Badania nad mikroprzepływowymi urządzeniami analitycznymi na bazie papieru (µpads) przegląd literatury



Podobne dokumenty
Metody analizy jakościowej i ilościowej lipidów powierzchniowych i wewnętrznych owadów

Biochemia Stosowana. Specjalność kierunku Biotechnologia Studia I stopnia

Analiza tuszu metodą chromatografii cienkowarstwowej

Modelowy plan studiów dla wszystkich polskich specjalności status i nazwa przedmiotu liczba godz. zajęć w tygodniu punkty w c lk Semestr 0

Laboratorium Pomorskiego Parku Naukowo-Technologicznego Gdynia.

Wydziału Biotechnologii i Nauk o Żywności

Plan studiów obowiązujący od roku akademickiego 2019/2020

Plan studiów obowiązujący od roku akademickiego 2019/2020

Formularz opisu kursu (sylabus przedmiotu) na rok akademicki 2011/2010

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 950

Zielone Technologie i Monitoring (l) Efekty Kształcenia. Semestr. Grupy. zajęć

"By leczyć ciało ludzkie, konieczna jest wiedza o całości zjawisk - przetestuj swój produkt w pierwszym

Plan studiów na kierunku analityka medyczna dla rozpoczynających w roku akademickim 2018/2019

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1134

III Harmonogramy przebiegu studiów biologicznych I stopnia III Specjalności realizowane od III roku studiów. I rok

Sensory organiczne. Tydzień temu. Czujniki kształtu tu i nacisku

Zasady przeprowadzania pisemnego egzaminu dyplomowego na studiach I stopnia na Wydziale Chemicznym Politechniki Rzeszowskiej

3.

S YL AB US MODUŁ U ( PRZEDMIOTU) I nforma c j e ogólne. Toksykologia

CO TO JEST CHEMIA ANALITYCZNA?

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 950

I ROK (rok akad. 2016/2017) I i II semestr

wydanie specjalne 5S(2013) V Podlaskie Spotkanie Chromatograficzne

Techniki immunochemiczne. opierają się na specyficznych oddziaływaniach między antygenami a przeciwciałami

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 1134

Chemia kryminalistyczna

Efekty kształcenia. dla kierunku Biotechnologia medyczna. studia pierwszego stopnia. Załącznik nr 2 do uchwały nr 265/2017. I.

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych. Ćwiczenie nr 3. Analiza tuszu metodą chromatografii cienkowarstwowej oraz spektrofotometrii UV/Vis

LABINDEX HLP ŹRÓDŁO WODY W TWOIM LABORATORIUM

WiComm dla innowacyjnego Pomorza

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne. Toksykologia. Nie dotyczy

Wzorcowe efekty kształcenia dla kierunku studiów biotechnologia studia pierwszego stopnia profil ogólnoakademicki

Ćwiczenie nr 3. Analiza tuszu metodą chromatografii cienkowarstwowej oraz spektrofotometrii UV/Vis

Klub Młodego Wynalazcy - Laboratoria i wyposażenie. Pracownia genetyki

ANALITYKA PRZEMYSŁOWA I ŚRODOWISKOWA

efekty kształcenia grupa zajęć** K7_K03 K7_W05 K7_U02 K7_W05 A Z K7_K02 K7_W05 K7_U02 A Z K7_U03 K7_U04 K7_W01

Sylabus przedmiotu: Data wydruku: Dla rocznika: 2015/2016. Kierunek: Opis przedmiotu. Dane podstawowe. Efekty i cele. Opis.

