Molekularna identyfikacja gatunków z rodzaju Abies na podstawie polimorfizmu DNA mitochondrialnego

Podobne dokumenty
Postglacjalna migracja jodły pospolitej (Abies alba Mill.) do Polski analiza na podstawie polimorfizmu mitochondrialnego DNA

Mitochondrialna Ewa;

Genetyka, materiały dla studentów Pielęgniarstwa

Identyfikacja osobnicza drzew leśnych za pomocą markerów DNA

Ćwiczenie 3. Amplifikacja genu ccr5 Homo sapiens wykrywanie delecji Δ32pz warunkującej oporność na wirusa HIV

Ćwiczenie 2. Identyfikacja płci z wykorzystaniem genu amelogeniny (AMGXY)

Biologia medyczna, materiały dla studentów

ZESZYTY PROBLEMOWE POSTĘPÓW NAUK ROLNICZYCH 2010 z. 555:

Autor: dr Mirosława Staniaszek

Polodowcowa historia jodły pospolitej (Abies alba Mill.) w Polsce jako efekt migracji z różnych ostoi plejstoceńskich dotychczasowy stan wiedzy

tel Cena Cena Cena szt szt szt.

Badanie próbek żywności na obecność Genetycznie Zmodyfikowanych Organizmów. Rozdział 9

ROŚLINY IGLASTE. 2/ cm. 2/ cm. 1,90 zł 2/ cm. 2/ cm

PL B1. Sposób amplifikacji DNA w łańcuchowej reakcji polimerazy za pomocą starterów specyficznych dla genu receptora 2-adrenergicznego

Polimorfizm genu mitochondrialnej polimerazy gamma (pol γ) w populacjach ludzkich Europy

Metody badania polimorfizmu/mutacji DNA. Aleksandra Sałagacka Pracownia Diagnostyki Molekularnej i Farmakogenomiki Uniwersytet Medyczny w Łodzi

Anna Litwiniec 1, Beata Choińska 1, Aleksander Łukanowski 2, Żaneta Świtalska 1, Maria Gośka 1

TaqNova-RED. Polimeraza DNA RP20R, RP100R

Zabezpieczanie, pobieranie oraz przechowywanie drewna i innych. potrzeby analiz DNA

Analizy DNA drzew leśnych w Polsce stan i perspektywy wykorzystania przez organy procesowe

Wpływ struktury krajobrazu na przestrzenną zmienność genetyczną populacji myszy leśnej Apodemus flavicollis w północno wschodniej Polsce

Zastosowanie markerów RAPD do określenia podobieństwa genetycznego odmian jęczmienia ozimego (Hordeum vulgare L.)

7. Metody molekularne jako źródło informacji botanicznej i lichenologicznej

METODY MOLEKULARNE STOSOWANE W TAKSONOMII

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

Genetyczne modyfikowanie organizmów Kierunek OCHRONA ŚRODOWISKA, II rok semestr letni 2015/16

SPIS TREŚCI GEOGRAFIA JAKO NAUKA 9

MOLEKULARNE PODSTAWY ODPORNOŚCI MIOTŁY ZBOŻOWEJ (APERA SPICA-VENTI L.) NA HERBICYDY SULFONYLOMOCZNIKOWE

TaqNovaHS. Polimeraza DNA RP902A, RP905A, RP910A, RP925A RP902, RP905, RP910, RP925

Mikrosatelitarne sekwencje DNA

AmpliTest Babesia spp. (PCR)

ĆWICZENIE 1 i 2 Modyfikacja geu wołowej beta-laktoglobuliny przy użyciu metody Overlap Extension PCR (wydłużania nakładających się odcinków)

Inżynieria Genetyczna ćw. 3

SZCZEGÓŁOWE WYMAGANIA EDUKACYJNE Z GEOGRAFII DLA KLASY II W ROKU SZKOLNYM 2016/2017

Klonowanie molekularne Kurs doskonalący. Zakład Geriatrii i Gerontologii CMKP

ZAĆMIENIA 22. Zaćmienia Słońca

Agata Kodroń, Edyta Rychlicka, Iwona Milewska, Marcin Woźniak, Tomasz Grzybowski WSTĘP

Ampli-LAMP Babesia canis

Pochodzenie jodły pospolitej (Abies alba Mill.) z Nadleśnictwa Osusznica w świetle badań DNA cytoplazmatycznego ostoja jodły sudeckiej na Pomorzu?

