PRACE PRZEGL DOWE Bioremediacja gleb z ropy i jej produktów Joanna Nowak absolwentka Wydzia³u Biologii, Uniwersytet Warszawski, Warszawa Bioremediation of soil contaminated with petroleum products Summary Bioremediation is a process by which microoorganisms degrade or transform the environmental contaminants into less toxic forms. A wide variety of bacterial and fungal genera are known to be capable of degrading, and in many cases, completely mineralizing chemical substances present in petroleum products at present. Three types of bioremediation are predominant in the industry: natural attenuation, biostimulation and bioaugmentation. Selecting the most appropriate strategy to treat a specific site can be quided by considering three basic principles: the amenability of the pollutant to biological transformation to less toxic products, the accessibility of contaminant to microorganisms (bioavailabilty) and the opportunity for optimization of biological activity. Microbial activity is affected by a range of environmental factors, including nutrients, moisture content, ph, temperature, and oxygen concentration. Different aspects of bacterial degradation of petroleum contaminants in soil and how to improve the efficiency and reproducibility are discussed in this review. Key words: bioremediation, biostimulation, bioaugmentation, attenuation, bioavailability, polycyclic aromatic hydrocarbons, petroleum derivatives. Adres do korespondencji Joanna Nowak, ul. Sikorskiego 1/31, 05-101 Nowy Dwór Mazowiecki. 1 (80) 97 108 2008 1. Wprowadzenie Od kilkunastu lat praktycznie we wszystkich uprzemys³owionych krajach œwiata istnieje problem ska enia gruntów rop¹ naftow¹ i jej produktami. Zanieczyszczenia te dostaj¹ siê do gleb g³ównie w wyniku procesów wydobywczych ropy i jej przerobu w rafineriach oraz awarii podczas magazynowania paliw. W Polsce silnie ska one s¹ tereny by³ych baz i poligonów poradzieckich,
Joanna Nowak gdzie wylewano niegdyœ zu yte oleje i smary oraz grunty w pobli u rafinerii, stacji benzynowych, warsztatów naprawczych taboru samochodowo-kolejowego, lotnisk (1,2). Niektóre wêglowodory aromatyczne wystêpuj¹ce w ropie (benzen, toluen, ksylen, fenol) s¹ bardzo szkodliwe dla cz³owieka, ze wzglêdu na toksyczne i kancerogenne dzia³anie (3,4). Zwi¹zki te charakteryzuj¹ siê bardzo du ¹ rozpuszczalnoœci¹ w wodzie, w zwi¹zku z czym ³atwo przedostaj¹ siê do wód podziemnych, a nastêpnie do ujêæ wodnych. Zanieczyszczenie gleb produktami ropopochodnymi wp³ywa niekorzystnie na produkcjê roœlinn¹ oraz na jakoœæ wód powierzchniowych i podziemnych (5). W artykule przedstawiony zostanie aktualny stan wiedzy na temat zastosowania bioremediacji do oczyszczania gruntów z produktów ropopochodnych. W tej stosunkowo nowej technologii wykorzystuje siê szlaki i cykle metaboliczne mikroorganizmów do redukcji zanieczyszczeñ lub ich transformacji w formy mniej szkodliwe (6-8). 2. Czynniki warunkuj¹ce efektywnoœæ procesów bioremediacyjnych Efektywnoœæ bioremediacji gruntów z ropy i jej pochodnych zale y od tempa rozk³adu tych zanieczyszczeñ przez mikroorganizmy glebowe, na które maj¹ wp³yw takie czynniki jak: budowa chemiczna, stê enie wêglowodorów i ich toksycznoœæ w stosunku do mikroflory, mikrobiologiczny potencja³ gleby (stê enie biomasy, ró - norodnoœæ populacji, aktywnoœæ enzymów), fizykochemiczne parametry œrodowiska (m.in. odczyn, temperatura, zawartoœæ materii organicznej, wilgotnoœæ) oraz dostêpnoœæ wêglowodorów dla komórek mikroorganizmów (1,6,9). Minimalna liczebnoœæ mikroorganizmów w glebie ska onej produktami ropopochodnymi konieczna dla efektywnej biorekultywacji wynosi ponad 10 5 komórek/g s.m. gruntu (1). W powierzchniowych warstwach gleby, zawieraj¹cych odpowiedni stosunek C:N:P wystêpuje od 10 7 do 10 9 komórek/g gruntu, z tego od 0,1 do 1,0% stanowi¹ organizmy zdolne do rozk³adu substancji ropopochodnych. W glebach ska onych produktami ropopochodnymi liczba bakterii mo e zwiêkszyæ siê od 100 do 1000 razy (5). Wiêkszoœæ metod biologicznego oczyszczania zaolejonych gruntów oparta jest na intensyfikacji procesu poprzez zastosowanie odpowiednio dobranych i przygotowanych zespo³ów wspó³dzia³aj¹cych ze sob¹ mikroorganizmów biocenoz lub konsorcjów mikroorganizmów, wyspecjalizowanych w rozk³adzie wêglowodorów naftowych. Biocenozy te, zwane biopreparatami, zawieraj¹ specjalnie wyselekcjonowane ze œrodowiska naturalnego okreœlone gatunki drobnoustrojów. Wprowadzane s¹ do gleb jako zaszczepy biologiczne (inokulum) zawieraj¹ce ok. 10 9 komórek/cm 3. Takie biopreparaty znacznie wspomagaj¹, a niekiedy warunkuj¹, biodegradacjê zanieczyszczeñ (10). 98 PRACE PRZEGL DOWE
