm a maksymalna 90,3 μm. Średnia szerokość wynosiła 18,9 μm. Badane odmiany jęczmienia różniły się podatnością na porażenie przez P. teres. Porażenie powierzchni liści odmian jęczmienia inokulowanych 31 izolatami P. teres dla odmiany Atico wynosiło 6,2%, natomiast dla odmiany Kangoo 14,6%. Stwierdzono różnice w ilości i wielkości fragmentów DNA między izolatami uzyskanymi z liści jęczmienia z objawami typowymi i nietypowymi siatkowej plamistości jęczmienia. Słowa kluczowe: jęczmień jary, Pyrenophora teres, plamistość siatkowa jęczmienia, patogeniczność WSTĘP Jęczmień jako roślina zbożowa odgrywa ważną rolę w gospodarce światowej. W strukturze zasiewu zajmuje czwarte miejsce wśród światowej produkcji zbóż (ok. 168 mln ton). Udział jęczmienia w strukturze zasiewów od wielu lat rośnie. W Polsce w latach 2008 2012 areał uprawy jęczmienia wynosił ok. 1103 tys. hektarów. W Wielkopolsce w 2012 r. powierzchnia zasiewu jęczmienia wynosiła 173,9 tys. hektarów, co stanowi 17,1% ogólnej powierzchni zasiewu jęczmienia w Polsce [Gacek 2012, GUS 2010]. Najgroźniejszym patogenem zagrażającym plantacjom jęczmienia jest Pyrenophora teres. Grzyb jest sprawcą choroby plamistości siatkowej jęczmienia; powoduje dwa typy objawów: typowe w postaci podłużnych i poprzecznych nekroz na liściu układających się we wzór siatki oraz nietypowych w postaci owalnych brunatnych plam [Fiedorow i in. 2008, Korbas i Mrówczyński 2010]. W przypadku epidemicznego wystąpienia choroby straty mogą wynieść do 40% plonu [Mathre 1997]. Wysoki potencjał przepływu genów zwiększa prawdopodobieństwo tworzenia nowych patotypów wirulencji i powstania nowych patogenicznych ras grzyba [Beattie 2006, Rau i in. 2003]. Celem badań było okreśłenie zróżnicowania populacji P. teres pochodzącej z terenu Wielkopolski pod względem morfologii, patogeniczności oraz zależności pomiędzy ewentualną zmiennością a budową DNA. 1 Adres do korespondencji Corresponding address: agatakorbas@wp.pl * Badania zostały w części sfinansowane przez Narodowe Centrum Nauki (numer projektu NN310 720840).

Charakterystyka populacji Pyrenophora teres występującej na jęczmieniu jarym... 67 MATERIAŁ I METODY Materiał do badań stanowiły izolaty grzyba P. teres uzyskane z ziarniaków jęczmienia jarego odmian: Kangoo, Prestige, Sebastian, Quench. Ziarno zostało zebrane w 2011 roku z plantacji produkcyjnych pięciu gospodarstw zlokalizowanych w Wielkopolsce (Działyń, Nagradowice, Pobiedziska, Różanna, Złotniki). Po wschodach, fazie 2 3 liści dokonano obserwacji objawów prażenia w postaci plam na liściach jęczmienia jarego. W fazie BBCH 12 13 pobrane zostały liście z dwoma typami plam wskazującymi na porażenie przez P. teres. Izolacje grzyba wykonano w laboratorium Katedry Fitopatologii Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu w roku 2012 i 2013. Uzyskano 83 izolaty grzybów, w tym 48 stanowiły izolaty P. teres. Pozostałe izolaty stanowiły grzyby z rodzaju Fusarium sp., Pyrenophora sp., Alternaria sp., Penicillium sp. Po upływie 2 tygodni sprawdzono zarodnikowanie grzyba P. teres i przystąpiono do czynności mających na celu otrzymanie kultur jednozaronikowych. Z wybranych trzydziestu jeden kultur jednozarodnikowych P. teres wykonano izolację DNA, aby następnie przystąpić do przeprowadzenia analizy molekularnej RAPD-PCR z udziałem starterów A02 i A06 oraz rozdziału elektroforetycznego. Przy użyciu mikroskopu dokonano pomiaru wielkości zarodników konidialnych P. teres. Obserwowano również wygląd grzybni powietrznej. Do oceny patogeniczności wybrano z Listy Opisowej Odmian 2012 dwie odmiany jęczmienia jarego: Atico i Kangoo