PL B1. UNIWERSYTET PRZYRODNICZY W LUBLINIE, Lublin, PL BUP 26/11

Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6: wykrywanie liczby kopii genu

Zestaw do wykrywania Anaplasma phagocytophilum w kleszczach, krwi i hodowlach komórkowych

Zastosowanie metody RAPD do różnicowania szczepów bakteryjnych

Ćwiczenie 3 Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6 metodą PCR w czasie rzeczywistym (rtpcr) przy użyciu sond typu TaqMan

Księgarnia PWN: Joanna R. Freeland - Ekologia molekularna

Monitoring genetyczny populacji wilka (Canis lupus) jako nowy element monitoringu stanu populacji dużych drapieżników

Zadanie 2.4 Poszerzanie puli genetycznej buraka cukrowego przez doskonalenie procesu gynogenezy oraz podnoszenie odporno

Zestaw do wykrywania Babesia spp. i Theileria spp. w kleszczach, krwi i hodowlach komórkowych

Streszczenie rozprawy doktorskiej

Farmakogenetyka Biotechnologia Medyczna I o

PCR. Aleksandra Sałagacka

Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6: wykrywanie liczby kopii genu

Wysoko wiarygodne metody identyfikacji osób

ZAĆMIENIA. Zaćmienia Słońca

SPECYFIKACJA TECHNICZNA AGAROZ

Transformacja pośrednia składa się z trzech etapów:

ZAĆMIENIA 22. Zaćmienia Słońca

PCR bez izolacji testujemy Direct PCR Kits od ThermoFisher Scientific

Ćwiczenie 12. Diagnostyka molekularna. Poszukiwanie SNPs Odczytywanie danych z sekwencjonowania. Prof. dr hab. Roman Zieliński

Wprowadzenie do genetyki sądowej. Materiały biologiczne. Materiały biologiczne: prawidłowe zabezpieczanie śladów

Zakres zmienności i współzależność cech owoców typu soft flesh mieszańców międzygatunkowych Capsicum frutescens L. Capsicum annuum L.

Analiza mutacji genów EGFR, PIKCA i PTEN w nerwiaku zarodkowym

Metody odczytu kolejności nukleotydów - sekwencjonowania DNA

Glimmer umożliwia znalezienie regionów kodujących

PL B1. UNIWERSYTET PRZYRODNICZY W LUBLINIE, Lublin, PL BUP 04/14. SYLWIA OKOŃ, Dąbrowica, PL KRZYSZTOF KOWALCZYK, Motycz, PL

Ocena dopuszczająca Ocena dostateczna Ocena dobra Ocena bardzo dobra Ocena celująca. Uczeń potrafi:

Geografia Bliżej geografii Część 3 Przedmiotowy system oceniania. Ocena dopuszczająca Ocena dostateczna Ocena dobra Ocena bardzo dobra Ocena celująca

GENETYKA POPULACYJNA LOCUS D19S433 W REGIONIE POLSKI PÓŁNOCNEJ POPULATION GENETICS OF THE D19S433 LOCUS IN THE NORTHERN POLAND

Konstruowanie drzew filogenetycznych. Magda Mielczarek Katedra Genetyki Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu

Zakład Biologii Molekularnej Materiały do ćwiczeń z przedmiotu: BIOLOGIA MOLEKULARNA

ANNALES UNIVERSITATIS MARIAE CURIE-SKŁ ODOWSKA LUBLIN POLONIA

Rocz. Nauk. Zoot., T. 37, z. 2 (2010) Identyfikacja sekwencji genu kodującego dehydrogenazę NADH 1 u sarny

Rycina 1. Zasięg i zagęszczenie łosi (liczba osobników/1000 ha) w Polsce w roku 2010 oraz rozmieszczenie 29 analizowanych populacji łosi.

Dr hab.n.med. Renata Jacewicz

Rozkład tematów z geografii w Gimnazjum nr 53

w klasie pierwszej gimnazjum Nr lekcji Sugerowany temat lekcji Jednostki tematyczne w podręczniku Planeta Nowa 1 Dział: Podstawy geografii

Szkółka Drzew i Krzewów Ozdobnych CIEKAWEIGLAKI CENNIK HURTOWY 2014

Szkółka Drzew i Krzewów Ozdobnych CIEKAWEIGLAKI CENNIK DETALICZNY 2014

Polimorfizm. sekwencji mitochondrialnego DNA gatunku Canis familiaris - aspekty filogenetyczne i identyfikacyjne. Anna Czarnecka

Uczeń potrafi: przedstawić cechy. środowiska przyrodniczego. wyróżniające Europę na tle innych kontynentów. wyjaśnić przyczyny. zróżnicowania ludów