Kierunki i specjalności na stacjonarnych i niestacjonarnych studiach I i II stopnia stanowiące ofertę edukacyjną w roku akademickim 2019/20

ediab - Bezprzewodowa platforma ezdrowie wspomagająca terapię osób chorych na cukrzycę Krzysztof Brzostowski, Jarosław Drapała, Jerzy Świątek

PLAN STUDIÓW. efekty kształcenia K6_U12 K6_W12 A Z O PG_ PODSTAWY BIOLOGII K6_W06 A Z K6_W01 K6_U01

Wydział Budownictwa i Inżynierii Środowiska. Poziom i forma studiów. Ścieżka dyplomowania: przedmiotu: 0) Semestr: W - 15 C- 0 L- 30 P- 0 Ps- 0 S- 0

Plan studiów na kierunku studiów wyższych: BIOCHEMIA studia pierwszego stopnia, profil ogólnoakademicki

Katedrai Zakład Anatomii Prawidłowej Zakład Biofizyki Katedra i Zakład Biofizyki Katedra i Zakład Biologii i Parazytologii Lekarskiej

PROGRAM STUDIÓW studentów I roku Gdańskiego Uniwersytetu Medycznego, kierunek analityka medyczna w roku akademickim 2019/2020 cykl

Laboratorium Utylizacji Odpadów (Laboratorium Badawcze Biologiczno Chemiczne)

P r o g r a m s t u d i ó w

Data wydruku: Dla rocznika: 2015/2016. Opis przedmiotu

CURRICULUM VITAE. Akademia Rolniczo-Techniczna Olsztyn

2. Ż. Bargańska, J. Namieśnik, Pesticide analysis of bee and bee product samples, Crit. Rev. Anal. Chem., 40 (2010) 159.

Plan studiów na kierunku studiów wyższych: BIOCHEMIA studia pierwszego stopnia, profil ogólnoakademicki

PLAN STUDIÓW NR VI. STUDIA PIERWSZEGO STOPNIA (3,5-letnie inżynierskie)

GF Microsystems Sp. z o. o. ul. Górki 12, Poznań

Wysokosprawna chromatografia cieczowa dobór warunków separacji wybranych związków

Kierunki na stacjonarnych i niestacjonarnych studiach I i II stopnia stanowiące ofertę edukacyjną w roku akademickim 2019/20. studia stacjonarne

Nowy kierunek studiów na Wydziale Nauk Biologicznych Uniwersytetu Wrocławskiego. Studia licencjackie i magisterskie

Zastosowanie metabolomiki w diagnostyce medycznej Nowoczesne metody wykrywania chorób

SPIS TREŚCI SPIS SKRÓTÓW... 1 WSTĘP... 3 POMIARY CUNÓW NA CZŁOWIEKU... 5 GŁĘBOKOŚĆ NAKŁUCIA PRZYŻEGANIE LOKALIZACJA PUNKTÓW

Jonizacja plazmą wzbudzaną indukcyjnie (ICP)

Kierunek Międzywydziałowy - Inżynieria Biomedyczna. Politechnika Gdańska, Inżynieria Biomedyczna. Specjalność:

SPIS SKRÓTÓW... 1 WSTĘP... 3 POMIARY CUNÓW NA CZŁOWIEKU

ZASTOSOWANIE TECHNOLOGII REP-RAP DO WYTWARZANIA FUNKCJONALNYCH STRUKTUR Z PLA

Opis zakładanych efektów kształcenia OPIS ZAKŁADANYCH EFEKTÓW KSZTAŁCENIA

Kierunki na stacjonarnych i niestacjonarnych studiach I i II stopnia stanowiące ofertę edukacyjną w roku akademickim 2019/20. studia stacjonarne

1 / 5. Inżynierii Mechanicznej i Robotyki. Mechatronic Engineering with English as instruction language. stopnia

BADANIA WYTRZYMA OŒCI NA ŒCISKANIE PRÓBEK Z TWORZYWA ABS DRUKOWANYCH W TECHNOLOGII FDM

Kierunki na stacjonarnych i niestacjonarnych studiach I i II stopnia stanowiące ofertę edukacyjną w roku akademickim 2019/20. studia stacjonarne

Planu studiów na kierunku analityka medyczna obowiązujący w roku akademickim 2017/2018. I ROK STUDIÓW (rok akad. 2017/2018)