różniące się odpornością na porażenie przez P. teres. Po 21 dniach od wysiania ziarniaków (faza BBCH 12 13) opryskano liście jęczmienia obu odmian zawiesiną zarodników uzyskanych z trzydziestu jeden zarodnikujących sześciotygodniowych jednozarodnikowych kultur P. teres. W tym celu każdym z trzydziestu jeden izolatów zakażono po 35 roślin jęczmienia jarego odmiany Atico i Kangoo. Ocena porażenia liczby roślin oraz powierzchni liści została przeprowadzona po 2 tygodniach od zakażenia. WYNIKI I DYSKUSJA W wyniku przeprowadzonych obserwacji oraz pomiarów nie stwierdzono różnic w morfologii grzybni uzyskanych kultur jednozarodnikowych grzyba P. teres. Zarodniki konidialne były zaokrąglone na obu końcach, cylindrycznego kształtu o barwie oliwkowej, natomiast młode zarodniki konidialne były jasno szare. Ilość komórek oraz ich długość i szerokość u badanych izolatów była zbliżona i odpowiadała zakresom wymiarów opisywanych w literaturze dla gatunku P. teres. Długość minimalna badanych zarodników wynosiła 20,6 μm, a maksymalna 90,3 μm (tab. 1). Średnia szerokość zarodnika wyniosła 18,9 μm. W innych badaniach wymiary zarodników konidialnych zbudowanych z 2 5 komórek wynosiły 18 120 μm, natomiast średnia szerokość zarodnika 10 18 μm [Crous i in. 1995, Mathre 1985, Zillinsky 1983]. Małe, nieistotne odchylenia w wymiarach zarodników mogły być spowodowane różnicą w ich stanie rozwojowym. W wyniku przeprowadzonych analiz molekularnych stwierdzono różnice w ilości i wielkości uzyskanych fragmentów DNA między izolatami uzyskanymi z liści jęczmienia z objawami typowymi, a izolatami otrzymanymi z liści z objawami nietypowymi (rys. 1). W obrębie izolatów uzyskanych z typowych objawów plamistości siatkowej jęczmienia nie było istotnych różnic; wyjątek stanowił izolat K 13/1. Natomiast w obrębie izolatów otrzymanych z plam nietypowych stwierdzono duże zróżnicowanie ilości i wielkości fragmentów DNA; w szczególności izolat K 31a/3.

68 Tabela 1. Table 1. Wymiary zarodników grzyba P. teres The dimensions of spores fungus P. teres Liczba komórek Number of cells Wymiary zarodników Dimensions of spores (μm) długość length szerokość width 2 41,3 c * 16,6 b 3 52,8 b 18,0 ab 4 61,4 a 19,9 a 5 63,0 a 18,1 ab * wartości oznaczone tymi samymi literami nie różnią się istotnie (p=0,05) differences between medians marked by the same letters are not significant (p=0.05) Izolaty uzyskane z liści z objawami siatki isolates obtained from the leaves with symptoms net : 1 (K102/1), 3 (K149/1), 4 (K102/1), 13 (K130/1), 14 (K28/4), 15 (K3/2), 16 (K126/2), 17 (K13/1), 21 (K149/2), 22 (K3/1), 23 (K7/3) Izolaty otrzymane z liści z objawami typu plama isolates obtained from the leaves with symptoms spot : 2 (K7/2), 5 (K8/1), 6 (K31a/3), 7 (K7/1), 8 (K134/1), 9 (K8/2), 10 (K135), 11 (K102/2), 12 (K3/4), 18 (K126/3), 19 (K26/6), 20 (K134/2), 24 (K124/2), 25 (K7/7) Rys. 1. Rozdział elektroforetyczny produktów PCR z użyciem startera A06, dla izolatów P. teres Fig. 1. Electrophoretic separation of PCR products using A06 primer for P. teres Wyróżnia się dwie formy tego patogena Pyrenophora teres f. teres oraz Pyrenophora teres f. maculata Smedeg. nie różniące się morfologicznie, a różniące się natomiast rodzajem powodowanych objawów [Campbelli in. 1997, Smedegard-Peterson 1971]. Pierwsza z tych form wywołuje plamy siatkowe (typowe net), a druga plamy owalne, punktowe lub nieregularne (nietypowe spot). P. teres wywołująca objawy obu typów różnią się genetycznie [Ellwood i in. 2010, Jalli 2010, Lai i in. 2007]. Ocena patogeniczności uzyskanych izolatów P. teres potwierdziła zróżnicowanie w porażeniu dwóch odmian jęczmienia Atico i Kangoo. Izolaty uzyskane z plam typowych słabiej porażały rośliny jak i powierzchnię liści niż izolaty pochodzące z liści na których obserwowano objawy nietypowe. Porażenie roślin przez izolaty uzyskane z plam typowych zawierało się mię-