Ampli-LAMP Goose Parvovirus

PODSTAWY BIOINFORMATYKI 11 BAZA DANYCH HAPMAP

Zestaw do wykrywania Chlamydia trachomatis w moczu lub w kulturach komórkowych

WYKRYWANIE OBECNOŚCI BAKTERII Z RODZAJU LISTERIA W ŻYWNOŚCI

Geografia Bliżej geografii Część 3 Przedmiotowy system oceniania. Ocena dopuszczająca Ocena dostateczna Ocena dobra Ocena bardzo dobra Ocena celująca

SZKOŁA PODSTAWOWA IM. JANA PAWŁA II W DOBRONIU Wymagania edukacyjne na poszczególne oceny GEOGRAFIA KLASA 3 GIMNAZJUM

Przedmiotowy system oceniania

dr hab. n. med. Czesław Żaba Kierownik Katedry i Zakładu Medycyny Sądowej Uniwersytetu Medycznego im. Karola Marcinkowskiego w Poznaniu

GENOMIKA. MAPOWANIE GENOMÓW MAPY GENOMICZNE

Wieloletnia dynamika zarażeń, opis i charakterystyka nowego gatunku Babesia i współwystępujących pasożytów krwi u gryzoni z Masywu Synaju (Egipt)

WYKRYWANIE MICRODOCHIUM NIVALE VAR. NIVALE I M. NIVALE VAR. MAJUS W PSZENICY OZIMEJ UPRAWIANEJ W RÓŻNYCH SYSTEMACH PRODUKCJI

С R A C OV I E N S I A

MIEJSCA, W KTÓRYCH ZNAJDZIESZ DRZEWA PAULOWNI

Markery klasy II -Polimorfizm fragmentów DNA (na ogół niekodujących): - RFLP - VNTR - RAPD

3. Uzupełnij luki w zdaniach. Średnia gęstość zaludnienia Europy wynosi (1)... Najmniejsza...

Ciekawostki o owocach. Klaudia Chyczewska

PCR - ang. polymerase chain reaction

Wydział Biologii Zakład Taksonomii Roślin

INWENTARYZACJA DENDROLOGICZNA

Transkrypt:

sylwan 159 (8): 675 683, 2015 Molekularna identyfikacja gatunków z rodzaju Abies na podstawie polimorfizmu DNA mitochondrialnego Molecular identification of species from Abies genus based on the mitochondrial DNA polymorphism ABSTRACT Pawlaczyk E. M., Staniak J., Maliński T., Bobowicz M. A. 2015. Molekularna identyfikacja gatunków z rodzaju Abies na podstawie polimorfizmu DNA mitochondrialnego. Sylwan 159 (8): 675 683. The plant material was collected on 34 individuals growing in the Dendrological Garden of Poznań University of Life Sciences (52 25'32,95"N 16 53'39,83"E) and Botanical Garden of Adam Mickie wicz University in Poznań (52 25'11,70"N 16 52'55,07"E). The species for this study originated from Europe, Asia Minor, central and eastern Asia and North America and included: Abies alba, Abies cephalonica, Abies cilicica, Abies equi trojani, Abies sibirica, Abies koreana, Abies pinsapo, Abies insignis, Abies bornmulleriana, Abies homolepsis, Abies holophylla, Abies grandis, Abies concolor, Abies concolor var. violacea, Abies concolor var. lowiana, Abies nordmanniana, Abies arnoldiana, Abies nephrolepis and Abies balsamea. The aim of this study was to define the species haplotypes (the length of allele) on the basis of nad5 4 mitochondrial DNA marker detected by capillary electrophoresis. This marker has been suggested as an easy to use tool to distinguish species of the Abies genus and it could be species specific. Seven different haplotypes were identified. The first one appears in the species from Europe, Asia and North America. The second one was detected in firs from Europe and Asia Minor. A. cephalonica and A. sibirica were identified by the third haplotype, which occurs also in A. alba from the Balkan region. The fourth haplotype is characteristic for species from Asia and North America. The fifth and sixth haplotypes were identified in A. pinsapo and A. numidica. The seventh haplotype was detected only in A. holophylla. Applied marker is a very useful for verification of fir species especially allopatric species, less for parapatric ones. This marker is more helpful to exclude the species than to precisely identify them. KEY WORDS Abies species, haplotype, capillary electrophoresis, mitochondrial marker Addresses Ewa M. Pawlaczyk (1) e mail: ewapaw@amu.edu.pl Julia Staniak (1), Tomasz Maliński (2), Maria A. Bobowicz (1) (1) Zakład Genetyki, Uniwersytet im. Adama Mickiewicza; ul. Umultowska 89, 61 614 Poznań (2) Katedra Botaniki Leśnej, Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu; ul. Wojska Polskiego 71D, 60 625 Poznań Wstęp Czasami trudno jest odróżnić gatunki blisko spokrewnione morfologicznie. Dotyczy to również gatunków drzew leśnych należących do tego samego rodzaju. Przykładem mogą być euroazja tyckie gatunki z rodzaju Abies. W warunkach naturalnych ich zasięgi występowania rzadko się po krywają (gatunki allopatryczne), z wyjątkiem A. alba i A. cephalonica (gatunki parapatryczne),