Bioremediacja gleb z ropy i jej produktów W³aœciwoœci i cechy œrodowiska w przewa aj¹cym stopniu decyduj¹ o mo liwoœci przeprowadzenia bioremediacji in situ na danym terenie, bowiem wp³ywaj¹ na mikrobiologiczn¹ aktywnoœæ (np. temperatura, wilgotnoœæ) oraz transport (g³ównie przez dyfuzjê) zanieczyszczeñ do wnêtrza komórek drobnoustrojów (np. zawartoœæ i jakoœæ materii organicznej). W tabeli 1 przedstawiono g³ówne czynniki œrodowiska wp³ywaj¹ce na bioremediacjê gleb z produktów ropopochodnych. G³ówne czynniki œrodowiska wp³ywaj¹ce na bioremediacjê gleb z produktów ropopochodnych Tabela 1 Czynniki œrodowiska pierwiastki biogenne wilgotnoœæ temperatura ph tlen dostêpnoœæ akceptora elektronów Znaczenie w bioremediacji azot i fosfor wystêpuj¹ w glebie czêsto w iloœciach limituj¹cych wzrost mikroorganizmów; substancje ropopochodne powoduj¹ niekorzystny dla metabolizmu bakterii wzrost stosunku wêgla do azotu woda umo liwia rozpuszczenie wêglowodorów (w takiej formie s¹ ³atwiej pobierane przez mikroorganizmy) oraz zmniejsza adsorpcjê s³abo rozpuszczalnych WWA do powierzchni cz¹stek mineralnych gleby wp³ywa na intensywnoœæ biodegradacji oraz rozpuszczalnoœæ alifatycznych i wielopierœcieniowych aromatycznych wêglowodorów, a tym samym ich biodostêpnoœæ produkty ropopochodne mog¹ powodowaæ obni enie odczynu gleby (podczas degradacji wêglowodorów powstaj¹ kwasy) dostêpnoœæ tlenu w glebie mo e byæ ograniczona w wyniku s³abej przepuszczalnoœci gruntu lub obecnoœci ³atwo rozk³adalnych zwi¹zków pokarmowych; produkty ropopochodne czêsto powoduj¹ powstanie w glebie rozleg³ych stref beztlenowych obecnoœæ akceptora elektronów jest niezbêdna w procesie rozk³adu wêglowodorów ropopochodnych w warunkach beztlenowych Zabiegi zwiêkszaj¹ce efektywnoœæ bioremediacji wzbogacanie gleby po ywkami zawieraj¹cymi azot i fosfor zraszanie gleby wod¹ lub wprowadzanie wody do gruntu regulacja temperatury w bioreaktorze; kompostowanie wapnowanie gleby w celu zwiêkszenia ph wprowadzanie tlenu w g³¹b gruntu lub oranie gleby wprowadzanie do gleby akceptorów elektronów, np. azotanów, siarczanów Literatura (1,25) (1,50) (51,52) (1) (25,28) (49) Dostêpnoœæ wêglowodorów naftowych dla komórek mikroorganizmów (biodostêpnoœæ) zale y od ró nych czynników fizycznych, chemicznych i mikrobiologicznych, które wp³ywaj¹ zarówno na transport tych zwi¹zków, jak i migracjê mikroorganizmów w glebie. S³abo rozpuszczalne wêglowodory alifatyczne i aromatyczne z czterema i wiêksz¹ liczb¹ pierœcieni ³atwo ulegaj¹ adsorpcji na ziarnach gruntu (11). Istotn¹ rolê w kierowaniu bakterii w stronê wêglowodorów naftowych (i innych zanieczyszczeñ), które uleg³y sorpcji na cz¹stkach gleby odgrywa chemotaksja (12-14). Do cz¹stek gleby, g³ównie materii organicznej i frakcji gliny (posiadaj¹ dobrze rozwiniêt¹ i ujemnie na³adowan¹ powierzchniê), mog¹ równie zostaæ zwi¹zane mikroorganizmy o hydrofobowych os³onach komórkowych (15,16). BIOTECHNOLOGIA 1 (80) 97-108 2008 99
