Parazytozy żubrów powodowane przez nicienie lokalizujące się w jelicie grubym



Podobne dokumenty
Robaczyca płucna żubrów w Puszczy Białowieskiej

Neospora caninum u żubrów eliminowanych w Białowieży w latach

Diagnostyka parazytoz jak sprawdzić z kim mamy do czynienia?

Stan zarażenia żubrów w Puszczy Białowieskiej helmintami w sezonie zimowym 2007/2008

Rozwój metapopulacji żubra w północno-wschodniej Polsce. Monitoring populacji żubrów

Szkolenie Najlepsze praktyki w zakresie ochrony żubrów

Pasożyty psów i kotów Jak chronić zwierzęta? Zagrożenia dla ludzi

Nowoczesne odrobaczanie koni

INTESTA jedyny. oryginalny maślan sodu w chronionej patentem matrycy trójglicerydowej

Najczęstsze inwazje pasożytnicze i pierwotniacze wykrywane metodami flotacji i sedymentacji u psów i kotów 1

Pasożyty sandacza i dorsza z Zatoki Pomorskiej chorobotwórczość i wpływ na kondycję ryb. Monika Legierko, Klaudia Górecka

CHOROBY ZWIERZĄT = CHOROBY LUDZI. Polskie Towarzystwo Nauk Weterynaryjnych Oddział w Białymstoku. Powiatowy Lekarz Weterynarii w Hajnówce

Probiotyki, prebiotyki i synbiotyki w żywieniu zwierząt

Zewnątrzwydzielnicza niewydolność trzustki u psów

ALEKSANDER W. DEMIASZKIEWICZ

Stężenie wolnego testosteronu (FT) w surowicy żubrów z wczesną spermiogenezą badania wstępne

Neospora caninum u żubrów eliminowanych w Białowieży w latach

Zwalczanie pasożytów zewnętrznych na fermie świń

Uczestnicy postępowania zakres odpowiedzialności

Żubry w Puszczy Boreckiej

Projekt Rozwój metapopulacji żubra w północno-wschodniej Polsce

Karty pracy dla grup Przykładowe odpowiedzi

Program kursu specjalizacyjnego z mikrobiologii medycznej (dla uczestników)

Endopasożyty u świń - aktualny problem

I. Podstawa prawna. III. Przedmiot procedury Przedmiotem niniejszej procedury jest określenie: zasad postępowania z dzieckiem chorym, objawów choroby.

Paratuberkuloza - czy nasze stada bydła są zagrożone?

Znaczenie Faecalibacterium prausnitzii oraz Akkermansia muciniphila w chorobach zapalnych jelit

I.Podstawa prawna. Przedmiot procedury Przedmiotem niniejszej procedury jest określenie: zasad postępowania z dzieckiem chorym, objawów choroby.

wiek lat bez objawów raka jelita grubego Więcej Na czym polega kolonoskopia?

Procedura postępowania w przypadku stwierdzenia chorób pochodzenia pasożytniczego (glistnicy i owsicy) w Przedszkolu nr 286 w Warszawie

Badaniem pozwalającym na

dr Marta Kołodziej-Sobocińska Autoreferat Czynniki wpływające na rozprzestrzenianie się pasożytów w populacjach dziko żyjących ssaków

OWSICA I GIARDIOZA. Aleksandra Wasilewska. Oddział Promocji Zdrowia i Oświaty Zdrowotnej Wojewódzkiej Stacji Sanitarno-Epidemiologicznej w Olsztynie

Jak to z żubrami bywa ochrona żubra w ramach sieci Natura 2000

Restytucja gatunku na przykładzie żubra zajęcia w ogrodzie zoologicznym

WSKAZANIA DO LECZENIA CHIRURGICZNEGO W CHOROBACH ZAPALNYCH JELIT. Zuzanna Kaszycka Klinika Chirurgii Gastroenterologicznej i Transplantologii

Zmiany o charakterze nowotworowym w płucach żubrów (Bison bonasus)

OMACNICA PROSOWIANKA. Ostrinia nubilalis (Hubner)

ACTA UNIVERSITATIS LODZIENSIS KSZTAŁTOWANIE SIĘ WIELKOŚCI OPADÓW NA OBSZARZE WOJEWÓDZTWA MIEJSKIEGO KRAKOWSKIEGO

Pasożyty psują tucz! Jak się ich ustrzec?