676 co sprawia, że ich identyfikacja, oparta między innymi na wielkości i budowie igieł, wielkości, kolorze i kształcie szyszek oraz pokroju i wielkości drzewa, jest prosta. Natomiast gdy gatunki jodeł rosną na tym samym terytorium, w tych samych warunkach klimatycznych i siedlisko wych, identyfikacja gatunku może być problematyczna. Jeszcze trudniej jest określić gatunek na podstawie struktury pyłku, nasion, a przede wszystkim tkanek, które zostały pofragmento wane, zdegradowane lub zmienione (fragmenty igieł lub drewna). Dlatego w celu identyfikacji taksonomicznej gatunku ważne jest stosowanie szybkiej, taniej i wiarygodnej techniki identy fikacji gatunków, jaką jest np. analiza DNA pochodzącego z organelli komórkowych. Geny i obszary niekodujące organellowego DNA są uważane za konserwatywne oraz wolno ewoluujące i dlatego są często używane jako markery do badania zależności filogenetycznych pomiędzy gatunkami. Ziegenhagen i in. [2005] zaproponowali jako marker diagnostyczny dla gatunków z rodzaju Abies czwarty intron mitochondrialnego genu dehydrogenazy NAD w podjednostce 5 (nad5 4). Zbadali oni haplotypową specyficzność tego genu dla 8 gatunków jodeł rosnących w Basenie Morza Śródziemnego (A. alba, A. bornmulleriana, A. cephalonica, A. cilicica, A. nordmanniana, A. equi trojani, A. numidica, A. pinsapo) oraz jednego gatunku z Ameryki Północnej (A. concolor). Wykryli 6 różnych haplotypów: 1 u A. concolor, a 5 pozostałych u jodeł z Basenu Morza Śród ziemnego 2 różne haplotypy u A. alba i A. cephalonica, oraz 1 haplotyp wspólny dla tych dwóch gatunków. Wykryli również osobny haplotyp dla A. cilicica oraz 1 wspólny haplotyp dla A. pinsapo i A. numidica. Piąty haplotyp był wspólny dla A. cephalonica, A. bornmuelleriana, A. equi troiani oraz A. nordmanniana. Różnice w sekwencji haplotypów u gatunków jodeł z Basenu Morza Śródziemnego wynikały głównie ze wstawienia lub usunięcia dużego fragmentu genu, a nie ze wstawienia lub usunięcia pojedynczego nukleotydu (za wyjątkiem A. pinsapo i A. numidica). Do rodzaju Abies należy od 48 do 55 gatunków zimozielonych drzew. Jodły można spotkać w górach Północnej i Środkowej Ameryki, Europy i Azji, a także w północnej Afryce. Są to drzewa długowieczne, żyjące do 700 800 lat, silnie zróżnicowane wysokością: od 10 m (A. koreana) do na wet 100 m (A. grandis). Znaczne zróżnicowanie wykazują również pierśnice: od 50 cm (A. koreana), przez 3 m (A. spectabilis), do nawet 5 m (A. grandis). Pomimo dużej zmienności większość gatun ków mieści się w granicach od 30 do 50 m wysokości i od 1 do 1,5 m pierśnicy [Boratyński 1983]. Jodły są cenne ze względów użytkowych (ich drewno stanowi cenny surowiec), jak i deko racyjnych niektóre gatunki uprawiane są na choinki ze względu na bardzo regularną budowę koron, a rosnąc swobodnie, długo utrzymują najniższe gałęzie. Rodzaj Abies należy do rodziny Pinaceae, klasy Coniferae. Po sosnach najwięcej gatunków liczą jodły zarówno w obrębie rodziny, jak i całej klasy iglastych [Boratyński 1983]. Pierwsze próby klasyfikacji jodeł były prowadzone pod koniec XIX wieku. Na uwagę według Boratyń skiego [1983] zasługują monografie systematyczne rodzaju Abies sporządzone między innymi przez Franco, Matzenko oraz Liu. Poniżej przedstawiony jest podział zaproponowany przez Farjon i Rushforth [1989] oraz Farjon [2010] wraz z miejscem występowania gatunków rodzaju Abies Mill.: sekcja: Abies Miller (Abies alba jodła pospolita, Abies cephalonica jodła grecka, Abies cilicica jodła syryjska, Abies nebrodensis jodła sycylijska, Abies nordmanniana jodła kaukaska, A. borisii regis jodła króla Borysa) środkowa, południowa i wschod nia Europa, Azja Mniejsza; sekcja: Piceaster Spach em. Farjon et Rushforth (Abies numidica jodła numidyjska, jodła algierska, Abies pinsapo jodła hiszpańska) południowa Hiszpania, północna Afryka;

