Producent / Nazwa handlowa / Nr katalogowy. Ilość

Transkrypt

1 Zakup i dostawa mikroskopu konfokalnego stanowiącego wyposażenie specjalistycznej pracowni obrazowania i analiz in vivo oraz in vitro i systemu mikroskopii fluorescencyjnej z modułem oświetlenia strukturalnego do Instytutu Farmakologii Polskiej Akademii Nauk w Krakowie przy ul. Smętnej 12 Pakiet 1 - Zakup i dostawa mikroskopu konfokalnego stanowiącego wyposażenie specjalistycznej pracowni obrazowania i analiz in vivo oraz in vitro do Instytutu Farmakologii PAN w Krakowie przy ul. Smętnej 12 Lp. Nazwa i opis przedmiotu zamówienia Producent / Nazwa handlowa / Nr katalogowy Ilość Cena jednostkowa bez w % w zł Wartość bez Wartość z Okres gwarancji min. 12 miesięcy (podać) 1. Zakup i dostawa mikroskopu konfokalnego stanowiącego wyposażenie specjalistycznej pracowni obrazowania i analiz in vivo oraz in vitro do Instytutu Farmakologii PAN w Krakowie przy ul. Smętnej komplet Opis przedmiotu zamówienia poniżej. Opis przedmiotu zamówienia: Element MIKROSKOP ODWRÓCONY Opis 1. Statyw mikroskopu z układem optycznym w kształcie litery U, skorygowanym na tzw. nieskończoną długość tubusu, konstrukcyjnie przystosowany do obserwacji w świetle przechodzącym, do obserwacji fluorescencyjnych oraz do współpracy z modułem konfokalnym oraz z kamerą do rejestracji zdjęć cyfrowych. Wyposażenie statywu: a. Zmotoryzowany kodowany układ ogniskowania z minimalnym krokiem w osi Z poniżej 4 nm. b. Zmotoryzowany, kodowany, sześciogniazdowy rewolwer obiektywowy c. Zmotoryzowany,rewolwerowy zmieniacz filtrów do fluorescencji d. Zmotoryzowany, kodowany kondensor z soczewką o min. NA = 0,55, oraz min. dystansie pracy 28 mm

2 e. Dotykowy, kolorowy wyświetlacz ciekłokrystaliczny umieszczony na statywie mikroskopu, umożliwiający odczyt i zmianę nastaw zmotoryzowanych elementów mikroskopu. f. Dodatkowe, programowalne przyciski funkcyjne do kontroli zmotoryzowanych elementów mikroskopu umieszczone na bokach statywu. g. Boczny port (prawy) na kamerę przygotowany dla kamer o dużym sensorze: FOV minimum 19 mm. 2. Tubus binokularowy z okularami 10x i polu widzenia FOV = 22 mm. 3. Chłodzona powietrzem, kolorowa kamera cyfrowa z sensorem typu CCD o parametrach nie gorszych niż: a. Format matrycy 1920x1440 pikseli (2,8 megapiksela). b. Wielkość piksela na matrycy: 4,54 x 4,54 mikrometra c. Rozszerzony zakres dynamiczny 68dB d. Efektywność kwantowa do 70% przy długości fali ok 600 nm e. Możliwość wykonywania sprzętowego binningu 2x2, 3x3, 4x4, 5x5 f. Prędkość akwizycji obrazu do 123 zdjęć / sekundę g. Połączenie z komputerem za pomocą łącz USB 3.0 h. Podłączenie do statywu mikroskopu za pomocą złącza typu C o powiększeniu 0,7x. 4. Oświetlenie dla światła przechodzącego: a. Źródło światła LED o mocy maks. 15W b. Zmotoryzowana i kodowana regulacja wielkości przysłony aperturowej w torze do obserwacji w świetle przechodzącym 5. Oświetlenie dla fluorescencji: a. Zewnętrzne źródło światła do fluorescencji z lampą metalohalogenkową o mocy 120W i czasem życia min godz. oraz z pięciostopniowym, mechanicznym systemem tłumienia intensywnością światła przesyłanego do mikroskopu poprzez