Procedura postępowania w przypadku stwierdzenia chorób pochodzenia pasożytniczego (owsicy, wszawicy) w Zespole Szkolno Przedszkolnym nr 1 w Opolu

MONITORING LICZEBNOŚCI I ROZPRZESTRZENIENIE ŻUBRA W PÓŁNOCNO-WSCHODNIEJ POLSCE

WOJEWÓDZKA STACJA SANITARNO-EPIDEMIOLOGICZNA W OLSZTYNIE PRZEGLĄD PARAZYTOLOGICZNY

KLASA VI WYMAGANIA NA POSZCZEGÓLNE OCENY (BIOLOGIA) Poziom wymagań

Tabela 1. Charakterystyka badanego jesiotra syberyjskiego Acipenser baeri Brandt. Miejsce pochodzenia. Liczba ryb. Nr kolejny. Długość całkowita [cm]

Pasożyty skóry u kotów, czyli czym można się zarazić od swojego kota.

Jak pasożyty dostają się do organizmu gospodarza?

Neospora caninum u żubrów żyjących w Białowieży

Odrobaczanie bydła: co zagraża zwierzętom?

WYMAGANIA EDUKACYJNE Z BIOLOGII kl. VI

WPŁYW RÓŻNYCH GATUNKÓW I SZCZEPÓW NICIENI ENTOMOPATOGENICZNYCH NA PLEŚNIAKOWCA LŚNIĄCEGO (ALPHITOBIUS DIAPERINUS PANZER)

MOJE SZCZENIĘ MA BIEGUNKĘ! CO ROBIĆ?

ZDROWE JELITA NOWE SPOSOBY PROFILAKTYKI. Poradnik dla pacjenta o diagnozowaniu i leczeniu chorób jelit

IU-01 PSSE w Ostrowie Wielkopolskim Laboratorium Mikrobiologii i Parazytologii Wyd.6/ strona1/1

Opieka po operacjach endoskopowych zatok (FEOZ) z oceną regeneracji błony śluzowej na podstawie badań cytologicznych

Pasożyty niechciani goście w naszych organizmach. Anna Kimak-Cysewska Koszalin 2014

Paramectin 1% 10mg/1ml

Znaczenie monitoringu populacji ssaków kopytnych w ochronie dużych drapieżników

marketinginformacja Diagnostyka weterynaryjna Szybkie testy dla rolnictwa +++ dostępne w SalesPlusie +++

Projekt Rozwój metapopulacji żubra w północno-wschodniej Polsce

ocena celująca I. Świat zwierząt

Biologia klasa 6. Wymagania edukacyjne do działów na poszczególne oceny

Rodzaj i wielkość szkód powodowanych przez żubry w uprawach rolnych i leśnych

9.Tylko jedna odpowiedź jest poprawna. 10. Wybierz właściwą odpowiedź i zamaluj kratkę z odpowiadającą jej literą np., gdy wybrałeś odpowiedź A :

80 lat restytucji żubrów w Puszczy Białowieskiej

Strategia ochrony żubra w Puszczy Knyszyńskiej na terenach PGL Lasy Państwowe

WYST POWANIE NICIENI PASO YTNICZYCH U UBRÓW HODOWANYCH ZAGRODOWO I ICH ZWALCZANIE Z U YCIEM IWERMEKTYNY

KARTA KURSU. Parazytologia w ochronie środowiska i zdrowia. Parasitology in protecting the environment and health. Kod Punktacja ECTS* 1

w kale oraz innych laboratoryjnych markerów stanu zapalnego (białka C-reaktywnego,

Rozwój metapopulacji żubra

Owsiki - Suplementy CaliVita - Paraprotex, grzybica kuracja, pasożyty kuracja

godzin 1. Wprowadzenie. Zapoznanie uczestników ze szczegółowym

Babeszjoza. Anna Kloc

Komensalizm. To współżycie organizmów różnogatunkowych, które korzystają ze wspólnego pożywienia i nie szkodzą sobie wzajemnie

Odrobaczanie loch: czy jest konieczne?