Molekularna identyfikacja gatunków z rodzaju Abies 677 sekcja: Bracteata Engelm em. Sargent (Abies bracteata jodła nadobna) południowa Kali fornia, Ameryka Północna; sekcja: Momi Franco wschodnia i środkowa Azja, Himalaje na niższych wysokościach n.p.m.: podsekcja: Homolepoides (Franco) Farjon et Rushforth (Abies homolepis jodła nikko, jodła nikkońska, Abies recurvata, A. kawakamii), podsekcja: Firmae (Franco) Farjon et Rushforth (Abies beshanzuensis, Abies firma jodła japońska), podsekcja: Halophyllae Farjon et Rushforth (Abies chensiennsis, Abies holophylla jodła mandżurska, Abies pindrow, Abies ziyuanensis); sekcja: Amabilis (Matzenko) Farjon et Rushforth (Abies amabilis jodła wonna, Abies mariesii) góry wybrzeża Oceanu Spokojnego, Ameryka Północna, Japonia; sekcja: Pseudopicea Hockel em. Farjon et Rushforth Chiny, Himalaje, na wyższych wysokościach n.p.m.: podsekcja: Delavayianae Farjon et Rushforth (Abies delavayi jodła Delaveya, Abies densa, Abies fabri, Abies fargesii, Abies fanjingsbanensis, Abies forrestii, Abies spectabilis, Abies yuanbaoshanensis), podsekcja: Squamatae E. Murray (Abies squamata); sekcja: Balsamea Engelm. em. Farjon et Rushforth tajga i borealna Azja, Ameryka Północna, wysokie góry dalej na południe: podsekcja: Laterales Patschke em. Farjon et Rushforth (Abies balsamea jodła balsa miczna, Abies lasiocarpa jodła górska, Abies sibirica jodła syberyjska, podsekcja: Medianae Patschke em. Farjon et Rushforth (Abies fraseri jodła Frasera, Abies koreana jodła koreańska, Abies nephrolepis jodła wiotka, jodła białokora, Abies sachalinensis jodła sachalińska, Abies veitchii jodła Veitcha); sekcja: Grandis Engelm. em. Farjon et Rushforth (Abies concolor jodła kalifornijska, jodła jednobarwna, Abies durangensis, Abies grandis jodła olbrzymia, Abies guatalensis, Abies lowiana jodła Lowa) zachodnia Ameryka Północna do Meksyku i Gwa temali, na północy niziny, średnie wysokości n.p.m. na południu; sekcja: Oiamel Franco Środkowy Meksyk na wyższych wysokościach n.p.m.: podsekcja: Religiosae (Matzenko) Farjon et Rushforth (Abies religiosa, Abies vejarii), podsekcja: Hickelianae Farjon et Rushforth (Abies hickelii, A. hidalgensis); sekcja: Nobilis Engelm. (Abies magnifica jodła wspaniała, Abies procera jodła szlachetna) zachodnia Ameryka Północna, głównie Oregon, Kalifornia i Waszyngton. Celem niniejszej pracy jest przetestowanie oraz wykrycie możliwych haplotypów dla 20 gatun ków jodeł występujących w Europie, Azji oraz Ameryce Północnej na podstawie markera mito chondrialnego nad5 4. Zbadano okazy rosnące w Ogrodzie Botanicznym Uniwersytetu im. Adama Mickiewicza oraz Ogrodzie Dendrologicznym Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu. Materiał i metody Materiałem roślinnym były igły zebrane z 20 gatunków jodeł rosnących w Ogrodzie Botanicznym Uniwersytetu im. Adama Mickiewicza (52 25'11,70"N 16 52'55,07"E) oraz Ogrodzie Dendrolo gicznym Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu (52 25'32,95"N 16 53'39,83"E). W sumie przebadano 34 drzewa (tab.). Wykonano również zdjęcia długopędów zbadanych gatunków, dla ukazania mogących się pojawić trudności w identyfikacji gatunku (ryc. 1 3).