światłowód. b. Zmotoryzowana przysłona polowa w torze oświetlenia do fluorescencji z możliwością otwierania i zamykania z wykorzystaniem ekranu dotykowego, oprogramowania, bądź przycisków funkcyjnych w statywie. Możliwość wyboru otworu przysłony o kształcie koła lub prostokąta w celu dokładnego dopasowania się przysłony do granic pola widzenia okularu (koło) lub kamery (prostokąt). c. Zmotoryzowana migawka (shutter) w torze oświetlenia do fluorescencji d. Zintegrowany w statywie mikroskopu i zmotoryzowany 5-pozycyjny kontroler intensywności światła fluorescencji. 6. Zestaw kostek z filtrami fluorescencyjnymi, wąskopasmowymi. Możliwość prostej, beznarzędziowej wymiany kostek (montowane na magnes). Parametry spektralne kostek (wzbudzenie ; emisja): a. Kostka filtrowa pojedyncza: Wzbudzenie: 480 / 40 nm; Emisja: 527 / 30 nm b. Kostka filtrowa pojedyncza: Wzbudzenie: 560 / 40 nm; Emisja: 630 / 75 nm c. Kostka filtrowa pojedyncza: Wzbudzenie: 620 / 60 nm; Emisja: 700 / 75 nm d. K0stka filtrowa potrójna: Wzbudzenie: 403 / 18 nm, 492 / 18 nm, 575/25nm; Emisja: 456 / 30 nm, 530/ 35nm, 630/60nm

3 MODUŁ KONFOKALNY 7. Zautomatyzowany stolik skanujący o zakresie przesuwu min. 127x83mm, rozdzielczość przesuwu min. 0,7μm, powtarzalność przesuwu < 3μm. 8. Montowany na stoliku przedmiotowym dodatkowy stolik galwanometryczny z możliwością regulacji ogniskowania w osi Z: skok minimalny w osi Z: 20 nm; zakres przesuwu w osi Z: 1500 μm; powtarzalność: 40nm 9. Okulary o powiększeniu 10x i liczbie polowej FN22, z korekcją dioptryjną. 10. Obiektywy o długości optycznej nie większej niż 45 mm o następujących parametrach: klasa / powiększenie / apertura numeryczna / dystans pracy: a. Semi-PlanApochromatyczny / 5x / NA = 0,15 / WD = 13,7 mm b. Semi-PlanApochromatyczny / 10x / NA = 0,30 / WD = 11 mm c. Semi-PlanApochromatyczny / 20x / NA = 0,40 / WD = 6,9 mm, korekcja na grubość szkiełka nakrywkoweggo 0-2mm d. Semi-PlanApochromatyczny / 40x / NA = 0,60 / WD = 3,3-1,9 mm / pierścień korekcyjny dla różnej grubości szkiełek nakrywkowych (lub denek szalek) w zakresie 0-2 mm e. PlanApochromatyczny / 63x / NA = 1,40 / WD = 0,14 mm / immersja olejowa f. PlanApochromatyczny / 100x / NA = 1,40 / WD = 0,13 mm / immersja olejowa 11. Stół antywibracyjny pod mikroskop z granitowym blatem o tłumieniu pasywnym. 12. Stół pod monitory i kontrolery do sterowania pracą mikroskopu i elementów modułu konfokalnego o takiej samej wysokości jak stół antywibracyjny pod mikroskop. 13. Moduł konfokalny z optyką o transmisji powyżej 99% w zakresie widzialnym i podczerwonym od 400 do 1300 nm. 14. Moduł wyposażony w zmotoryzowaną przesłonę konfokalną o regulowanej średnicy w zakresie od 20 do 600 µm z płynną regulacją kroku. 15. Skaner z 3 zwierciadłami skanującymi zapewniający możliwie duże pole skanowania o parametrach: a) Przekątna pośredniej płaszczyzny obrazu do 22 mm b) Płynna regulacja prędkości skanowania w zakresie linii /sekundę c) Prędkość skanowania w formacie 512x512 pikseli minimum 7 ramek/sekundę; a w formacie 512x16 pikseli minimum 84 ramki/sekundę d) Maksymalny format pojedynczego obrazu 8192 x 8192 pikseli (64 megapikseli) e) Obrót obrazu metodą optyczną w zakresie (możliwy dla każdego zoomu sprzętowego) f) Możliwość zastosowania dodatkowego powiększenia (zoom) na skanerze w zakresie nie mniejszym niż 0,75x 48x, płynnie regulowanego. g) Dowolnie definiowany kształt obszaru skanowania. 