Wymagania edukacyjne z biologii dla klasy 6 szkoły podstawowej

Powiatowy Inspektorat Weterynarii w Bełchatowie r.

TEMATYKA WYKŁADÓW PARAZYTOLOGIA I INWAZJOLOGIA WETERYNARYJNA. Semestr VII /zimowy/ IV rok Wydz. Med. Wet. UP Lublin

- tłumaczenie robocze - Wstępna Ocena Ryzyka sporządzona przez ECDC

Projekt wsiedlenia żubrów do Puszczy Augustowskiej. Piotr Wawrzyniak

Choroby bydła: co robić, gdy oczy szwankują?

INFORMACJA. z wykonanego zadania na rzecz postępu biologicznego w produkcji zwierzęcej

Badania przesiewowe w kierunku raka jelit.

Mieszkańcy przewodu pokarmowego - jak wyglądają a jak można ich rozpoznać? Urszula Grzybowska-Chlebowczyk

Genetyka populacji. Analiza Trwałości Populacji

Analysis of infectious complications inf children with acute lymphoblastic leukemia treated in Voivodship Children's Hospital in Olsztyn

KARTA KURSU Ochrona Środowiska I stopnia Studia stacjonarne

Wymagania edukacyjne z biologii dla klasy 6 szkoły podstawowej. 1 Copyright by Nowa Era Sp. z o.o.

WYMAGANIA EDUKACYJNE NIEZBĘDNE DO UZYSKANIA POSZCZEGÓLNYCH ŚRÓDROCZNYCH I ROCZNYCH OCEN Z BIOLOGII W KLASIE VI Dział Temat Poziom wymagań

Wymagania edukacyjne z biologii dla klasy 6 szkoły podstawowej oparte na Programie nauczania biologii Puls życia

ŻUBR W BIESZCZADACH JAKO PRZYKŁAD UDANEJ RESTYTUCJI

PRZEDMIOTOWE ZASADY OCENIANIA Z BIOLOGII DLA KLASY 6

Charakterystyka kliniczna chorych na raka jelita grubego

Okrężnica Leży między kątnicą a odbytnicą. Dzieli się na trzy części: wstępującą, poprzeczną i zstępującą.

Wymagania edukacyjne z biologii dla klasy 6 szkoły podstawowej oparte na Programie nauczania biologii Puls życia autorstwa Anny Zdziennickiej

Wymagania edukacyjne z biologii dla klasy 6 szkoły podstawowej oparte na Programie nauczania biologii Puls życia autorstwa Anny Zdziennickiej

Wymagania edukacyjne z biologii dla klasy 6 szkoły podstawowej oparte na Programie nauczania biologii Puls życia autorstwa Anny Zdziennickiej

Wymagania edukacyjne z biologii dla klasy 6 szkoły podstawowej

Transkrypt:

European Bison Conservation Newsletter Vol 3 (2010) pp: 69 74 Parazytozy żubrów powodowane przez nicienie lokalizujące się w jelicie grubym Aleksander W. Demiaszkiewicz, Anna M. Pyziel, Izabela Kuligowska, Jacek Lachowicz Instytut Parazytologii im. Witolda Stefańskiego PAN, Warszawa Parasitoses of the European bison caused by nematodes located in the large intestine Abstract: Nematodes located in the large intestine of wild ungulates can induce weakness of animals as a consequence of a refractory and difficult to treat diarrhea, caused by invasion. We were encouraged to do the presented study becaused of the lack of current data about the invasion of mentioned nematodes in the European bison. The study was conducted in the Białowieża Primeval Forest, during bison elimination in the winter seasons 2007 2010. 23 male and female bison were dissected during the study. The caecums of 14 bison aged ranging from 3 months to 16 years old were investigated as the most favourable location of the large intestine nematodes in the winter of 2007/2008. The whole large intestines, including caecum and colon of 9 bison aged ranged from 5 months to 10 years old were dissected parasitologically during the winter seasons in 2008/2010, in order to find out the detailed localization of the large intestine nematodes and the total intensity of invasion. 5 species of nematode, Trichuris ovis, Oesophagostomum venulosum, O. radiatum, Ashworthius sidemi and Nematodirus helvetianus, were found in dissected caecums of bison culled in winter 2007/2008. Moreover, all the bison investigated in the winter of 2009/2010 were infected with the species of nematodes mentioned above from the genus Trichuris and Oesophagostomum. The intensity of T. ovis invasion in the complete large intestines varied from 60 to 777 individuals and the mean intensity of that species was 368. The intensity of invasion of another found species, O. venulosum, varied from 37 to 289 individuals, whereas the mean intensity was 98. The intensity of O. radiatum, the other species of nematodes found in large intestine, varied from 1 to 809 individuals and the mean intensity of invasion was 122. The few additional species of nematodes were also found in the large intestine of the European bison. From 1 to 4 individuals of A. sidemi were found in the large intestine of 4 investigated bison. Moreover, 1 individual of N. roscidus was found in the single bison and 14 individuals in another one. The few individuals of B. trigonocephalum were also fund in two dissected bison. The intensity of the invasion of the nematodes of large intestine of the European bison in the Białowieża Primeval Forest remained on the comparable level throughout the last 20 years, however the number of species involved is increasing. The observed level of invasion is typical for subclinical parasitoses. Key words: nematodes, large intestine, Bison bonasus, Białowieża Forest Wstęp Najliczniejszymi pasożytami występującymi w jelicie grubym dużych przeżuwaczy są nicienie należące do rodzajów Trichuris i Oesophagostomum. Nicienie lokalizujące się w tym odcinku jelita żubrów należą do najmniej zbadanych.