678 Z igieł izolowano DNA metodą Doyle i Doyle [1990] na buforze ATMAB (akryltrimethylo amonnium bromide). Reakcje PCR wykonano dla markera mitochondrialnego czwartego intronu mitochondrialnego genu dehydrogenazy NAD w podjednostce 5 (nad5 4) w termocyklerze MultiGene Gradient Thermal Cycler firmy LabNet. Do amplifikacji użyto następujących sek wencji starterów: 5 GGACAATGACGATCCGAGATA 3 i 5 CATCCCTCCCATTGCATTAT 3 Tabela Haplotyp markera mitochondrialnego nad5 4, długość allela i pochodzenie (EA Europa i Azja Mniejsza, A środkowa i wschodnia Azja, NA Ameryka Północna) przebadanych drzew z rodzaju Abies Haplotype of nad5 4 mitochondrial marker, allele length and origin (EA Europe and Asia Minor, A central and eastern Asia, NA North America of studied trees from Abies genus Lp. Gatunek Haplotyp Długość allela [pz] Pochodzenie Species Haplotype Allele length [bp] Origin Ogród Dendrologiczny Uniwersytetu Przyrodniczego w Poznaniu Dendrological Garden of Poznań University of Life Sciences 1 Abies alba 1 232 EA 2 Abies cephalonica 2 339 EA 3 Abies cilicica 2 339 EA 4 Abies equi trojani 2 339 EA 5 Abies sibirica 4 337 A 6 Abies koreana 1 232 A 7 Abies pinsapo 5 218 EA 8 Abies insignis 2 339 EA 9 Abies bornmulleriana 2 339 EA 10 Abies homolepsis 4 337 A 11 Abies holophylla 7 341 A 12 Abies grandis 1 232 NA 13 Abies concolor 4 337 NA 14 Abies procera 4 337 NA Ogród Botaniczny Uniwersytetu im. Adama Mickiewicza w Poznaniu Botanical Garden of Adam Mickiewicz University in Poznań 15 Abies alba 1 232 EA 16 Abies cephalonica 3 157 EA 17 Abies nordmanniana 2 339 EA 18 Abies nordmanniana 2 339 EA 19 Abies cilicica 2 339 EA 20 Abies sibirica 4 337 A 21 Abies sibirica 3 157 A 22 Abies koreana 4 337 A 23 Abies pinsapo 6 220 EA 24 Abies pinsapo 5 218 EA 25 Abies bornmulleriana 2 339 EA 26 Abies homolepsis 1 232 A 27 Abies holophylla 1 232 A 28 Abies arnoldiana 4 337 NA 29 Abies nephrolepis 4 337 A 30 Abies grandis 1 232 NA 31 Abies concolor 4 337 NA 32 Abies concolor var. violacea 4 337 NA 33 Abies concolor var. lowiana 1 232 NA 34 Abies balsamea 4 337 A

Molekularna identyfikacja gatunków z rodzaju Abies 679 Abies alba Abies cephalonica Abies pinsapo Abies cilicica Abies nordmanniana Abies bornmulleriana Abies equi troiani Ryc. 1. Igły gatunków europejskich i z Azji Mniejszej Needles of species from Europe and Asia Minor Abies insignis A. nordmanniana A. pinsapo [Liepelt i in. 2002; Gömöry i in. 2004]. Do reakcji wzięto 20 ng matrycy DNA, 0,5 jednostki Taq polimerazy (Novazym), 0,1 mm każdego nukleotydu dntp, 0,2 µm każdego startera, 1 buforu do reakcji PCR i 1,6 mm MgCl 2. Reakcje wykonano w objętości 10 µl. Wstępna denaturacja trwała 5 min w temperaturze 94 C, następnie wykonano 35 cykli: 1 min w 94 C (denaturacja), 1 min w temperaturze 58,4 C (przyłączanie starterów) oraz 1 min w 72 C (wydłużanie łańcucha). Końcowe wydłużanie odbywało się w temperaturze 72 C przez 10 min. Następnie wynik reakcji PCR został sprawdzony elektroforetycznie na 2 procentowym żelu agarozowym z bromkiem

680 Abies balsamea Abies holophylla Abies homolepsis Abies koreana Abies nephrolepis Abies sibirica Ryc. 2. Igły gatunków ze środkowej i wschodniej Azji Needles of species from central and eastern Asia Abies concolor Abies concolor var. violacea Abies concolor var. lowiana Abies grandis Ryc. 3. Igły gatunków z Ameryki Północnej Needles of species from North America Abies arnoldiana A. koreana A. veitchii Abies procera