Charakterystyka populacji Pyrenophora teres występującej na jęczmieniu jarym... 69 dzy 11,5 17,7%. Stwierdzono różnice w porażeniu odmian przez ten sam izolat grzyba. Izolat K 14/1 uzyskany z liści z objawami typowymi powodował porażenie 5% roślin odmiany Atico i 23,8% odmiany Kangoo (tab. 2). Powierzchnia porażonych liści odmiany Atico wynosiła 1%, Tabela 2. Table 2. Procent porażonych roślin dwóch odmian jęczmienia jarego inokulowanych 31 izolatami P. teres Percentage of infected plants of two cultivars of spring barley inoculated with 31 isolates of P. teres Izolat Isolate Odmiany Cultivars Atico Kangoo średnio mean K 3/1 n * 20,0 15,3 17,7 K 3/2 n 10,0 15,8 12,9 K 3/3 s 12,2 21,1 16,7 K 3/4 n 13,3 15,9 14,6 K 7/1 s 14,6 14,7 14,7 K 7/2 s 16,9 37,3 27,1 K 7/3 n 13,8 16,2 15,0 K 7/4 n 17,0 14,2 15,6 K 7/7 s 20,0 18,5 19,3 K 8/1 s 11,4 20,0 15,7 K 8/2 s 14,2 18,0 16,1 K13/1 n 10,6 18,8 14,7 K 14/1 n 5,0 23,8 14,4 K 26/6 s 15,8 21,2 18,5 K 28/2 s 12,0 19,3 15,7 K 28/4 n 11,7 15,0 13,4 K 31a/3 s 14,5 20,8 17,7 K 41/1 s 17,3 27,6 22,5 K 49/1 s 21,3 14,2 17,8 K 102/1 n 10,0 13,0 11,5 K 102/2 n 10,0 16,3 13,2 K124/1 n 16,3 13,8 15,1 K 124/2 s 16,0 22,4 19,2 K 126/2 n 10,0 22,7 16,4 K 126/3 s 19,0 21,9 20,5 K 130/1 s 15,0 25,3 20,2 K 134/1 s 10,5 24,7 17,6 K 134/2 s 18,5 17,0 17,8 K 135 n 13,0 10,7 11,9 K 149/1 n 17,5 11,0 14,3 K 149/2 n 10,0 17,0 13,5 Średnio Mean 14,1 b 18,8 a** * n kultura wyizolowana z plam typowych typu siatka culture isolated from spots typical of net ; s kultura wyizolowana z plam nietypowych typu plama culture isolated from atypical spots of spot ** wartości oznaczone tymi samymi literami nie różnią się istotnie (p=0,05) differences between medians marked by the same letters are not significant (p=0.05)

70 a odmiany Kangoo 19,0%. Izolaty K 14/1, K 102/2, K 126/2, K 135, K 149/1, K 149/2 pochodzące z objawów typowych plamistości siatkowej jęczmienia najsłabiej porażały odmiany Atico; procent porażenia powierzchni liści mieścił się między 1 3,5% (tab. 3). Tabela 3. Porażenie powierzchni liści dwóch odmian jęczmienia inokulowanych 31 izolatami P. teres (%) Table 3. Infected of leaf areas two barley cultivars inoculated with 31 isolates of P. teres (%) Izolat Isolate Odmiany Cultivars Atico Kangoo średnio mean K 3/1 n * 6,0 12,3 9,1 K 3/2 n 5,5 14,3 9,9 K 3/3 s 5,5 19,0 12,3 K 3/4 n 6,0 12,8 9,4 K 7/1 s 10,3 11,8 11,0 K 7/2 s 11,0 37,3 24,1 K 7/3 n 9,0 13,8 11,4 K 7/4 n 8,5 9,3 8,9 K 7/7 s 6,0 12,0 9,0 K 8/1 s 4,0 15,0 9,5 K 8/2 s 4,3 13,5 8,9 K13/1 n 4,3 15,0 9,6 K 14/1 n 1,0 19,0 10,0 K 26/6 s 9,5 18,0 13,8 K 28/2 s 6,0 13,5 9,8 K 28/4 n 5,3 12,0 8,6 K 31a/3 s 8,0 12,5 10,3 K 41/1 s 11,3 26,3 18,8 K 49/1 s 8,5 8,5 8,5 K 102/1 n 4,5 6,5 5,5 K 102/2 n 3,0 13,0 8,0 K124/1 n 6,5 11,0 8,8 K 124/2 s 8,0 19,8 13,9 K 126/2 n 3,0 17,0 10,0 K 126/3 s 14,3 17,5 15,9 K 130/1 s 6,3 20,5 13,4 K 134/1 s 5,8 18,5 12,1 K 134/2 s 7,5 17,0 12,3 K 135 n 3,3 8,0 5,6 K 149/1 n 3,5 8,3 5,9 K 149/2 n 2,5 12,8 7,6 Średnio Mean 6,2 14,6 NIR 0,05 LSD 0.05 : odmiany cultivar 7,5; izolaty isolates 4,9; interakcja interaction 10,9 * n kultura wyizolowana z plam typowych typu siatka culture isolated from spots typical of net ; s kultura wyizolowana z plam nietypowych typu plama culture isolated from atypical spots of spot