Joanna Nowak Najlepsz¹ metod¹ poprawienia transportu wêglowodorów naftowych do komórek mikroorganizmów i ich biodostêpnoœci jest u ycie œrodków powierzchniowo czynnych (SPC), które obni aj¹ napiêcie powierzchniowe i interfazowe cieczy oraz emulguj¹ substancje lipofilowe powoduj¹c zwiêkszenie powierzchni wymiany i rozpuszczalnoœci (17-19). Liczne mikroorganizmy degraduj¹ce wêglowodory naftowe produkuj¹ œrodki powierzchniowo czynne, zaœ w literaturze przedmiotu mo na znaleÿæ wiele prac dotycz¹cych efektywnoœci biologicznych SPC w remediacji gleb zanieczyszczonych rop¹ naftow¹ (17,20). W sprzeda y dostêpne s¹ równie ró nego rodzaju syntetyczne œrodki powierzchniowo czynne, jednak wiele z nich ma ograniczone zastosowanie w bioremediacji, poniewa s¹ zbyt ³atwo degradowane przez mikroorganizmy lub dzia³aj¹ toksycznie na ich komórki. Korzystniejsze jest wprowadzanie do zanieczyszczonych gruntów biologicznych SPC ze wzglêdu na ich biodegradowalnoœæ w œrodowisku i nisk¹ toksycznoœæ. Jednak wysokie koszty ich produkcji sprawiaj¹, e powszechniej wykorzystuje siê syntetyczne SPC. Prowadzone s¹ badania maj¹ce na celu skonstruowanie rekombinowanych mikroorganizmów zdolnych do rozk³adu wêglowodorów naftowych i produkuj¹cych œrodki powierzchniowo czynne (19,21). Prawid³owy przebieg procesu biodegradacji mo e prowadziæ do prawie 100% redukcji zanieczyszczeñ w ci¹gu zaledwie kilku tygodni. Obecnie usuniêcie z gruntów lekkich takich zanieczyszczeñ jak paliwo Diesla, benzyna, nafta lotnicza nie stanowi adnej kwestii. Problem pojawia siê w przypadku bioremediacji gleb (w szczególnoœci ciê kich) z czystej ropy lub frakcji ciê kich (22). Szybkoœæ rozk³adu ró norodnych produktów ropopochodnych w powierzchniowych warstwach gruntów zachodzi z prêdkoœci¹ od 0,02 do ponad 0,4 g/kg gruntu/dobê, œrednio od 0,09 do 0,14 g/kg gruntu/dobê. W g³êbszych warstwach gruntu szybkoœæ degradacji maleje z powodu ni szego stê enia tlenu oraz mniejszej liczby drobnoustrojów (5). 3. Planowanie i kontrola procesów bioremediacji Przed zastosowaniem technik bioremediacji na okreœlonym stanowisku powinno siê oceniæ podatnoœæ zanieczyszczeñ na degradacjê (na podstawie analizy fizykochemicznej), mo liwoœæ osi¹gniêcia ca³kowitej mineralizacji, liczebnoœæ mikroorganizmów zdolnych do rozk³adu zanieczyszczeñ oraz okreœliæ stê enie, rozpuszczalnoœæ w wodzie i reaktywnoœæ zwi¹zków wchodz¹cych w sk³ad ska enia z innymi sk³adnikami œrodowiska. Kontrola przebiegu procesu bioremediacji gruntów z produktów ropopochodnych polega na przeprowadzaniu analiz fizyczno-chemicznych i mikrobiologicznych. Okreœla siê (metodami chromatografii gazowej i spektrofotometrii w podczerwieni) zmiany ca³kowitej iloœci wêglowodorów naftowych, a proces prowadzi siê do uzyskania ich dopuszczalnego stê enia. Monitorowanie obejmuje równie pomiary 100 PRACE PRZEGL DOWE
Bioremediacja gleb z ropy i jej produktów zawartoœci wilgoci i sk³adników od ywczych, ph oraz oznaczanie iloœciowe i jakoœciowe mikroorganizmów (1). Wiêkszoœæ (90-99%) gatunków mikroorganizmów glebowych bior¹cych udzia³ w biodegradacji wêglowodorów in situ nie tworzy koloni na pod³o ach hodowlanych. St¹d te poza standardowymi metodami oceny iloœciowej i jakoœciowej stosuje siê pomiary biomarkerów lipidowych, szczególnie fosfolipidów (PLFA), które informuj¹ o zmianach w biomasie bakterii gramujemnych oraz techniki molekularne. Za pomoc¹ PCR przeprowadza siê amplifikacjê genów koduj¹cych enzymy kataboliczne lub 16S rdna, które po elektroforezie w gradiencie elu denaturuj¹cego (DGGE) analizuje siê (TRF) w celu identyfikacji gatunków bakterii (14,23). Do monitorowania bioremediacji gleby zanieczyszczonej wêglowodorami naftowymi mo na wykorzystaæ takie bioindykatory jak enzymy (lipazy i dehydrogenazy), liczebnoœæ lub bioluminescencjê mikroorganizmów, kie³kowanie nasion oraz prze- ywalnoœæ d d ownic. Trzeba jednak zaznaczyæ, e s¹ to metody niebezpoœrednie, s³u ¹ce raczej do oceny jakoœciowej, a nie iloœciowej (24). 4. Strategie stosowane w procesach bioremediacji Bioremediacjê gruntów mo na przeprowadzaæ sposobem in situ w miejscu wystêpowania ska enia lub ex situ po wybraniu zanieczyszczonej gleby z danego terenu i umieszczeniu w specjalnie przygotowanym miejscu (25). Technologia in situ stosowana jest w przypadku braku mo liwoœci usuniêcia ska onej ziemi, na przyk³ad na obszarach przeznaczonych pod budownictwo, dróg, awarii miejscowych pod ruroci¹gami i instalacjami, ska eñ du ych obszarów. G³ównymi metodami bioremediacji gleb in situ s¹: uprawa gleby, biowentylacja, bioekstrakcja. Technologia ex situ umo liwia