70 Parazytozy żubrów powodowane przez nicienie lokalizujące się w jelicie grubym Jest to spowodowane dużą objętością mas kałowych wypełniających jelito grube i co za tym idzie znaczną trudnością i pracochłonnością tych badań. Nicienie z wymienionych rodzajów wywołują u zwierząt domowych choroby pasożytnicze, często o ciężkim przebiegu. Najważniejszą z nich jest włosogłówczyca zwana też trychocefalozą lub trichuriozą, powodowana u bydła i owiec przez nicienie należące do gatunku Trichuris ovis. Są to nicienie o długości od 5 do 8 cm, posiadające charakterystyczną budowę. Ich przednia, nitkowata część ciała zawierająca gardziel jest cieńsza i dłuższa od tylnej. Jaja omawianych nicieni o grubej skorupce, są wydalane do środowiska w stadium niebruzdkującym. Są one odporne na niesprzyjające czynniki środowiskowe. Rozwój larwy w jaju do stadium inwazyjnego trwa około 50 dni. Zwierzęta zarażają się przez zjadanie inwazyjnych jaj. W jelicie cienkim larwy opuszczają skorupkę jajową i wnikają w błonę śluzową. Wkrótce powracają do światła jelita i wędrują do jelita grubego, gdzie po odbyciu dwóch linek dojrzewają. Okres prepatentny trwa ponad 50 dni. Inwazje o małej intensywności przebiegają bezobjawowo. Zarażenia intensywne wywołują objawy kliniczne w postaci biegunki, niekiedy z domieszką krwi, brak apetytu, niedokrwistość, osłabienie i utratę masy ciała. Błona śluzowa jelita grubego jest obrzękła, pokryta dużą ilością śluzu z oznakami nieżytowego zapalenia. Obserwowane są również punkcikowate wybroczyny i ogniska krwotoczne. W wyniku wtórnej infekcji bakteryjnej powstają owrzodzenia błony śluzowej jelita. Drugą parazytozą jelita grubego przeżuwaczy, wywoływaną przez nicienie z rodzaju Oesophagostomum jest ezofagostomatoza. Powodują ją dwa gatunki nicieni: O. radiatum typowy pasożyt bydła, i występujący u owiec i jeleniowatych O. venulosum. Nicienie z tego rodzaju są niedużymi pasożytami barwy białej, o długości od 1 do 2 cm, z charakterystyczną dla gatunku torebką gębową. Z jaj nicieni wydalonych z kałem do środowiska już w ciągu doby wylęgają się larwy, które linieją dwukrotnie i po upływie tygodnia osiągają stadium inwazyjne. Zarażenie następuje drogą pokarmową. W jelicie grubym żywiciela larwy wnikają w błonę śluzową, ulegają otorbieniu i linieją. Okres ten zwany fazą histotropową trwa około tygodnia. Następnie larwy IV stadium wydostają się z guzków do światła jelit, odbywają kolejną linkę i osiągają dojrzałość. Okres prepatentny wynosi od 1 do 3 miesięcy. W fazie histotropowej obserwuje się ostry przebieg choroby objawiający się wzmożoną perystaltyką, intensywną biegunką z dużą ilością śluzu, a nawet krwi w kale, a także bólami morzyskowymi. Następuje utrata apetytu, osłabienie, niedokrwistość i wychudzenie. W błonie śluzowej jelita grubego, a rzadziej cienkiego, stwierdzane są liczne guzki różnej wielkości, osiągające do 10 mm średnicy, w których znajdują się larwy nicieni. Błona śluzowa w sąsiedztwie guzków wykazuje cechy zapalenia i nacieczenia eozynofilami, oraz obecność wybroczyn i nalotów włóknikowych.

Demiaszkiewicz i wsp. 71 Starsze guzki, z których wydostały się już larwy, posiadają kraterowaty otwór na wierzchołku, a ich wnętrze wypełnia serowata masa. W przypadku infekcji bakteryjnej guzki mogą ulec zropieniu. Intensywne inwazje wywołują rozległe zmiany w postaci wrzodziejącego zapalenia okrężnicy (Furmaga 1983; Taylor i in. 2008). Jak wykazały nasze wieloletnie obserwacje, omawiane nicienie u dzikich przeżuwaczy mogą wywoływać uporczywe, trudne do wyleczenia biegunki prowadzące do osłabienia zwierząt. Brak szczegółowych informacji dotyczących aktualnego stanu zarażenia żubrów przez nicienie jelita grubego był przyczyną podjęcia niniejszych badań. Materiał i metody Badanie prowadzono podczas eliminacji zimowych żubrów w Puszczy Białowieskiej w latach 2007 2010. Łącznie sekcjonowano 23 żubry obu płci. W sezonie zimowym 2007/2008 roku zbadano 14 żubrów w wieku od 3 miesięcy do 16 lat. W celu ustalenia składu gatunkowego nicieni jelita grubego żubrów od badanych wówczas zwierząt pobierano jelito ślepe, które uznano za miejsce predylekcyjne tych pasożytów. W przypadku cieląt było to całe jelito, a od żubrów dorosłych pobierano jego 1 / 3 część, ze względu na dużą objętość treści jelitowej trudnej do zbadania. W sezonie 2008/2010 zbadano 9 żubrów w wieku od 5 miesięcy do 10 lat. Wówczas w celu ustalenia dokładnej lokalizacji nicieni i pełnej intensywności inwazji pobierano od wszystkich żubrów całe jelita grube, zarówno jelito ślepe jak i okrężnicę. Jelita uwalniano od krezki, a następnie poddawano pełnej sekcji parazytologicznej połączonej z sedymentacją. Uzyskany w czasie sedymentacji osad konserwowano w 2% formalinie, a następnie w małych porcjach przeglądano na płytkach Petriego wypełnionych wodą, wyławiając wszystkie nicienie, które umieszczano w 75% alkoholu etylowym z dodatkiem 5% glicerolu. Po odparowaniu alkoholu sporządzano ze wszystkich nicieni nietrwałe preparaty mikroskopowe i oznaczano ich gatunek. Wyniki i dyskusja W jelicie ślepym żubrów eliminowanych w sezonie zimowym 2007/2008 stwierdzono 5 gatunków nicieni: Trichuris ovis, Oesophagostomum venulosum, O. radiatum, Ashworthius sidemi i Nematodirus helvetianus. Najczęściej obserwowano nicienie O. venulosum u 71% badanych żubrów. Intensywność inwazji tym gatunkiem wynosiła od 1 do 66 nicieni, a średnia intensywność zarażenia 21 nicieni. Nicieniami T. ovis zarażonych było 43% żubrów, intensywność zarażenia poszczególnych zwierząt wahała się od 8 do 849 egzemplarzy nicieni a średnia intensywność 273 egzemplarze. Dwa gatunki nicieni: O. radiatum i A. sidemi wykryto w jelicie ślepym u 14% badanych zwierząt. Zakres intensywności zarażenia O. radiatum wynosił od 2 do 42 egzemplarzy nicieni, a średnia