Molekularna identyfikacja gatunków z rodzaju Abies 681 etydyny oraz analizowany na sekwenatorze 3130xl Genetic Analyzer (Applied Biosystems ). Elektroforezę poziomą prowadzono przez 1 h w 6 V/cm, a elektroforezę kapilarną z użyciem stan dardu masy GeneScan 600LIZ. Dla określenia dokładnej długości alleli wyniki odczytywano za pomocą programu Peak Scanner (http://www.appliedbiosystems.com). Wyniki i dyskusja Na podstawie markera mitochondrialnego nad5 4 wykryto 7 różnych haplotypów występujących u przebadanych gatunków z rodzaju Abies (ryc. 4, tab.). Pierwszy haplotyp z allelem o długości 232 pz wykryto u 6 gatunków: A. alba, A. koreana, A. holophylla, A. grandis, A. homolepsis i A. concolor var. lowiana, czyli u gatunków z Europy i Azji oraz z Ameryki Północnej. Haplotyp ten został wykryty we wcześniejszych badaniach nad jodłą pospolitą [Liepelt i in. 2002, 2009; Gömöry i in. 2004; Ziegenhagen i in. 2005; Pawlaczyk i in. 2013] jako charakterystyczny dla jodły migru jącej (m.in. do Polski) z refugium w zachodniej Europie. Drugi haplotyp z allelem o długości 339 pz wykryto u 6 gatunków euroazjatyckich, takich jak: A. cephalonica, A. cilicica, A. nordmanniana, A. equi trojani, A. insignis i A. bornmulleriana. Wykrycie tego samego haplotypu u tych gatunków sugeruje bliskie pokrewieństwo genetyczne pomiędzy nimi. Wcześniejsze badania [Ziegenhagen i in. 2005] wykryły u A. cilicica inny haplotyp, różniący się od haplotypu 1 (232 pz) tylko dwiema parami zasad. W naszych badania wykryto haplotyp 2 (339 pz), co może świadczyć o pomyłce w oznaczeniu gatunków w obu Ogrodach lub istnieniu jeszcze jednego haplotypu u tego gatunku. U A. cephalonica wykryto również trzeci haplotyp z allelem o długości 157 pz. Ten haplotyp wystę puje również u A. sibirica, czyli u gatunku azjatyckiego. Haplotyp ten został dodatkowo wykryty w badaniach nad A. alba z całego zasięgu występowania gatunku [Liepelt i in. 2002; Ziegenhagen i in. 2005], u populacji rosnących na południowym wschodzie Europy (kraje bałkańskie oraz północno wschodnie Włochy). Potwierdziło to hipotezę, że do tego regionu jodła migrowała 400pz 300pz 200pz 100pz 400pz 300pz 200pz 100pz 400pz 300pz 200pz 100pz 400pz 300pz 200pz 100pz Ryc. 4. Analiza markera mitochondrialnego nad5 4 za pomocą elektroforezy poziomej Analysis of the mitochondrial marker nad5 4 using horizontal electrophoresis Oznaczenia gatunków w tabeli Species codes in table