16. System z czterema wewnętrznymi detektorami spektralnymi o niezależnym ustawianiu wzmocnienia. a) Każdy z detektorów powinien mieć możliwość płynnej regulacji zakresu detekcji (co 1 nm) w zakresie co najmniej nm. Regulacja szerokości pasma detekcji w zakresie od 5 nm do pełnego zakresu detekcji detektora spektralnego (każdego z czterech). b) Trzy detektory spektralne (z czterech) są czułymi detektorami hybrydowymi: hybryda fotopowielacza z katodą GaAsP z fotodiodą lawinową. Możliwość użycia detektorów hybrydowych w trybie zliczania pojedynczych fotonów. c) Dodatkowy fotopowielacz montowany na statywie mikroskopu do akwizycji sygnału światła przechodzącego.

4 STACJA BADAWCZA ORAZ OPROGRAMOWANI E d) Możliwość jednoczesnej rejestracji obrazów na wszystkich zainstalowanych czterech detektorach spektralnych i detektorze do światła przechodzącego oraz możliwości niezależnego sterowania każdego z detektorów. 17. Laser Biały umożliwiający wybór linii wzbudzenia w zakresie nm z dokładnością do 1nm, płynnie regulowany laser z krokiem przesuwania lini - 1 nm, laser pulsacyjny o częstotliwośći 80 MHz, 8 kanałowy kryształ AOTF do regulacji mocy wiązki i wyboru do ośmiu różnych długości linii światła lasera jednocześnie, przysłona Shutter odcinająca światło lasera 18. Laser diodowy 405nm o mocy 50mW 19. Moduł do obrazowania preparatów w wysokiej rozdzielczości: a) możliwość uzyskania rozdzielczości do 120 nm w płaszczyźnie XY b) moduł ma pozwalać na jednoczesne obrazowanie do 4 różnych fluorochromów, bez potrzeby stosowania trybu sekwencyjnego. 20. Stacja badawcza do sterowania pracą mikroskopu konfokalnego i analizy uzyskanych obrazów o parametrach podanych, bądź tożsamych: a) Procesor Intel 10-Core Xeon E V4 lub równoważny b) Pamięć RAM 64 GB c) Karta graficzna NVIDIA Quadro M GB CUDA GPU (3072 rdzeni) lub równoważny d) Dyski SATA SSD o pojemności 512 GB i 256 GB e) Dysk twardy SATA o pojemności 3 TB f) Minimum 10 portów USB, z czego minimum 8 to szybkie porty USB 3.0 g) Monitor LED o przekątnej minimum 31 i rozdzielczości 4K 21. Kontroler umożliwiający manualne sterowanie sześcioma wybranymi zmotoryzowanymi, zautomatyzowanymi funkcjami modułu konfokalnego wraz z 6 wyświetlaczami LCD dla każdej z funkcji. 22. Oprogramowanie do sterowania mikroskopem, akwizycji, obróbki i analizy obrazu o modułowej konstrukcji z następującymi funkcjami: a) W pełni automatyczne konfigurowanie eksperymentów akwizycji fluorescencji wielokanałowej (kanały fluorescencyjne + kanał św. przechodzącego) b) Tryby skanowania: xyz, xzy, xt, xyt, xzt, xyzt, xzyt, xyλ, xzλ, xyλt, xzλt, xyλz, xyzλ - gdzie λ oznacza skan wzdłuż długości fali emisji lub skan wzdłuż długości fali wzbudzenia (z użyciem białego lasera). c) Możliwość skanu sekwencyjnego kilku kanałów w dostępnych 3 trybach: d) przełączanie kanału pomiędzy pojedynczymi liniami zdjęcia / przełączanie kanału