72 Parazytozy żubrów powodowane przez nicienie lokalizujące się w jelicie grubym intensywność zarażenia 22 egzemplarze. Intensywność występowania w jelicie ślepym żubrów nicieni A. sidemi wahała się od 3 do 21 egzemplarzy nicieni, a średnia intensywność 12 nicieni. Nicienie N. helvetianus były stwierdzone w jelicie ślepym tylko 1 żubra. Intensywność zarażenia tym gatunkiem wynosiła 13 nicieni. W badaniach przeprowadzonych w sezonie zimowym 2009/2010 wszystkie badane żubry były zarażone omawianymi nicieniami z rodzajów Trichuris i Oesophagostomum. W jelitach grubych traktowanych jako całość zakres intensywności zarażenia nicieniem T. ovis wynosił od 60 do 777 nicieni, a średnia intensywność 368 nicieni. Jednak włosogłówki najliczniej występowały w jelicie ślepym, gdzie zakres ich intensywności wynosił od 48 do 554 nicieni, a średnia intensywność 242 nicienie. W okrężnicy obserwowano mniejszą liczbę tych pasożytów zakres intensywności wahał się od 12 do 314 nicieni, a średnia intensywność osiągała 126 nicieni. W jelitach grubych stwierdzono również nicienie O. venulosum. Zakres intensywności inwazji tego nicienia wynosił od 37 do 289 egzemplarzy, a średnia intensywność 98 nicieni. Gatunek ten podobnie jak poprzedni umiejscawiał się w przeważającej liczbie w jelicie ślepym, gdzie zakres intensywności wynosił od 20 do 127 nicieni, a średnia intensywność 61 nicieni. Kolejny gatunek, O. radiatum występował w całych jelitach grubych w zakresie intensywności od 1 do 809 nicieni i ze średnią intensywnością 122 nicienie. Jednak pasożyt ten w przeciwieństwie do omówionych poprzednio, lokalizuje się głównie w okrężnicy, gdzie zakres jego intensywności wahał się od 1 do 808 nicieni, a średnia intensywność 116 nicieni. W jelicie ślepym stwierdzono tylko nieliczne egzemplarze O. radiatum zakres intensywności wynosił od 1 do 39 nicieni, a średnia intensywność 6 egzemplarzy. Ponadto u 4 spośród badanych żubrów stwierdzono nieliczne (od 1 do 4 egzemplarzy) nicienie A. sidemi, a u 2 żubrów nicienie N. roscidus (1 i 14 egzemplarzy). Również u 2 żubrów stwierdzono pojedyncze nicienie B. trigonocephalum. Pierwsze informacje o występowaniu omawianych nicieni u żubrów znajdujemy w monografii Wróblewskiego (1927), który obserwował w jelicie ślepym wielkie ilości Trichocephalus. Następnie badaniami sekcyjnymi 25 żubrów w rezerwatach zamkniętych (Dróżdż 1961) w jelicie grubym stwierdzono jedynie nicienie O. radiatum i T. ovis. W kolejnych badaniach jelita ślepego 4 żubrów żyjących na wolności (Dróżdż i in. 1989) u wszystkich zwierząt stwierdzono O. radiatum, a tylko u jednego O. venulosum i Chabertia ovina. W wymienionych badaniach nie określano intensywności inwazji. Kolejne badania przeprowadzono na początku zimy 1987/88 wykonując sekcje parazytologiczne jelita grubego 6 żubrów i w końcu tej zimy 9 żubrów. Wykryto wówczas 4 gatunki nicieni: Ch. ovina, O. radiatum, O. venulosum i T. ovis. Gatunek Ch. ovina pojawił się pod koniec okresu zimowania u znacznego procentu zwierząt, lecz intensywność jego inwazji była niska. Pod koniec zimy wzrosła natomiast wyraźnie ekstensywność i intensywność inwazji pozostałych