Charakterystyka populacji Pyrenophora teres występującej na jęczmieniu jarym... 71 WNIOSKI 1. Pochodzenie izolatów (geograficzne, rodzaj objawów) nie wpływa na wymiary zarodników P. teres. 2. Porażenie odmiany Kangoo było większe niż odmiany Atico. 3. Izolaty uzyskane z plam typowych (net) powodowały mniejsze porażenie roślin jęczmienia niż izolaty pochodzące z liści z objawami nietypowymi (spot). PIŚMIENNICTWO Beattie A.D., Scoles G.J., Rossnagel B.G. 2007. Identification of molecular markers linked to a Pyrenophora teres avirulence gene. Phytopathology 97(7): 842 849. Campbell G.F., Crous P.W., Lucas J.A. 1999. Pyrenophora teres f. maculata, the cause of Pyrenophora leaf spot of barley in South Africa. Mycol. Res. 103: 257 267. Crous P.W., Janse B.J.H., Tunbridge J., Holz G. 1995. DNA homology between Pyrenophora japonica and P. teres. Mycol. Res. 99: 1098 1102. Ellwood S.R., Liu Z., Syme R.A., Lai Z., Hane J.K., Keiper F., Moffat C.S., Oliver R.P., Friesen T.L. 2010. A first genome assembly of the barley fungal pathogen Pyrenophora teres f. teres. Genome Biol. 11(11): R109. Fiedorow Z., Gołębniak B., Weber Z. 2008. Choroby roślin rolniczych. Wyd AR Poznań: ss. 208. Gacek E.S (red.) 2012. Lista opisowa odmian 2012. Słupia Wielka. GUS 2010. Rocznik statystyczny rolnictwa 2010. Warszawa: ss. 389. Jalli M. 2010. The virulence of Finnish Pyrenophora teres f. teres isolates and its implications for resistance breeding. MTT Science 9: ss. 46. Korbas M., Mrówczyński M. (red.). 2010. Integrowana produkcja jęczmienia ozimego i jarego. Wyd. IOR. Poznań. ss. 166. Lai Z., Faris J.D., Weiland J.J., Steffenson B.J., Friesen T.L. 2007. Genetic mapping of Pyrenophora teres f. teres genes conferring avirulence on barley. Fungal Genet. Biol. 44: 323 329. Mathre D.E. 1997. Conpendium of barley diseases. APS press. USA. Rau D., Attene G., Brown A.H.D., Nanni L., Maier F.J., Balmas V., Saba E., Schafer W., Papa R. 2003. Diversity and evolution in the barley patogen Pyrenophora teres. Options Méditerranéennes, Ser. A 81: 147 150. Smedegard-Petersen V. 1977. Isolation of two toxins produced by Pyrenophora teres and their significance in disease development of net-spot blotch of barley. Physiol. Plant Pathol. 10: 203 211. Zillinsky F.J. 1983. Common diseases of small grain cereals. CIMMYT Mexico. ss. 141. CHARACTERISTICS POPULATION OF PYRENOPHORA TERES ON SPRING BARLEY IN THE WIELKOPOLSKA Summary Barley net blotch caused by P. teres is one of the most important diseases of barley. The aim of the study was to investigate the diversity of the population of P. teres originating from Wielkopolska in terms of morphology, pathogenicity, and possible relationships of this diversity and genetic differences identified using RAPD-PCR. There were between the cultures of the fungus clear differences in the appearance

72 of the mycelium and spores in size. Spores were the minimum length of 20.6 microns and 90.3 microns maximum. Average width was 18.9 microns. Barley cultivars studied differed in susceptibility to infection by P. teres. Infected of the leaf surface of barley cultivars inoculated with 31 isolates of P. teres for cv. Atico was 6.2%, for cv. Kangoo 14.6%. Differences in the number and sizes of DNA fragments between isolates obtained from barley leaves with symptoms typical and atypical blotch of barley. Key words: spring barley, Pyrenophora teres, net blotch of barley, pathogenicity Zaakceptowano do druku Accepted for print: 11.02.2015 Do cytowania For citation: Korbas A., Kosiada T. 2015. Charakterystyka populacji Pyrenophora teres występującej na jęczmieniu jarym w Wielkopolsce. Fragm. Agron. 32(1): 66 72.