skuteczniejsze wykonanie procesowych zabiegów intensyfikacyjnych bioremediacji ska eñ, co prowadzi do skrócenia ca³kowitego czasu rekultywacji. Wœród metod oczyszczania ex situ wymieniæ nale y: uprawê gleby, kompostowanie, biostosy i bioreaktory (1,25-28). Wyró niæ mo na trzy typy bioremediacji gleb: bioremediacjê naturaln¹ (naturaln¹ attenuacjê), biostymulacjê i bioaugmentacjê (29). W bioremediacji naturalnej wykorzystuje siê proces naturalnej biodegradacji (okreœlanej te naturaln¹ attenuacj¹) przeprowadzanej przez mikroorganizmy i wymaga jedynie prowadzenia regularnego monitorowania stê enia zanieczyszczeñ. Najpowszechniej stosowan¹ metod¹ bioremediacji gruntów jest biostymulacja polegaj¹ca na stymulowaniu wzrostu i aktywnoœci rodzimych populacji drobnoustrojów (przyspieszaniu procesów biodegradacji zanieczyszczeñ) poprzez dostarczenie im odpowiednich substancji pokarmowych lub/i tlenu. Zdarza siê, e rodzime populacje na danym terenie nie wykazuj¹ po ¹danej aktywnoœci w degradacji zanieczyszczeñ. Jest to spowodowane toksycznym dzia³aniem zwi¹zków wchodz¹cych w sk³ad ska enia lub brakiem odpowiedniej iloœci i jakoœci organizmów. W takiej sytuacji mo na zastosowaæ bioaug- BIOTECHNOLOGIA 1 (80) 97-108 2008 101
Joanna Nowak mentacjê (20,30). Metoda ta polega na wprowadzeniu do œrodowiska odpowiednich mikroorganizmów. Mog¹ to byæ wyizolowane ze ska onego gruntu i namno one szczepy, które wykazuj¹ najwiêksz¹ aktywnoœæ w rozk³adzie zanieczyszczeñ (reinokulacja), rodzime drobnoustroje o selektywnie wzmocnionych w laboratorium zdolnoœciach funkcjonalnych lub mikroorganizmy modyfikowane genetycznie (GMM) (6,20,25,29-31). Genetycznie zmodyfikowane mikroorganizmy mo na wykorzystywaæ nie tylko do przyspieszenia biodegradacji w ska onej glebie, ale równie do monitorowania obecnoœci wprowadzonych do gruntu bakterii oraz oceny biodostêpnoœci zanieczyszczeñ (biosensory) i mo liwoœci ich eliminacji. W pierwszym przypadku bakterie s¹ wyposa one w odpowiedni konstrukt genowy, który jest ³atwo wykrywany. Wówczas gdy biodostêpnoœæ zanieczyszczeñ jest warunkiem koniecznym do przeprowadzenia na danym terenie biologicznego oczyszczania mo na wykorzystaæ bakterie zawieraj¹ce w swoim genomie promotor indukowany przez zwi¹zek, którego biodostêpnoœæ jest badana. Promotor ten jest po³¹czony z genem, którego produkt mo na ³atwo obserwowaæ i zmierzyæ. Najpowszechniej u ywanymi genami reporterowymi s¹ geny bioluminescencji (luc, lux) oraz gen gfp koduj¹cy zielone bia³ko fluorescencyjne i jego pochodne (7,9,32). Praktyczne zastosowanie w bioremediacji gruntów z ropy i jej produktów mog¹ mieæ bakterie ze wstawionymi do chromosomu genami enzymów uczestnicz¹cych w rozk³adzie wêglowodorów naftowych (np. genem tod koduj¹cym dioksygenazê toluenu) czy chemotaksji (np. NahY koduj¹cym bia³ko uczestnicz¹ce w chemotaksji do naftalenu i salicylanu) lub z wprowadzonymi plazmidami degradacji wêglowodorów (np. plazmidem degradacji piranu z Mycobacterium sp.) (9,12,23,33,34). 5. Zastosowanie metod bioremediacji gleb zaolejonych w Polsce Zastosowanie biologicznych metod oczyszczania gruntów ska onych produktami naftowymi praktykowane jest w Polsce z dobrym skutkiem od kilkunastu lat. Jednym z pionierów usuwania z gleb zanieczyszczeñ ropopochodnych jest prof. J. Siuta z Instytutu Ochrony Œrodowiska w Warszawie, którego grupa prowadzi³a bioremediacjê w latach 80. i 90. ubieg³ego wieku. W pierwszej po³owie lat 90. w wielu innych oœrodkach naukowych i we firmach komercyjnych rozwinê³o stosowanie metod biologicznych do likwidacji ska eñ produktami ropopochodnymi w glebie (35). Najwiêksze doœwiadczenie na rynku w dziedzinie oczyszczania gleb z substancji ropopochodnych maj¹ pracownicy Zak³adu Biologii Œrodowiska ISIŒ na Politechnice Warszawskiej, którzy przy wspó³pracy z firm¹ Hydrogeotechnika Kielce przeprowadzili do 2003 r. skuteczn¹ bioremediacjê ponad 30 tys. ton gruntu (22). Problematyk¹ biorekultywacji gleb zanieczyszczonych substancjami ropopochodnymi zajmuj¹ siê równie pracownicy Zak³adu Biochemii Akademii Rolniczej w Krakowie. W swojej kolekcji drobnoustrojów zgromadzono wiele szczepów bak- 102 PRACE PRZEGL DOWE