pomiędzy zdjęciami / przełączanie kanału pomiędzy stosami zdjęć e) Zapisu zdjęć do wybranych formatów graficznych (tiff, jpeg), filmowych (avi, mpeg4), tekstowych (ascii). f) Możliwość eksportu wszystkich wykonanych i zaznaczonych zdjęć do wybranego formatu graficznego za pomocą jednej komendy. g) Możliwość automatycznego dodawania na każdym zapisywanym obrazie informacji o: skali i dokładnym czasie wykonania zdjęcia. h) Moduł do tworzenia trójwymiarowej wizualizacji próbki z wykonanego na mikroskopie stosu zdjęć preparatu. Tworzenie animacji wykonanej wizualizacji 3D. i) Moduł do analizy kolokalizacji fluorochromów na 2 lub 3-kanałowych obrazach przy użyciu fluorogramu j) Oprogramowanie do pomiarów geometrycznych, nanoszenia wskaźników, skali, opisów

5 k) Prezentacja obrazu w skali szarości, dowolny wybór i modyfikacja tablic kolorów (LUT) l) Pomiar intensywności światła fluorescencji wzdłuż dowolnej linii, krzywej oraz w dowolnie wybranym obszarze m) Pakiet oprogramowania pozwalający na zaprogramowanie doświadczenia n) Pakiet oprogramowania ułatwiający optymalną separację barwników fluorescencyjnych o) Pakiet oprogramowania umożliwiający wykonywanie doświadczeń takich jak FRAP, FLIP, FRET oraz wykonywanie analizy uzyskanych wyników p) Pakiet oprogramowania pozwalający na automatyczną analizę pomiarów morfometrycznych oraz parametrów intensywności jak i łatwy eksport danych do pliku xls. q) Pakiet oprogramowania umożliwiający wykonywanie pomiarów morfometrycznych z łatwym eksportem danych do pliku xls. r) Możliwość nieodpłatnego ściągnięcia ze strony internetowej producenta podstawowej wersji tego oprogramowania, które by umożliwiało: przeglądanie wykonanych na mikroskopie zdjęć, wykonywanie pomiarów morfometrycznych na zdjęciach, pomiarów intensywności, obróbki graficznej obrazu oraz dodawanie adnotacji na wykonane zdjęcia. Możliwość zainstalowania tej wersji oprogramowania na nieograniczonej liczbie komputerów. 23. Dodatkowa stacja robocza z licencją na oprogramowaniem offline do analizy i obróbki obrazu o parametrach: a) Zestaw komputerowy o parametrach umożliwiających sprawną pracę oprogramowania, nie mniejszych niż: procesor procesor Intel Xeon E v3 (lub tożsamy); pamięć RAM 32GB (4x8GB); dwa dyski twarde: SSD 256GB oraz HDD 4TB; karta graficzna nvidia K620 z pamięcią 2GB; mysz optyczna; klawiatura; monitor LED o rozdzielczości FullHD i przekątnej ekranu powyżej 27. b) Oprogramowanie kompatybilne z programem do obsługi mikroskopu konfokalnego z modułem do obróbki i analizy obrazu 24. Dodatkowe oprogramowanie kompatybilne z programem do obsługi mikroskopu konfokalnego umożliwiające prace przy różnych stacjach roboczych. Wartość pakietu z Vat słownie.. Uwaga! Wykonawca zobowiązany jest do padania jednej wartości parametru Okres gwarancji dla wszystkich składowych Pakietu. Uwaga! W cenie ofertowej Wykonawca zobowiązany jest do dostawy, montażu oraz uruchomienia urządzenia w miejscu wskazanym przez Zamawiającego w jego siedzibie w Krakowie przy ul. Smętnej 12. Uwaga! W cenie ofertowej Wykonawca zobowiązany jest do przeprowadzenia instruktażu dotyczącego obsługi zaoferowanego sprzętu.