682 z refugium bałkańskiego po ostatnim zlodowaceniu. Czwarty haplotyp jest charakterystyczny dla gatunków azjatyckich i północno amerykańskich, takich jak: A. sibirica, A. koreana, A. homolepsis, A. concolor, A. concolor var. violacea, A. procera, A. arnoldiana, A. nephrolepis i A. balsamea. Tylko u Abies pinsapo endemicznego gatunku rosnącego w Hiszpanii wykryto piąty i szósty haplo typ, odpowiednio o długości 218 i 220 pz. Ten sam haplotyp wykryto również u A. numidica [Ziegenhagen i in. 2005]. Wykrycie tych unikatowych haplotypów może świadczyć o procesach mikroewolucyjnych (np. mutacjach) zachodzących w izolowanych populacjach gatunków ende micznych. Natomiast tylko u A. holophylla wykryto siódmy haplotyp o długości allela 341 pz. Jest to gatunek rosnący w Korei, Chinach (prowincja Heilongjiang i Jilin) oraz Rosji (Primoryi), który spośród wszystkich jodeł najlepiej toleruje wysokie temperatury, oprócz tego znosi także duże mrozy (nawet do 34 C). Obecność tego unikalnego haplotypu może być jednym z przejawów adaptacji do nietypowych warunków siedliskowych dla jodeł. Oznaczenie długości wariantu wykrytego haplotypu dla genu nad5 4 nie wystarczy jeszcze do wnioskowania o gatunku, z jakim mamy do czynienia, pokrewieństwach genetycznych, możliwym krzyżowaniu międzygatunkowym lub związkach filogenetycznych. W tym celu po trzebne są dodatkowe informacje o morfologii gatunku, miejscu zbioru (szczególnie ważne dla gatunków allopatrycznych) oraz poznanie dokładnej sekwencji nukleotydowej. Podanie długości wykrytego haplotypu może być badaniem wstępnym, określającym, z jakimi możliwymi gatun kami mamy do czynienia, a z jakimi nie, szczególnie jeśli dysponujemy tylko pofragmentowaną tkanką. W takiej sytuacji badany marker może ułatwić raczej wykluczenie gatunku niż precy zyjną jego identyfikację. Na przykład gdy wykryty zostanie pierwszy haplotyp wśród gatunków z Ameryki Północnej, to wiadomo, że nie będą to gatunki Abies concolor, A. procera czy A. concolor var. violacea, ale mogą to być A. grandis lub A. concolor var. lowiana. Szczególnie trudna może być identyfikacja gatunku w przypadku gatunków parapatrycznych, których zasięgi (a tym samym obszar występowania) pokrywają się i ten sam haplotyp może wykazywać kilka gatunków. Przykładem może być haplotyp czwarty, który wykryto u pięciu azjatyckich gatunków jodeł. Bardziej precyzyjna identyfikacja jest możliwa dla gatunków allopatrycznych (np. gatunków europejskich i z basenu Morza Śródziemnego), których zasięgi nie pokrywają się. Wykrycie da nego haplotypu na danym terytorium może oznaczać wykrycie konkretnego gatunku (np. wykrycie na Półwyspie Peloponeskim haplotypu trzeciego oznacza A. cephalonica). Należy dodać, że użycie mitochondrialnego markera nad5 4 jest metodą stosunkowo szybką oraz tanią w porównaniu z sekwencjonowaniem i może służyć do szybkiego procesu jeśli nie identyfikacji gatunku, to jego wykluczenia. Metoda ta może być bardzo użyteczna również w paleobotanice, archeologii oraz w kryminalistyce [Ziegenhagen i in. 2005]. Podziękowanie Autorzy pragną podziękować prof. dr hab. Justynie Wiland Szymańskiej, dyrektor Ogrodu Bota nicznego Uniwersytetu im. Adama Mickiewicza w Poznaniu, za udostępnienie materiału roślinnego do badań. Literatura Boratyński A. 1983. Systematyka i geograficzne rozmieszczenie. W: Nasze drzewa leśne. Jodła pospolita Abies alba Mill. PWN, Warszawa Poznań. 41 85. Doyle J. J., Doyle J. L. 1990. Isolation of plant DNA from fresh tissue. Focus 12: 13 15. Farjon A. 2010. A Handbook of the World's Conifers. Leiden, Netherlands: Brill Academic Publishers. Farjon A., Rushforth K. D. 1989. A classification of Abies Miller (Pinaceae). Notes of the Royal Botanic Garden Edinburgh 46 (1): 59 79.

Molekularna identyfikacja gatunków z rodzaju Abies 683 Gömöry D., Longauer R., Liepelt S., Ballian D., Brus R., Kraigher H., Parpan V. I., Parpan T. V., Paule L., Stupar V., Ziegenhagen B. 2004. Variation patterns of mitochondrial DNA of Abies alba Mill. in suture zones of postglacial migration in Europe. Acta Societatis Botanicorum Poloniae 73 (3): 203 206. Liepelt S., Bialozyt R., Ziegenhagen B. 2002. Wind dispered pollen mediates postglacial gene flow among refugia. The Proceedings of National Academy of Science USA 99: 14590 14594. Liepelt S., Chedaddi R., de Beaulieu J. L., Fady B., Gömöry D., Hussendorfer E., Konnert M., Litt T., Longauer R., Terhürne Berson R., Ziegenhagen B. 2009. Postglacial range expansion and its genetic imprints in Abies alba (Mill.) a synthesis from paleobotanic and genetic data. Review of Palaeobotany and Palynology 153: 139 149. Pawlaczyk E. M., Kroplewska I., Bobowicz M. A. 2013. Postglacjalna migracja jodły pospolitej (Abies alba Mill.) do Polski analiza na podstawie polimorfizmu mitochondrialnego DNA. Sylwan 157 (6): 458 463. Ziegenhagen B., Fady B., Kuhlenkamp V., Liepelt S. 2005. Differentiating groups of Abies species with a simple molecular marker. Silvae Genetica 54 (3): 123 126.