Demiaszkiewicz i wsp. 73 trzech gatunków nicieni. W porównaniu z żubrami z rezerwatów zamkniętych żubry bytujące na wolności przyswoiły sobie O. venulosum i Ch. ovina. Należy przypuszczać, że miejsca zimowego dokarmiania żubrów są źródłem inwazji. W miejscach tych gromadzą się duże ilości kału zawierającego formy inwazyjne pasożytów. Skarmiane są tam również ogromne ilości siana mogącego zawierać postaci inwazyjne omawianych nicieni. Siano pochodzi z okolicznych wsi w których powszechnie hoduje się bydło i owce, a wykryte w jelitach grubych żubrów nicienie były typowymi pasożytami przeżuwaczy domowych (Dróżdż i in. 1990). W porównaniu z wynikami badań przeprowadzonych w sezonie zimowym 1987/1988 (Dróżdż i in. 1990), w niniejszych badaniach fauna jelita grubego żubrów wzbogaciła się o cztery gatunki: A. sidemi, N. helvetianus, N. roscidus i B. trigonocephalum. Nie stwierdzono obserwowanego wówczas nicienia Ch. ovina. Obecność A. sidemi typowych pasożytów trawieńca oraz N. helvetianus i N. roscidus pasożytów dwunastnicy w jelicie grubym jest spowodowana bardzo wysoką intensywnością występowania tych nicieni w miejscach typowej lokalizacji, ich przegęszczeniem i rozprzestrzenieniem na pozostałe odcinki przewodu pokarmowego (Demiaszkiewicz, Lachowicz 2007). Zarejestrowanie gatunku B. trigonocephalum typowego pasożyta łosi, może być spowodowane wzrostem liczebności populacji żubrów i penetrowaniem przez nie biotopów w których występują łosie. Stwierdzona w sezonie 2007/2008 niższa intensywność inwazji spowodowana jest faktem, że w tych badaniach sekcjonowano tylko jelito ślepe, a w latach 1987/1988 całe jelito grube. Nie wykrycie w badaniach własnych nicieni Ch. ovina może być spowodowane zaprzestaniem hodowli bydła oraz owiec na terenie wsi puszczańskich i brakiem kontaktu żubrów z formami inwazyjnymi tego pasożyta. W porównaniu z badaniami przeprowadzonymi przed ponad 20 laty (Dróżdż i in. 1990) maksymalna intensywność zarażenia nicieniami T. ovis jest obecnie nieco niższa, lecz średnia intensywność utrzymuje się na tym samym poziomie. Wśród nicieni z rodzaju Oesophagostomum zmniejszyła się nieco maksymalna intensywność zarażenia i ponad dwukrotnie średnia intensywność zarażenia O. radiatum. Wzrosła natomiast ponad trzykrotnie maksymalna intensywność zarażenia i o połowę średnia intensywność zarażenia O. venulosum. Stan taki można wytłumaczyć ograniczeniem kontaktu żubrów z bydłem, którego typowym pasożytem jest O. radiatum i przejmowaniem nicieni O. venulosum od jeleniowatych. W białoruskiej części Puszczy Białowieskiej w wyniku badań prowadzonych w latach 1986 2001 stwierdzono u 38% badanych żubrów zarażenie nicieniami jelita grubego. 20% tych zwierząt zarażonych było nicieniami z rodzaju Oesophagostomum, a 25% włosogłówkami. Średnia intensywność zarażenia żubrów włosogłówkami wynosiła 153 egzemplarze i była ponad dwukrotnie niższa od stwierdzanej w niniejszych badaniach. Maksymalną intensywność zarażenia (1049 włosogłowek) stwierdzono u 9 miesięcznego cielęcia żubra