6 Pakiet 2 - Zakup i dostawa systemu mikroskopii fluorescencyjnej z modułem oświetlenia strukturalnego do Instytutu Farmakologii Polskiej Akademii Nauk w Krakowie przy ul. Smętnej 12 w ramach grantu NCN OPUS 14 nr 2017/27/B/NZ4/01527, pt. Wpływ perinatalnej ekspozycji na selektywne inhibitory wychwytu zwrotnego serotoniny na strukturę i funkcje neuronów grzbietowego jądra szwu myszy finansowanego przez Narodowe Centrum Nauki. Lp. Nazwa i opis przedmiotu zamówienia Producent / Nazwa handlowa / Nr katalogowy Ilość Cena jednostkowa bez w % w zł Wartość bez Wartość z Okres gwarancji min. 12 miesięcy (podać) 1. Zakup i dostawa systemu mikroskopii fluorescencyjnej z modułem oświetlenia strukturalnego do Instytutu Farmakologii Polskiej Akademii Nauk w Krakowie przy ul. Smętnej 12 w ramach grantu NCN OPUS 14 nr 2017/27/B/NZ4/01527, pt. Wpływ perinatalnej ekspozycji na selektywne inhibitory wychwytu zwrotnego serotoniny na strukturę i funkcje neuronów grzbietowego jądra szwu myszy finansowanego przez Narodowe Centrum Nauki. 1 komplet Opis przedmiotu zamówienia poniżej. Opis przedmiotu zamówienia: Element Opis Optyka Korygowana do nieskończoności Długość optyczna obiektywów 45 mm lub krótsza

7 Statyw Uchwyt rewolwerowy obiektywów minimum 6-cio gniazdowy, automatyczny, wyposażony w gniazda dla suwaków DIC dla każdego obiektywu, układ automatycznego rozpoznawania zamontowanych obiektywów bez wstępnego programowania Automatyczne ustawianie ostrości w osi Z. Krok 10 nm lub mniejszy. Osobne współosiowe śruby mikro i makrometryczne. Wbudowany wyświetlacz ciekłokrystaliczny dotykowy, umożliwiający pełne sterowanie mikroskopem, jego konfigurację dla różnych użytkowników, zapamiętywanie i wyświetlanie stanu. Wbudowane w statyw minimum następujące gniazda: USB, sieciowe TCPIP, RS 232 Możliwość wbudowania w statyw mikroskopu dodatkowego portu kamery o podziale światła innym niż port wbudowany w tubus binokularny Wbudowany system zarządzający ustawieniami oświetlenia i przesłon w zależności od powiększenia i techniki obserwacji Oświetlacz światła Oświetlacz z diodami LED przechodzącego Gniazdo do synchronicznego sterowania oświetlaczem Przesłona polowa Oświetlacz spełniający wszystkie wymogi konieczne do stosowania oświetlenia wg. Koehlera Tubus Fototubus binokularowy z regulacją rozstawu źrenic, kąt 30 stopni, pole widzenia minimum 25 mm, z możliwością podłączenia kamery cyfrowej, z podziałem światła 100:0 / 30:70 / 0:100 Okulary Powiększenie 10x Szerokopolowe, pole widzenia minimum 25 mm Muszle oczne wykonane z tworzywa Obiektywy 10x /N.A. 0,30 (semiplanapochromatyczny o podwyższonym kontraście) 20x /N.A. 0,80 (planapochromatyczny) 40x /N.A. 0,75 (semiplanapochromatyczny o podwyższonym kontraście) 63x /N.A. 1,40 (planapochromatyczny, olejowy) 100x /N.A. 1,40 (planapochromatyczny, olejowy) Stolik skaningowy Stolik automatyczny, zakres ruchu co najmniej 75 x 50 mm Sterowanie przy pomocy załączonego joysticka oraz poprzez oprogramowanie Uchwyt preparatów Uchwyt uniwersalny do preparatów oraz szalek Petriego Kondensor Kondensor aplanatyczno - achromatyczny, co najmniej ośmiopozycyjny, automatyczny, N.A. 0,9, do obserwacji z obiektywami 1x x Automatyczna/zmotoryzowana przesłona aperturowa