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 975

AU.59. Przygotowywanie sprzętu odczynników chemicznych i próbek do badań analitycznych;

Biznes Mixer w ramach Forum Inicjowania Rozwoju 2014

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 994

Rekomendacje dla medycznych laboratoriów w zakresie diagnostyki toksykologicznej

Skaningowy Mikroskop Elektronowy. Rembisz Grażyna Drab Bartosz

OZNACZENIE JAKOŚCIOWE I ILOŚCIOWE w HPLC

ZAKRES AKREDYTACJI LABORATORIUM BADAWCZEGO Nr AB 753

Efekty kształcenia dla kierunku Biotechnologia

Studiapierwszego stopnia

Kierunek: Chemia, rok I

Badania wybranych nanostruktur SnO 2 w aspekcie zastosowań sensorowych

Sprawozdanie z ankietyzacji w semestrze zimowym roku akademickiego 2016/2017

Nazwa modułu/przedmiotu Forma zajęć Liczba godzin. Wykład Laboratorium Ćwiczenia Wykład Ćwiczenia. Moduł 2/ Podstawy botaniki Wykład 15 1 Z.

Podstawy chromatografii i technik elektromigracyjnych / Zygfryd Witkiewicz, Joanna Kałużna-Czaplińska. wyd. 6-1 w PWN. Warszawa, cop.

Cechy charakterystyczne tworzenia oprogramowania w Inżynierii Biomedycznej. Wykładowca Dr inż. Zofia Kruczkiewicz

OFERTA TEMATÓW PROJEKTÓW DYPLOMOWYCH (MAGISTERSKICH) do zrealizowania w Katedrze INŻYNIERII CHEMICZNEJ I PROCESOWEJ

Nazwa modułu/przedmiotu Forma zajęć Liczba godzin. Wykład Laboratorium Ćwiczenia Wykład Ćwiczenia. Moduł 2/ Podstawy botaniki Wykład 15 1 Z.

Kierunek: Chemia, rok I Rok akademicki 2016/2017

Auditorium classes. Lectures

WYKAZ METOD BADAWCZYCH w WBJ-2 (emisja, imisja)

Dr hab. inż. Wojciech Simka, prof. Pol. Śl.

Kontrola i zapewnienie jakości wyników

Nazwa modułu/przedmiotu Forma zajęć Liczba godzin. Wykład Laboratorium Ćwiczenia Wykład Ćwiczenia. Moduł 2/ Podstawy botaniki Wykład 15 1 Z.

PROGRAM WYKŁADÓW I ĆWICZEŃ w roku akademickim 2006/2007. STACJONARNE JEDNOLITE STUDIA MAGISTERSKIE na kierunku ANALITYKA MEDYCZNA (studia 5-letnie)

kierunek: Biologia studia niestacjonarne II stopnia realizacja od roku akad. 2017/2018 Przedmioty podstawowe Przedmioty kierunkowe

kierunek: Biologia studia stacjonarne II stopnia realizacja od roku akad. 2017/2018 Przedmioty podstawowe Przedmioty kierunkowe

Centrum Badań DNA - przykład start-up u w biotechnologii

Projekt CHIP Chemia i Praca Zwiększenie kompetencji w ramach studiów I i II stopnia na kierunku Chemia i Technologia Chemiczna

Zapytaj swojego lekarza.

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne. Nie dotyczy

System Triage firmy Quidel

Transkrypt:

CAMERA SEPARATORIA Volume 4, Number 2 / December 2012, 135-149 Piotr LISOWSKI*, Paweł K. ZARZYCKI Zakład Toksykologii i Bioanalityki, Wydział Inżynierii Lądowej, Środowiska i Geodezji Politechnika Koszalińska; Śniadeckich 2, 75-453 Koszalin Telefon: 48 94 3478595 E-mail: * piotr.lisowski@tu.koszalin.pl; dathor@tlen.pl Strona domowa: http://www.wbiis.tu.koszalin.pl/labtox Badania nad mikroprzepływowymi urządzeniami analitycznymi na bazie papieru (µpads) przegląd literatury Streszczenie: Mikroprzepływowe, urządzenia analityczne na bazie papieru (microfluidic paperbased analytical devices; µpads) są relatywnie nową grupą urządzeń analitycznych. Ich początków możemy się doszukiwać w technikach chromatograficznych a w szczególności chromatografii planarnej. Możliwości zastosowania tych urządzeń, głównie do celów tanich, przesiewowych analiz biochemicznych, kryminalistycznych i środowiskowych są obecnie przedmiotem intensywnych badań. W niniejszej pracy dokonaliśmy podsumowania, które obejmuje historię powstania, podstawowe techniki wytwarzania, zastosowania praktyczne oraz potencjalne możliwości rozwoju takich urządzeń. Słowa kluczowe: Mikroprzepływowe urządzenia analityczne na bazie papieru (µpads), badania jakościowe, badania ilościowe, zastosowania medyczne i biochemiczne, przesiewowe analizy środowiskowe, chemia analityczna. 1. Wstęp W ciągu ostatnich dwudziestu kilku lat możemy zaobserwować szybki i dynamiczny rozwój grupy mikroprzepływowych urządzeń analitycznych, określanych mianem laboratorium na chipie (lab-on-chip; LOC). Badania i zastosowanie technologii zminiaturyzowanych urządzeń otwiera nowe możliwości w chemii analitycznej, medycynie, genetyce, biologii komórkowej i dziedzinach pokrewnych. Proste i powtarzalne operowanie małymi objętościami płynów za pomocą odpowiednio ukształtowanych kanałów w skali mikrometrycznej zostało uznane za najważniejszą zaletą laboratoriów na chipie [1]. Urządzenia te są małe, lekkie, przenośne, tanie w produkcji, użytkowaniu i utylizacji. Szczególnie ważne dla ich powszechnego zastosowania są korzyści płynące z możliwości analizowania bardzo małych próbek oraz z niskiego zużycia odczynników potrzebnych do prowadzenia analizy [2]. LOC są obecne w wielu zastosowaniach praktycznych w naukach biomedycznych, genetyce, kryminalistyce, toksykologii, immunologii, badaniach środowiska, chemii lub biochemii. Są wygodnymi narzędziami do wykrywania i oznaczania wielu związków nieorganicznych i organicznych. Oferują możliwości analityczne i diagnostyczne, które mogą zrewolucjonizować medycynę i przemysł farmaceutyczny.

136 P. Lisowski, P.K. Zarzycki Z powodzeniem są wykorzystane w analizach klinicznych krwi [3, 4], w celu wykrywania i identyfikacji patogenów, białek [5-7] i zanieczyszczeń środowiskowych [8, 9], w badaniach genetycznych [10, 11] oraz w przemyśle farmaceutycznym [12, 13]. W krajach rozwijających się, zminiaturyzowane medyczne urządzenia diagnostyczne są szczególnie ważne dla populacji ludzkich, nie mających bezpośredniego dostępu do laboratoriów medycznych z podstawowym wyposażeniem diagnostycznymi [1]. 2. Charakterystyka laboratoriów na chipie Rozpatrując urządzenia mikroprzepływowe pod kątem budowy i technik wytwarzania, możemy wyróżnić dwie główne grupy laboratoriów na chipie. Pierwszą, określaną jako µtas (micro total analysis systems), stanowią urządzenia tworzone na bazie szkła, kwarcu, silikonu i polimerów, połączone z jednostkami zewnętrznymi (np. samplery, detektory, układy elektroniczne), w których przepływ płynów kontrolowany jest za pomocą pomp i zaworów [1]. Przyjmuje się, że pierwsze urządzenie mikroprzepływowe zbudowane ze szkła i silikonu, opracowano w 1975 roku [14, 15]. Co ciekawe, działało ono na zasadzie chromatografii gazowej. Obecnie materiały i techniki wytwarzania µtas oraz spektrum ich zastosowań zostały znacznie udoskonalone i poszerzone oraz szeroko opisane w literaturze naukowej. Z kolei, od 2008 roku możemy zaobserwować szybki rozwój drugiej grupy mikroprzepływowych urządzeń analitycznych, których zasadnicza część budowy oparta jest na papierze (celulozie), i stąd określanych mianem µpads (microfluidic paper-based analytical devices). Ma to odzwierciedlenie w ilości prac naukowych poświeconych tym urządzeniom (Rys. 1). Ten typ obejmują tanie i proste w produkcji, oparte na bazie papieru chipy, które same w sobie są w pełni wyposażonymi urządzeniami laboratoryjnymi, przeznaczonymi do wykonywania określonych zadań, głównie w celu wykrycia różnych rodzajów substancji [16]. Przepływ płynu jest w nich wywołany siłami kapilarnymi a jego kontrola jest obecnie przedmiotem badań [17]. Camera Separatoria Vol. 4, No 2/2012