Bioremediacja gleb z ropy i jej produktów teryjnych i dro d owych, które s¹ wykorzystywane do konstrukcji biopreparatów, degraduj¹cych trudno rozk³adalne substancje ropopochodne w gruncie. Bank mikroorganizmów w Zak³adzie Biochemii zosta³ utworzony ze szczepów wyizolowanych z wielu ró nych Ÿróde³ zanieczyszczonych wód i gleb, wystêpuj¹cych na terenie ca³ej Polski. Bank ten jest wykorzystywany do badañ maj¹cych na celu opracowanie sk³adu biopreparatów rozk³adaj¹cych uci¹ liwe zanieczyszczenia, g³ównie WWA i ich chlorowcopochodne. W Zak³adzie Biochemii AR w Krakowie przeprowadzono we wspó³pracy z polskimi podmiotami gospodarczymi wydajn¹ bioremediacjê gleb silnie zanieczyszczonych wêglowodorami naftowymi. W tabeli 2 przedstawiono wyniki wybranych projektów rekultywacji, przeprowadzonych metod¹ ex i in situ (10,35). Przyk³ady bioremediacji gruntów Tabela 2 Pochodzenie i charakter ska enia Metoda oczyszczania Pocz¹tkowe stê enie wêglowodorów (mg/kg s.m.) Koñcowe stê enie Biodegradacja wêglowodorów (%) (mg/kg s.m.) Czas trwania procesu (miesi¹ce) Brzesko teren by³ej bazy CPN (stacja prze- in situ 51 076 680 98,7 25 ³adunku paliw) ziemia zawieraj¹ca osady i pozosta³oœci porafineryjne ex situ 23 993 6652 72,3 6 modernizacja stacji paliw w Zakopanem ex situ 9367 177 98,1 7 ziemia wybrana z terenu stacji paliw w Skawinie ex situ 8075 1211 85,0 0,8 wyciek spod ruroci¹gu baza paliwowa Olszanica* in situ 2000 110 94,5 17 teren stacji transformatorowej w Brzesku (ska enie gleby po wycieku oleju transformatorowego) in situ 1382 677 51,0 10 *podczas rekultywacji nast¹pi³ dwukrotny wylew 6. Mikroorganizmy rozk³adaj¹ce wêglowodory naftowe Zdolnoœæ do degradacji i/lub wykorzystywania wêglowodorów naftowych wykazuj¹ liczne rodzaje bakterii i grzybów, a tak e dro d e, niektóre Cyanobacteria i zielone glony (1,11). Jednak w bioremediacji gruntów, z wielu wzglêdów, wykorzystuje siê przede wszystkim bakterie. Charakteryzuj¹ siê one wysok¹ liczebnoœci¹, szybkim wzrostem i zdolnoœci¹ degradacji ró norodnych zanieczyszczeñ. Mo na je ³atwo hodowaæ oraz poddawaæ manipulacjom genetycznym (28). Biologiczne oczyszczanie gleb z produktów ropopochodnych zachodzi g³ównie w wyniku dzia³alnoœci bakterii tlenowych, które wykorzystuj¹ wêglowodory naftowe jako Ÿród³o wêgla i energii potrzebne do ich wzrostu i rozmna ania. Grzyby maj¹ ograniczone zasto- BIOTECHNOLOGIA 1 (80) 97-108 2008 103
Joanna Nowak sowanie w bioremediacji, poniewa transformuj¹ wêglowodory naftowe najczêœciej kometabolicznie, wymagaj¹c podstawowego substratu wzrostu (glukoza lub celuloza), a tempo przeprowadzanej przez nie degradacji jest niskie. Organizmy te nie potrafi¹ dalej metabolizowaæ produktów kooksydacji, dlatego te ca³kowita mineralizacja zanieczyszczeñ ropopochodnych nastêpuje w wyniku aktywnoœci bakterii (36). Bieszkiewicz i wsp. (37) przeprowadzili identyfikacjê bakterii pochodz¹cych z zaolejonej gleby. Wœród wyizolowanych szczepów najliczniejsz¹ grupê stanowi³y bakterie nale ¹ce do rodzaju Arthrobacter. Mniej licznie by³y reprezentowane bakterie z grupy Anitratum oraz Flavobacterium i Vibrio-Aeromonas. Najwiêkszy i najszybszy przyrost liczby komórek w hodowlach p³ynnych na pod³o u z olejami wykazywa³y gatunki nale ¹ce do rodzaju Arthrobacter i Flavobacterium. Boossert i Bartha w 1984 r. zaprezentowali listê (w malej¹cym porz¹dku) rodzajów bakterii najbardziej aktywnych w biodegradacji wêglowodorów naftowych: Pseudomonas, Arthrobacter, Alcaligenes, Corynebacterium, Flavobacterium, Achromobacter, Micrococcus, Nocardia i Mycobacterium. Natomiast w badaniach Sztompki najwy sz¹ aktywnoœæ w rozk³adzie 1% oleju napêdowego wykaza³y: Micrococcus sp., Chryseomonas luteola, Bacillus sp., Pseudomonas aeruginosa, Alcaligenes xylosooxidans spp. denitryficans, Pseudomonas stutzeri, Acinetobacter lwoffi (2). D³ugo³añcuchowe wêglowodory (alkany i alkeny) s¹ rozk³adane przez wiele gatunków bakterii (z rodzaju