8 Kondensor spełniający wszystkie wymogi konieczne do stosowania oświetlenia wg. Koehlera Fluorescencja Apochromatyczny układ oświetlenia fluorescencyjnego z przysłonami polową i aperturową Rewolwer filtrów fluorescencyjnych, minimum 6-cio pozycyjny, automatyczne rozpoznawanie zainstalowanych filtrów FL bez wstępnego programowania Oświetlacz z diodami LED Możliwość wbudowania min. 7 diod Osobne diody wzbudzające 630 nm, 590 nm, 555 nm, 511 nm, 475 nm, 430 nm, 385 nm Stabilizacja intensywności świecenia poprzez pracującą w pętli diodę monitorującą (ciągły pomiar intensywności wzbudzenia) Regulacja intensywności świecenia w zakresie 1% 100% Sterowanie przez panel mikroskopu oraz przez oprogramowanie Drugi oświetlacz fluorescencyjny o mocy 120 Wat, z lampą metalohalidkową, podłączany poprzez światłowód Zestaw filtrów fluorescencyjnych poczwórny, do DAPI FITC TRITC i CY5 Zestaw filtrów fluorescencyjnych potrójny, do CFP YFP i mcherry Zestaw filtrów fluorescencyjnych do egfp Wymienione zestawy filtrów o wysokiej transmisji (powyżej 95%) Moduł semi konfokalny Oparty o zasadę oświetlenia strukturalnego do wykonywania Usuwanie rozproszonej fluorescencji spoza płaszczyzny ostrości przekrojów optycznych Możliwość wykonywanie skrawków optycznych i rekonstrukcji trójwymiarowej Min. 3 rodzaje siatek optycznych dostosowanych do różnych obiektywów Automatyczne wymienianie siatek optycznych do pracy z różnymi obiektywami Oprogramowanie Akwizycja i obróbka obrazów mikroskopowych w oparciu o 64-ro bitowy system operacyjny (parametry minimalne) Interfejs użytkownika przełączany (wersja jasna i ciemna) w celu dopasowania do warunków oświetlenia Interfejs użytkownika płynnie skalowany w celu dopasowania do używanego monitora Wszystkie funkcjonalne elementy wyświetlane w trybie zredukowanym (dla początkujących) lub w trybie pełnym Obsługa mikroskopów automatycznych, kodowanych i manualnych Konfiguracja, zapisywanie i wczytywanie złożonych eksperymentów akwizycji obrazów Nagrywanie sekwencji obrazów / filmów poprzez funkcje START/STOP Tworzenie konfiguracji sprzętowych przy pomocy graficznego diagramu drogi światła w mikroskopie Łączenie sekwencji poleceń w celu tworzenia konfiguracji sprzętowych mikroskopu W pełni automatyczne konfigurowanie eksperymentów akwizycji fluorescencji wielokanałowej (kanały fluorescencyjne + kanał św. przechodzącego) w

9 mikroskopach automatycznych Wybór fluorochromów z bazy danych zawierającej co najmniej 500 barwników (z informacjami długości fal wzbudzenia i emisji) Proponowanie przez oprogramowanie do trzech strategii akwizycji (największa czułość, największa szybkość, najlepszy kompromis pomiędzy czułością i szybkością akwizycji) Sugerowanie źródła wzbudzenia, filtrów fluorescencyjnych, wyświetlanie graficznego obrazu nałożonej charakterystyki filtra na widmo fluorochromu Akwizycja obrazów z kamer monochromatycznych i kolorowych do 16 bitów / 3 x 16 bitów Ustawianie parametrów wyświetlania bez ingerowania w wartość pikseli Automatyczne skalowanie (zależnie od typu mikroskopu) Zapisywanie historii akwizycji w pliku obrazowym Pełna integracja ze środowiskiem wielu użytkowników (zapisywanie