Badania nad mikroprzepływowymi urządzeniami analitycznymi na bazie... 137 Rys. 1. Ilość publikacji w literaturze naukowej dotyczących µpads w latach 2007-12 (źródło: Web of Knowlegde; data: 15.01.2013 słowo kluczowe: paper-based microfluidic devices). 3. Materiały i metody wytwarzania µpads Zasadniczym celem przy konstruowaniu µpads jest uformowanie hydrofobowych barier określających i ograniczających kierunek przepływu płynu przez materiał podstawowy (papier), czyli utworzenie mikrotunelu. Pierwsze mikroprzepływowe urządzenie na bazie papieru (z wyłączeniem pasków papieru do oznaczania ph) zostało wymyślone i opisane przez Grupę Whiteside a z Uniwersytetu Harvarda w 2007 roku [18]. Mikrotunele wykonano techniką fotolitograficzną, przy użyciu światłoutwardzalnych polimerów i papieru chromatograficznego a urządzenie służyło do oznaczania glukozy i białka w moczu. Sposób wykonania takich urządzeń sprawia, że mogą być wytwarzane nawet w warunkach domowych, przy użyciu taśmy klejącej i papieru [19]. Vol. 4, No 2/2012 Camera Separatoria

138 P. Lisowski, P.K. Zarzycki Obecnie w literaturze naukowej opisano wiele technik i materiałów używanych do wytwarzania hydrofobowych barier, zarówno na typowym papierze filtracyjnym jak i bardziej specjalistycznym chromatograficznym. Popularnymi materiałami są polimery (takie jak fotorezyst SU-8, AKD (dimer alkilowo-ketenowy), PMMA (polimetakrylan metylu), PDMS (polidimetylosiloksan), PS (polistyren) używane zarówno w technice fotolitograficznej [18] jak i i ich roztwory zastępujące atrament w ploterach [20] oraz typowych drukarkach atramentowych [21]. Często wykorzystywaną grupą materiałów są woski używane do drukowania komercyjnego [22, 23] jak również sitodruku woskowego [24]. Wytwarzanie µpads odbywa się także za pomocą druku fleksograficznego [25], używając lasera [26] i plazmy [27] oraz mechanicznie przy pomocy noży tnących [28, 29]. 4. Typowe zastosowania µpads Obecnie możemy zaobserwować wzrost zainteresowania nowymi strategiami pozwalającymi na szybkie analizy, głównie kliniczne i środowiskowe, bez potrzeby użycia zaawansowanego oprzyrządowania. Wykorzystanie do tego celu papieru jako materiału podstawowego jest coraz powszechniejsze, na co wskazują dane z dostępnej literatury naukowej (Rys. 1). Dzieje się tak z oczywistych względów - w laboratoriach papier jest powszechnie używanym materiałem, stosowanym do filtracji lub chromatografowania. Z czterech metod detekcji stosowanych w tego typu urządzeniach (kolorymetrycznej, elektrochemicznej, chemiluminescencyjnej i elektrochemiluminescencyjnej) najbardziej popularnymi są kolorymetryczna i elektrochemiczna [16]. Pierwsze mikroprzepływowe urządzenie diagnostyczne oparte na papierze służyło do kolorymetrycznego oznaczania glukozy i białka w moczu [18]. Papierowe urządzenia opracowane przez zespół naukowy Brennana pozwala w ciągu kilku minut dokonać detekcji paraoksonu i alfatoksyny B1 przy stężeniach, odpowiednio, ~100 nm i ~30 nm [30]. µpads używane są w badaniach środowiskowych do oznaczania metali ciężkich (Pb i Cd) [31], klinicznych do analizy krwi [32-34], genetycznych do detekcji DNA [35, 36] oraz przy ocenie jakości pożywienia [37, 38]. Podejmowane są próby do zastosowania ich w badaniach kryminalistycznych - do detekcji środków wybuchowych [39] i medycznych - do diagnozowania chorób [40]. Prace naukowców skupiają się także nad włączeniem µpads w zakres usług telemedycznych, oraz nad ich kompatybilnością z urządzeniami zewnętrznymi [41-43]. 5. Podsumowanie Badania nad technologią µpads są prowadzone od zaledwie kilku lat. Jak wykazano w tej pracy przeglądowej jest to dziedzina nieustannie rozwijająca się. Camera Separatoria Vol. 4, No 2/2012