Pseudomonas, Acinetobacter, Arthrobacter, Corynebacterium, Nocardia, Mycobacterium, Geobacillus), a tak e liczne dro d e (wiêkszoœæ gatunków Candida), przy czym ich liczba i intensywnoœæ degradacji wzrasta wraz z d³ugoœci¹ ³añcucha (38,39). Mniej licznie wystêpuj¹ w glebach mikroorganizmy zdolne do biodegradacji cykloalkanów, przy czym zachodzi ona przede wszystkim przy udziale konsorcjum mikroorganizmów w drodze kometabolizmu (1). Niskocz¹steczkowe (dwu- lub trójpierœcieniowe) wêglowodory aromatyczne s¹ degradowane przez wiele bakterii glebowych, a tak e liczne rodzaje grzybów m.in. Rhizopus, Aspergillus, Candida, Penicillium, Psilocybe, Smittum. Natomiast zdolnoœæ rozk³adu wysokocz¹steczkowych (z 4 i wiêksz¹ liczb¹ pierœcieni) wêglowodorów aromatycznych wystêpuje stosunkowo rzadko u bakterii. Zwi¹zki te s¹ raczej rozk³adane przez grzyby ligninolityczne, takie jak: Phanaerochaete chrysosporium, Trametes versicolor, Bjerkandera sp., Pleurotus ostreatus oraz nieligninolityczne np. Cunninghanella elegant, Penicillium janthinellum, Syncephalastrum sp. (11,40-42). Zdolnoœæ do wzrostu na wysokocz¹steczkowych wielopierœcieniowych wêglowodorach aromatycznych jest prawdopodobnie szeroko rozpowszechniona w obrêbie rodzaju Mycobacterium. Odnotowano j¹ dla kilku gatunków np. M. flavescens, M. vanbaalenii sp. (26) i szczepów takich jak: AP-1, PYR-1, BB1, KR2, GTI-23, RJGII-135, BG1, CH1 (3,40,42,43). Wiele bakterii degraduj¹cych wielopierœcieniowe wêglowodory aromatyczne (WWA) z rodzaju Mycobacterium posiada równie zdolnoœæ do rozk³adu wêglowodorów alifatycznych (44,45). Mikroorganizmy beztlenowe potrafi¹ degradowaæ wêglowodory, takie jak benzen, toluen, etylobenzen, ksylen (BTEX) oraz heksadekan i naftalen (26). Szczepy 104 PRACE PRZEGL DOWE
Bioremediacja gleb z ropy i jej produktów RCB i JJ nale ¹ce do rodzaju Dechloromonas ( -Proteobacteria) ca³kowicie utleniaj¹ benzen w warunkach beztlenowych, wykorzystuj¹c azotan jako akceptor elektronów (46). Geobacter metallidurans i G. grbicium zdolne s¹ do beztlenowego utleniania toluenu do CO 2 z redukcj¹ Fe(III). Znanych jest kilka organizmów ³¹cz¹cych beztlenow¹ degradacjê toluenu z oddychaniem azotanowym (Thauera aromatica szczepy K172 i I1, Azoarcus sp. szczep T, A. tolulyticus szczepy To14 i Td15, Dechloromonas szczepy RCB i JJ), nadchloranowym (Dechloromonas szczepy RCB i JJ) oraz siarczanowym (Desulfobacterium cetonicum, Desulfobacula toluolica) (47). Scharakteryzowano równie metanogeniczne konsorcjum degraduj¹ce toluen sk³adaj¹ce siê z dwóch gatunków archeonów spokrewnionych z rodzajem Methanosaeta i Methanospirillum oraz dwóch gatunków bakterii, z których jeden spokrewniony jest z Desulfotomaculum (36). Na podstawie przeprowadzonej analizy za pomoc¹ hybrydyzacji fluorescencyjnej in situ (FISH) denitryfikatorów degraduj¹cych alkilobenzeny i n-alkany wykazano, e s¹ to g³ównie bakterie z grupy Azoarcus/Thauera. Stosunkowo ma³o wiadomo o beztlenowej biodegradacji etylobenzenu. Dotychczas opisano tylko trzy organizmy (Thauera szczepy EbN1, PbN1, EB1) utleniaj¹ce ten zwi¹zek z jednoczesn¹ redukcj¹ azotanów (47). 7. Mechanizmy biodegradacji wêglowodorów ropopochodnych Najpowszechniejsz¹ drog¹ tlenowej degradacji n-alkanów jest utlenianie terminalne z udzia³em monooksygenazy. Hydroksylacja przy koñcowym wêglu w ³añcuchu prowadzi do wytworzenia odpowiedniego alkoholu, który jest nastêpnie utleniany do aldehydów i kwasów t³uszczowych. Kwasy t³uszczowe przechodz¹ proces -oksydacji, a powsta³y w nim acetylo-coa zostaje w³¹czony w cykl Krebsa (23). Alkeny ulegaj¹ hydrolizie w miejscu podwójnego wi¹zania, a nastêpnie s¹ metabolizowane jak alkany. Krótko³añcuchowe wêglowodory s¹ trudniej degradowane z wyj¹tkiem metanu, który w warunkach tlenowych jest szybko wykorzystywany jako jedyne Ÿród³o wêgla przez metanotroficzne bakterie (np. Methylomonas methanica) i dro - d e (38). Degradacjê cykloheksanu zapocz¹tkowuje hydroksylacja prowadz¹ca do powstania cykloheksanolu, który przekszta³cany jest w cykloheksanon i kaprolakton. Nastêpnie hydrolaza laktozowa otwiera pierœcieñ i powstaje odpowiedni kwas