osobno dla użytkowników danych i ustawień interfejsu) Definiowane przez użytkownika paski poleceń, zapisywanie w pliku ustawień środowiska graficznego i narzędzi Import obrazów (BMP, TIF, JPG, GIF, PNG). Eksport obrazów (BMP, GIF, JPG, PNG, TIFF, HDP) Eksport filmów (AVI, Windows Media video formats) Eksport obrazów i filmów w trybie wsadowym Interaktywne pomiary: długość, powierzchnia, wymiary prostokąta, obwód, wartości szarości, kąt Paski skali Adnotacje tekstowe Obróbka obrazów: kontrast, jasność, gamma, kolorystyka, wygładzanie, wyostrzanie, korekcja geometryczna Przeglądarka obrazów Pomiary na histogramach Pomiary na profilach Moduł pomiarów interaktywnych Moduł fluorescencji wielokanałowej Moduł składania manualnego obrazów w osiach XY Moduł składania automatycznego obrazów w osiach XY Moduł do akwizycji serii czasowych Moduł rozszerzonej ostrości działający przez składanie obrazów w osi Z Moduł akwizycji skrawków optycznych w osi Z

10 Moduł zaawansowanej wizualizacji i analizy 3D i 4D, rendering metodą śledzenia promieni, rendering powierzchni, interaktywne pomiary 3D, zoptymalizowanie zarządzanie danymi, które przekraczają pojemność pamięci graficznej systemu Moduł do automatycznego ustawiania ostrości Moduł do dekonwolucji 3D, dekonwolucja za pomocą teoretycznego oraz zmierzonego doświadczalnie PSF, dekonwolucja danych ze standardowego mikroskopu fluorescencyjnego, mikroskopu fluorescencyjnego z modułem semikonfokalnym oraz z mikroskopów konfokalnych, pełne wykorzystanie procesora karty graficznej GPU Kamera cyfrowa Przetwornik: rozmiar 1 lub większy monochromatyczna Rozdzielczość: 2752 (H) x 2208 (V) = 6 megapikseli lub większa Digitalizacja co najmniej: 14 bitów / 39 MHz Dynamika: 2500: 1 lub lepsza Czas integracji: od 1 ms do 60 s lub większy zakres Interface: USB 3.0 System chłodzenia Tryb NIR Zakres czułości spektralnej: 400 nm 1000 nm lub większy Interface optyczny: C-mount Dodatkowy łącznik kamery z systemem zmiany powiększeń, wyposażony w elementy optyczne o powiększeniu 1,0x, 1,6x, 4,0x i 5,0x Zestaw komputerowy Wymagania minimalne: Procesor: 2 x Intel Xeon E Core 3.00 GHz lub inny o co najmniej takiej samej mocy obliczeniowej Karta graficzna: 8GB Pamięć RAM: 64 GB DDR MHz ECC Dyski twarde: 4 x 2 TB SATA 7200 rpm (pracujące jako 4 TB RAID 10 HDD) Dysk optyczny: DVD +/- RW System operacyjny Monitor LCD min. 24 Wyposażenie Podstawa antywibracyjna Zestaw ochronny antystatyczny (pokrowiec, osłona na okulary, osłona na oświetlacz światła przechodzącego) Media immersyjne do obiektywów z immersja olejową Preparaty kalibracyjne do modułu semi konfokalnego

11 Komplet narzędzi Stabilny stół wyposażony w wibroizolatory Platforma antywibracyjna pod mikroskop Wartość pakietu z Vat słownie.. Uwaga! Wykonawca zobowiązany jest do padania jednej wartości parametru Okres gwarancji dla wszystkich składowych Pakietu. Uwaga! W cenie ofertowej Wykonawca zobowiązany jest do dostawy, montażu oraz uruchomienia urządzenia w miejscu wskazanym przez Zamawiającego w jego siedzibie w Krakowie przy ul. Smętnej 12. Uwaga! W cenie ofertowej Wykonawca zobowiązany jest do przeprowadzenia instruktażu dotyczącego obsługi zaoferowanego sprzętu.