Badania nad mikroprzepływowymi urządzeniami analitycznymi na bazie... 139 Wykorzystanie papieru, jako materiału bazowego do celów analitycznodiagnostycznych stanowi centrum zainteresowania wielu ośrodków naukowych na świecie. Oczywistym jest, że µpads nie mogą zastąpić specjalistycznego sprzętu laboratoryjnego (jak chromatografów lub spektrometrów) używanego w laboratoriach na całym świecie. Jednakże w sytuacjach, które dotyczą głównie krajów rozwijających się, gdy dostęp do technologicznie zaawansowanych urządzeń jest utrudniony lub wręcz niemożliwy, µpads mogą stanowić bardzo dobrą alternatywę sprzętu analitycznego. Stanie się to jeszcze bardziej realne, gdy technologia oparta na µpads zostanie włączona w zakres usług telemedycznych. W takim przypadku analiza wyników ze zdjęcia wykonanego prostym telefonem komórkowym, może być przeprowadzona w specjalistycznym laboratorium znajdującym się tysiące kilometrów od punktu dokonania pomiaru. Literatura 1. Whitesides G.M., The origins and the future of microfluidics. Nature 442 (2006) 368-373. 2. Craighead H., Future lab-on-a-chip technologies for interrogating individual molecules. Nature 442 (2006) 387-393. 3. Hou H.W., Bhagat A.A.S, Lee W.C., Huang S., Han J., Lim C.T., Microfluidic devices for blood fractionation. Micromachines 2 (2011) 319-343. 4. Lauks I.R., Microfabricated biosensors and microanalytical systems for blood analysis. Acc Chem Res 31 (1998) 317-324. 5. Bunyakul N., Edwards K.A., Promptmas C., Baeumner A.J., Cholera toxin subunit B detection in microfluidic devices. Anal Bioanal Chem 393 (2009) 177-186. 6. Diercks A.H., Ozinsky A., Hansen C.L., Spotts J.M., Rodriguez D.J., Aderem A., A microfluidic device for multiplexed protein detection in nano-liter volumes. Anal Biochem 386 (2009) 30-35. 7. Mairhofer J., Roppert K., Ertl P., Microfluidic systems for pathogen sensing: a review. Sensors 9 (2009) 4804-4823. 8. Marle L., Greenway G.M., Microfluidic devices for environmental monitoring. Trends Anal Chem 24(9) (2005) 795-802. 9. Li H.F., Lin J.M., Applications of microfluidic systems in environmental analysis. Anal Bioanal Chem 393(2) (2009) 555-567. 10. Hopwood A.J., Hurth C., Yang J., Cai Z., Moran N., Lee-Edghill J.G., Nordquist A., Lenigk R., Estes M.D., Haley J.P., McAlister C.R., Chen X., Brooks C., Smith S., Elliott K., Koumi P., Zenhausern F., Tully G., Integrated microfluidic system for rapid forensic DNA analysis: sample collection to DNA profile. Anal Chem 82(16) (2010) 6991-6999. 11. Shui L., Bomer J.G., Jin M., Carlen E.T., van den Berg A., Microfluidic DNA fragmentation for on-chip genomic analysis. Nanotechnology 22(49) (2011) 494013-494019. Vol. 4, No 2/2012 Camera Separatoria