74 Parazytozy żubrów powodowane przez nicienie lokalizujące się w jelicie grubym z objawami klinicznymi inwazji wychudzeniem, biegunką i zmianami skórnymi (Kochko 2003). Przebieg inwazji nicieni T. ovis z objawami klinicznymi prowadzący do upadków obserwowano również u łosi. Podczas sekcji w jelitach grubych stwierdzono ponad 5 tysięcy nicieni (Skrjabin i in. 1957). Niższa ekstensywność i intensywność zarażenia nicieniami jelita grubego białoruskich żubrów była spowodowana mniejszą liczebnością i koncentracją tych zwierząt w okresie prowadzenia badań. Stan zarażenia żubrów w Puszczy Białowieskiej nicieniami lokalizującymi się w jelicie grubym w ciągu ostatnich 20 lat utrzymuje się na zbliżonym poziomie, zwiększa się jednak skład gatunkowy pasożytów. Obserwowana intensywność inwazji charakterystyczna jest dla inwazji subklinicznej. Wywoływane przez omawiane nicienie biegunki mogą być niebezpieczne dla późno urodzonych, słabych cieląt. Niezbędne jest kontynuowanie monitoringu zarażenia żubrów nicieniami jelita grubego. Piśmiennictwo Demiaszkiewicz A. W., Lachowicz J. 2007. Wzrost zarażenia żubrów helmintami w Puszczy Bialowieskiej. W: Rola hodowli ex situ w procesie restytucji żubra. (Red. W. Olech). Lasy Państwowe, Gołuchów: 12 16. Dróżdż J. 1961. A study on helmints and helminthiases in bison, Bison bonasus (L.) in Poland. Acta parasit. pol. 9: 55 96. Dróżdż J., Demiaszkiewicz A. W., Lachowicz J. 1989. The helminth fauna of free-ranging European bison, Bison bonasus (L.). Acta parasit. pol. 34: 117 124. Dróżdż J., Demiaszkiewicz A. W., Lachowicz J. 1990. Nicienie jelita grubego żubrów. Wiad. Parazytol. 38: 35 38. Furmaga S. 1983. Choroby pasożytnicze zwierząt domowych. PWRiL, Warszawa. Kochko Yu. P. 2003. Podsumowanie aktualnej sytuacji helmintologicznej żubrów w Puszczy Białowieskiej. Materiały konferencji Znaczenie badań naukowych dla ochrony żubrów w Polsce. Warszawa, 13.06.2003, 18 19. Skrjabin K. I., Shihobalova H. P., Orlov I. V. 1957. Osnovy Nematodologii. Izd. Akad. Nauk SSSR, Moskva. Taylor M. A., Coop R. L., Wall R. L. 2007. Veterinary Parasitology. Blackwell Publishing, Oxford. Wróblewski K. 1927. Żubr Puszczy Białowieskiej. Wyd. Polskie, Poznań.