organiczny kwas adypinowy (1). Bakterie i grzyby wykorzystuj¹ odmienne drogi w tlenowej biodegradacji wêglowodorów aromatycznych. U bakterii pocz¹tkowe utlenienie pierœcienia katalizowane jest przez wielosk³adnikow¹ dioksygenazê. Powsta³y cis-dihydrodiol ulega rearomatyzacji (udzia³ dehydrogenazy cis-dihydrodiolu) do pochodnych dihydroksylowych. Dalsze utlenianie prowadzi do utworzenia katecholu (1,2-dihydroksybenzen) lub kwasu protokatechowego (3,4-dihydroksybenzoesan). Potem nastêpuje oksydacyjne otwarcie pierœcienia aromatycznego (w pozycji orto lub meta) katecholu lub BIOTECHNOLOGIA 1 (80) 97-108 2008 105
Joanna Nowak kwasu protokatecholowego z udzia³em dioksygenaz. Dalszy rozk³ad prowadzi do powstania intermediatów centralnych szlaków metabolicznych, takich jak bursztynian, acetylo-coa, pirogronian (38). Grzyby nieligninolityczne oraz ligninolityczne utleniaj¹ pierœcieñ aromatyczny do tlenków arenu za pomoc¹ monooksygenazy cytochromu P-450. Tlenki mog¹ nastêpnie izomeryzowaæ do fenoli lub ulec enzymatycznej hydroksylacji katalizowanej przez hydrolazê epoksydow¹ z wytworzeniem trans-dihydrodioli. W przeciwieñstwie do grzybów nieligninolitycznych, z których stosunkowo niewiele ma zdolnoœæ degradowania WWA do CO 2, systemy enzymatyczne grzybów ligninolitycznych potrafi¹ ci¹æ i mineralizowaæ pierœcieñ aromatyczny. Posiadaj¹ one silne zewn¹trzkomórkowe enzymy odpowiedzialne za degradacjê ligniny, które dzia³aj¹ na szerok¹ gamê WWA (48). Znane s¹, jak dot¹d, dwie drogi beztlenowej degradacji alkanów. Pierwsza z nich polega na addycji fumaranu, druga zaœ obejmuje karboksylacjê i usuniêcie terminalnej dwuwêglowej jednostki, co prowadzi do powstania odpowiedniego kwasu t³uszczowego (49). Na podstawie dotychczasowych badañ wskazuje siê na trzy mo liwe mechanizmy pocz¹tkowej aktywacji pierœcienia benzenu, takich jak: karboksylacja, hydroksylacja i metylacja. Pierœcieñ ulega przekszta³ceniu do centralnego intermediatu benzylo-coa, który jest redukowany do 1,5-dien-1-karboksylo-CoA przez g³ówny enzym reduktazê benzoilo-coa (49). 8. Podsumowanie Wiele mikroorganizmów glebowych (g³ównie bakterie i grzyby) jest zdolnych do rozk³adu wêglowodorów wchodz¹cych w sk³ad ropy i jej produktów w warunkach zarówno tlenowych, jak i beztlenowych. Wiêkszoœæ z nich zidentyfikowano dziêki rozwojowi technik molekularnych. W ci¹gu ostatnich lat odkryto geny enzymów szlaków biodegradacji sk³adników produktów ropopochodnych i chemoreceptorów uczestnicz¹cych w kierowaniu mikroorganizmów w stronê wêglowodorów naftowych. Wprowadzenie tych genów do bakterii mo e mieæ praktyczne zastosowanie w bioremediacji. O efektywnoœci bioremediacji in situ gleb ska onych produktami ropopochodnymi w du ej mierze decyduj¹ parametry fizykochemiczne œrodowiska. Celowe jest, jak siê wydaje, prowadzenie dalszych badañ nad ich wp³ywem na liczebnoœæ, ró norodnoœæ i aktywnoœæ drobnoustrojów oraz biodostêpnoœæ wêglowodorów naftowych. Literatura 1. Klimiuk E., ebkowska M., (2003), Biotechnologia w ochronie œrodowiska, Wyd. Nauk. PWN, Warszawa. 2. Sztompka E., (1999), Acta Microbiol. Pol., 48, 185-196. 106 PRACE PRZEGL DOWE
Bioremediacja gleb z ropy i jej produktów 3. Boldrin B., Tiehm A., Fritzsche Ch., (1993), Appl. Environ. Microbiol., 59, 1927-1930. 4. Kasai Y., Takahata Y., Hoaki T., Watanabe K., (2005), Environ. Microbiol., 7(6), 806-818. 5. Olañczuk-Neyman K., Prejzner J., Topolnicki M., (1994), Biotechnologia, 2, 50-59. 6. Boopathy R., (2000), Bioresource Technology, 74, 63-67. 7. Dua M., Singh A., Suthunathan N., Johri A. K., (2002), Appl. Microbiol. Biotechnol., 59, 143-152. 8. Watanabe K., (2001), Curr. Opin. Biotechnol., 12, 237-241. 9. Romantschuk M., Sarand I., Petänen T., Peltola R., Jonsson-Vihanne M., Koivula T., Yrjälä K., Haahtela K., (2000), Environ. Poll., 107, 179-185. 10. Kaszycki P., Ko³oczek H., (2004), Biotechnologie stosowane w odnowie gleby zanieczyszczonej substancjami ropopochodnymi, 41-56 (http://fundacja.ogr.ar.krakow.pl/pdf/kaszycki%20koloczek% 20str%2041-56.pdf) 11. Antizar-Ladislao B., Lopez-Real J. M., Beck A. J., (2004), Crit. Rev. in Environ. Sci. Technol., 34, 249-289. 