140 P. Lisowski, P.K. Zarzycki 12. Sekhon B.S., Kamboj S., Microfluidics technology for drug discovery and development - an overview. Int J Pharm Tech Res 2(1) (2010) 804-809. 13. Liu C., Wang L., Xu Z., Li J., Ding X., Wang Q., Chunyu L., A multilayer microdevice for cell-based high-throughput drug screening. J Micromech Microeng 22 (2012) 1-7. 14. Terry S.C., A gas chromatographic air analyser fabricated on silicon wafer using integrated circuit technology. PhD Thesis. (1975) Stanford CA. 15. Terry S.C., Jerman J.H., Angell J.B., A gas chromatographic air analyzer fabricated on a silicon wafer. IEEE Trans Electron Devices 26(12) (1979) 1880-1886. 16. Li X., Ballerini D.R., Shen W., A perspective on paper-based microfluidics: current status and future trends. Biomicrofluidics 6 (2012) 011301-13. 17. Chen H., Cogswell J., Anagnostopoulos C., Faghri M., A fluidic diode, valves, and a sequential-loading circuit fabricated on layered paper. Lab Chip 12 (2012) 2909-2913. 18. Martinez A.W., Phillips S.T., Butte M.J., Whitesides G.M., Patterned paper as a platform for inexpensive, low-volume, portable bioassays. Angew Chem Int Ed 46 (2007) 1318-1320. 19. Martinez A.W., Phillips S.T., Whitesides G.M., Three-dimensional microfluidic devices fabricated in layered paper and tape. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 105(50) (2008) 19606-19611. 20. Bruzewicz D.A., Reches M., Whitesides G.M., Low-cost printing of poly(dimethylsiloxane) barriers to define microchannels in paper. Anal Chem 80 (2008) 3387-3392. 21. Abe K., Kotera K., Suzuki K., Citterio D., Inkjet-printed microfluidic multianalyte chemical sensing paper. Anal Chem 80(18) (2008) 6928-6934. 22. Carrilho E., Martinez A.W., Whitesides G.M., Understanding wax printing: a simple micropatterning process for paper-based microfluidics. Anal Chem 81 (2009) 7091-7095. 23. Lu Y., Shi W., Jiang L., Qin J., Lin B., Rapid prototyping of paper-based microfluidics with wax for low-cost, portable bioassay. Electrophoresis 30 (2009) 1497-1500. 24. Dungchai W., Chailapakul O., Henry C.S., A low-cost, simple, and rapid fabrication method for paper-based microfluidics using wax screenprinting. Analyst 136(1) (2011) 77-82. 25. Olkkonen J., Lehtinen K., Erho T., Flexographically printed fluidic structures in paper. Anal Chem 82(24) (2010) 10246-10250 26. Chitnis G., Ding Z., Chang C.L., Savran C.A., Ziaie B., Laser-treated hydrophobic paper: an inexpensive microfluidic platform. Lab Chip 11 (2011) 1161-1165. 27. Li X., Tian J., Nguyen T.H., Shen W., Paper-based microfluidic devices by plasma treatment. Anal Chem 80(23) (2008) 9131-9134. Camera Separatoria Vol. 4, No 2/2012

Badania nad mikroprzepływowymi urządzeniami analitycznymi na bazie... 141 28. Fenton E.M., Mascarenas M.R., López G.P., Sibbett S.S., Multiplex lateral-flow test strips fabricated by two-dimensional shaping. ACS Appl Mater Interfaces 1(1) (2009) 124-129. 29. Wang W., Wu W.Y., Zhu J.J., Tree-shaped paper strip for semiquantitative colorimetric detection of protein with self-calibration. J Chromatogr A 1217(24) (2010) 3896-3899. 30. Hossain S.M.Z., Luckham R.E., Smith A.M., Lebert J.M., Davies L.M., Pelton R.H., Filipe C.D.M., Brennan J.D., Development of a bioactive paper sensor for detection of neurotoxins using piezoelectric inkjet printing of sol gel-derived bioinks. Anal Chem 81(2009) 5474-5483. 31. Shi J., Tang F., Xing H., Zheng H., Bi L., Wang W., Electrochemical detection of Pb and Cd in paper-based microfluidic devices. J Braz Chem Soc 23(6) (2012)1124-1130. 32. Khan M.S., Thouas G., Shen W., Whyte G., Garnier G., Paper diagnostic for instantaneous blood typing. Anal Chem 82 (2010) 4158-4164. 33. Li M., Tian J., Al-Tamimi M., Shen W., Paper-based blood-typing device that reports patient's blood type "in writing". Angew Chem Int Ed 51 (2012) 5497-5501. 34. Su J., Al-Tamimi M., Garnier G., Engineering paper as a substrate for blood typing bio-diagnostics. Cellulose 19 (2012) 1749-1758. 35. Ali M.M., Aguirre S.D., Xu Y., Filipe C.D.M., Pelton R., Li Y., Detection of DNA using bioactive paper strips. Chem Commun 43 (2009) 6640-6642. 36. Lu J., Ge S.., Ge L., Yan M., Yu J., Electrochemical DNA sensor based on three-dimensional folding paper device for specific and sensitive point-of-care testing. Electrochimica Acta 80 (2012) 334-341. 37. Hossain S.M.Z., Luckham R.E., McFadden M.J., Brennan J.D., Reagentless bidirectional lateral flow bioactive paper sensors for detection of pesticides in beverage and food samples. Anal Chem 81 (2009) 9055-9064. 38. Nie Z.H., Deiss F., Liu X.Y., Akbulut O., Whitesides G.M., Integration of paper-based microfluidic devices with commercial electrochemical readers. Lab Chip 10 (2010) 3163-3169. 39. Doble P., Blanes L., Development of microfluidic paper-based analytical devices (μ-pads) using a 3D printer: in-field screening of organic explosives. In: Bachelor of forensic science (honours) in applied chemistry; Forensic Honours Projects 2013, University of Technology, Sydney, 2012. 40. Ge L., Wang S., Song X., Ge S., Yu J., 3D origami-based multifunctionintegrated immunodevice: Low-cost and multiplexed sandwich chemiluminescence immunoassay on microfluidic paper-based analytical device. Lab Chip 12 (2012) 3150-3158. Vol. 4, No 2/2012 Camera Separatoria

142 P. Lisowski, P.K. Zarzycki 41. Martinez A.W., Scott T.P., Carrilho E., Thomas III S.W., Sindi H., Whitesides G.M., Simple telemedicine for developing regions: camera phones and paper-based microfluidic devices for real-time, off-site diagnosis. Anal Chem 80(10) (2008) 3699-3707. 42. Liu H., Crooks R.M., Paper-based electrochemical sensing platform with integral battery and electrochromic read-out. Anal Chem 84(5) (2012) 2528-2532. 43. Vella S.J., Beattie P., Cademartiri R., Laromaine A., Martinez A.W., Phillips S.T., Mirica K.A., Whitesides G.M., Measuring markers of liver function using a micropatterned paper device designed for blood from a fingerstick. Anal Chem 84 (2012) 2883-2891. Camera Separatoria Vol. 4, No 2/2012