12. Pandey G., Jain R. K., (2002), Appl. Environ. Microbiol., 68, 5789-5795. 13. Parales R. E., Haddock J. D., (2004), Curr. Opin. Biotechnol., 15, 374-379. 14. Pieper D. H., Reineke W., (2000), Curr. Opin. Biotechnol., 11, 262-270. 15. Bellin C. A., Rao P. S. C., (1993), Appl. Environ. Microbiol., 59, 1813-1820. 16. Ortego-Calvo J-J., Saiz-Jimenz C., (1998), Appl. Environ. Microbiol., 64, 3123-3126. 17. Cameotra S. S., Bollag J-M., (2003), Crit. Rev. Environ. Sci. Technol., 30, 111-126. 18. Desai J. D., Banat J. M., (1997), Microbiology and Molecular Biology Reviews, 61, 47-64. 19. Timmis K. N., Pieper D. H., (1999), Trends in biotechnology, 17, 201-204. 20. Singer A. C., van der Gast Ch. J., Thompson I. P., (2005), Trends in Biotechnology, 23, 74-77. 21. Christofi N., Ivshina I. B., (2002), J. Appl. Microbiol., 93, 915-929. 22. Szlaski A., Wojewódka D., (2003), Instalator, 61, 52-53. 23. Paul D., Pandey G., Pandey J., Jain R. K., (2005), Trends in Biotechnology, 23, 136-142. 24. Maila M. P., Cloete T. E., (2005), International Biodeterioration & Biodegradation, 55, 1-8. 25. Vidali M., (2001), Pure Appl. Chem., 73, 1163-1172. 26. Gestel K. V., Mergaert J., Swings J., Coosemans J., Ryckeboer J., (2003), Environ. Poll., 125, 361-368. 27. Jørgensen K. S., Puustinen1 J., Suortti A-M., (2000), Environ. Poll., 107, 245-254. 28. Korda A., Santas P., Tenente A., Santas R., (1997), Appl. Microbiol. Biotechnol., 48, 677-686. 29. Kaplan Ch. W., Kitts Ch. L., (2004), Appl. Environ. Microbiol., 70, 1777-1786. 30. Vogel T. M., (1996), Curr. Opin. Biotechnol., 7, 311-316. 31. Smets B. F., Siciliano S. D., Verstraete W., (2002), Environ. Microbiol., 4, 315-317. 32. Elsas J. D., Duarte G. F., Rosado A. S., Smalla K., (1998), Journal of Microbiological Methods, 32, 133-154. 33. Heitkamp M. A., Freeman J. P., Miller D. W., Cerniglia C. E., (1988), Appl. Environ. Microbiol., 54, 2556-2565. 34. Samanta S. K., Singh O. V., Rakesh K. J., (2002), Trends in Biotechnology, 20, 243-248. 35. Ko³oczek, Kaszycki, (2004), Biologiczne mechanizmy oczyszczania ska eñ organicznych w glebie, 28-40, (http://fundacja.ogr.ar.krakow.pl/pdf/koloczek%20kaszycki%20str %2028-40.pdf) 36. Prenafeta-Boldu F. X., Vervoort J., Grotenhuis J. T. C., van Groenestijn J. W., (2002) Appl. Environ. Microbiol., 68, 2660-2665. 37. Bieszkiewicz E., Mycielski R., Boszczyk-Maleszak H., Wyszkowska B., (1997), Biotechnologia, 1, 71-78. 38. Baj J., Markiewicz Z., (2006), Biologia molekularna bakterii, Wyd. Nauk. PWN, Warszawa. 39. Meintanis Ch., Chalkou K. I., Kormas K., A., Karagolini A. D., (2006), Biodegradation, 17, 105-111. 40. Bogan B. W., Lahner L. M., Sullivan W. R., Paterek J. R., (2003), J. App. Microbiol., 94, 230-239. 41. Boonchan S., Britz M. L., Stanley G. A., (2000), Appl. Environ. Microbiol., 66, 1007-1019. 42. Kanaly R. A., Harayama S., (2000), J. Bacteriol., 182, 2059-2067. 43. Miller C. D., Hall K., Liang Y. N., Nieman K., Sorensen D., Issa B., Anderson A. J., Sims R. C., (2004), Microbiol. Ecol., 48, 230-238. 44. Dandie C. E., Thomas S. M., Bentham R. H., McClure N. C., (2004), J. Appl. Microbiol., 97, 246-255. 45. Solano-Serena F., Marchal R., Casarégola S., Vasnier Ch., Lebeault J-M., Vandecasteele J-P., (2000), Appl. Environ. Microbiol., 66, 2392-2399. BIOTECHNOLOGIA 1 (80) 97-108 2008 107
Joanna Nowak 46. Coates J. D., Chakraborty R., McInerney M. J., (2002), Research in Microbiology, 153, 621-628. 47. Chakraborty R., Coates J. D., (2004), Appl. Microbiol. Biotechnol., 64, 437-446. 48. Bezalel L., Hadar Y., Fu P. P., Freeman J. P., Cerniglia C. E., (1996), Appl. Environ. Microbiol., 62, 2547-2553. 49. Zhang Ch., Bennett G. N., (2005), Appl. Microbiol. Biotechnol., 67, 600-618. 50. Sikkema J., de Bont J. A. M., Poolman B., (1995), Microbiol. Rev., 59, 201-22. 51. Margesin R., Schinner F., (2001), Appl. Environ. Microbiol., 67, 3127-3133. 52. Semple K. T., Reid B. J., Fermor T. R., (2001), Environ. Poll., 112, 269-283. 108 PRACE PRZEGL DOWE