PUBLIKACJE

PUBLIKACJE 2016 1. Noga A., Skrzypek E., Noga A., Warchoł M., Czyczyło-Mysza I., Dziurka K., Marcińska I., Juzoń K., Warzecha T., Sutkowska A., Nita Z., Werwińska K. 2016. Conversion of oat (Avena sativa L.) haploid embryo into plants in relation to embryo developmental stage and regeneration media. In Vitro Cellular and Developmental Biology, 52: 590-597. 2. Sutkowska A. 2016. Aconitum L. (Ranunculaceae) łamie zasady. Roczniki Bieszczadzkie. 24: 17 27. 3. Sahar S., Ptak A., Boisbrun M., Spina R., Dupire F., Laurain-Mattar D. 2016. Stimulating effect of both 4 -O-methylnorbelladine feeding and temporary immersion conditions on galanthamine and lycorine production by Leucojum aestivum L. bulblets. Engineering in Life Sciences, 16, 731-739. 4. Mizia P, Cygan M, Denysenko M, Kwolek D, Chramiec-Głąbik A, Grabowska- Joachimiak A, Joachimiak AJ. 2016. Development of a RAPD-based male-specific molecular marker in Japanese hop (Humulus japonicus Siebold & Zucc.). Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica, 58/2: 21-27. 5. Simlat M., Ślęzak P., Moś M., Warchoł M., Skrzypek E., Ptak A. 2016. The effect of light quality on seed germination, seedling growth and selected biochemical properties of Stevia rebaudiana Bertoni. Scientia Horticulturae, 211, 295 304. 6. Orzeł A., Simlat M., Danek J. 2016. Directions in raspberry and blackberry breeding program conducted in NIWA Berry Breeding Ltd., Brzezna, Poland. Acta Horticulturae, 1133: 29-34. 2015 1. Grabowska-Joachimiak A., Kula A., Gernand-Kliefoth D., Joachimiak A.J. 2015. Karyotype structure and chromosome fragility in the grass Phleum echinatum Host. Protoplasma, 252, 1: 301-306. 2. Grabowska-Joachimiak A., Kula A., Książczyk T., Chojnicka J., Śliwinska E., Joachimiak A. J. 2015. Chromosome landmarks and autosome-sex chromosome translocations in Rumex hastatulus, a plant with XX/XY1Y2 sex chromosome system. Chromosome Research, 23, 2: 187-197. 3. Góral H., Stojałowski S., Warzecha T., Larsen J. 2015. The development of hybrid triticale. W: François Eudes (red.). Triticale. Springer International Publishing, Springer Cham Heidelberg New York Dordrecht London, 33-66. 4. Kruk J., Śliwińska E., Grabowska-Joachimiak A., Kromer K., Szymańska R. 2015. Woodsia pulchella in the Western Carpathians: a relict species at the northern limit of its distribution. Annales Botanici Fennici, 52, 1-2: 193-201. 5. Kuchta-Gładysz M., Grabowska-Joachimiak A., Szeleszczuk O., Szczerbal I., Kociucka B., Niedbała P. 2015. Karyotyping of Chinchilla lanigera Mol. (Rodentia, Chinchillidae). Caryologia, 68, 2: 138-146. 6. Saliba S., Ptak A., Laurain-Mattar D. 2015. 4 O-methylnorbelladine feeding enhances galanthamine and lycorine production by Leucojum aestivum L. shoot cultures. Engineering in Life Sciences, 15: 640-645. 7. Sutkowska A., Pasierbiński A., Bąba W., Warzecha T., Mitka J. 2015. Additivity of ISSR markers in natural hybrids of related forest species Bromus benekenii and B. ramosus (Poaceae). Acta Biologica Cracoviensia Series Botanica, 57, 1: 82-94.

8. Ślesak H., Góralski G., Kwolek D., Dziedzic K., Grabowska-Joachimiak A. 2015. Male adventitious roots of Rumex thyrsiflorus Fingerh. as a source of genetically stable micropropagated plantlets. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 123: 193 203. 9. Warzecha T., Skrzypek E., Sutkowska A. 2015. Effect of Fusarium culmorum infection on the selected physiological and biochemical parameters of barley (Hordeum vulgare L.) DH lines. Physiological and Molecular Plant Pathology, 89: 62 69. 2014 1. Golemiec E., Tokarz K., Wielanek M., Niewiadomska E. 2014. A dissection of the effects of ethylene, H 2 O 2 and high irradiance on antioxidants and several genes associated with stress and senescence in tobacco leaves. Journal of Plant Physiology, 171: 269-275. 2. Góralski G., Judasz A., Gacek P., Grabowska-Joachimiak A., Joachimiak A.J. 2014. Polyploidy, alien species and invasiveness in Polish angiosperms. Plant Systematics and Evolution, 300:225-238. 3. Kruk J, Grabowska-Joachimiak A, Szymańska R. 2014. Galium suecicum (Rubiaceae), a new and relict species in the flora of Poland. Annales Botanici Fennici, 51: 273-278. 4. Nahar N., Rahman A., Moś M., Warzecha T., Ghosh S., Hossain K., Nawani N. N., Mandal A. 2014. In silico and in vivo studies of molecular structures and mechanisms of AtPCS1 protein involved in binding arsenite and/or cadmium in plant cells. Journal of Molecular Modeling, 20: 2104: 1-16. 5. Płachno B., Musiał K., Świątek P., Tuleja M., Marciniuk J., Grabowska-Joachimiak A. 2014. Synergids and filiform apparatus in the sexual and apomictic dandelions from section Palustria (Taraxacum, Asteraceae). Protoplasma, 251:211 217. 6. Ptak A. 2014. Leucojum aestivum L. in vitro bulbs induction and acclimatization. Central European Journal of Biology, 9 (11): 1011-1021. 7. Sutkowska A., Pasierbiński A., Warzecha T., Mitka J. 2014. Multiple cryptic refugia of forest grass Bromus benekenii in Europe as revealed by ISSR fingerprinting and species distribution modelling. Plant Systematics and Evolution, 300(6): 1437 1452. 8. Warzecha T., Sutkowska A., Góral H. 2014. Male sterility of triticale lines generated through recombination of triticale and rye maintainers. Spanish Journal of Agricultural Research, 12(4): 1124-1130. 9. Wójtowicz T., Zieliński A., Moś M. 2014. The effect of degree of panicle maturity on seed yield and yield components in meadow fescue (Festuca pratensis Huds.). Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych, 579: 111-120. 10. Zieliński A., Ptak A., Wójtowicz T., Moś M. 2014. Susceptibility of naked oat cultivar seeds to mechanical damage. Central European Journal of Biology, 9(3): 331-340. 11. Zieliński A., Simlat M., Wójtowicz T., Moś M. 2014. Susceptibility of naked oat cultivars to seed sprouting. Central European Journal of Biology, 9(8): 823-832. 2013 1. Góral H. 2013. Męska płodność pszenżyta ozimego w zależności od rodzaju cytoplazmy i formy ojcowskiej. Biul. IHAR, 269: 15 20. 2. Kula A., Grabowska-Joachimiak A., Kasjaniuk M., Legutko J., Marciniuk P., Musiał K. 2013. Chromosome numbers in 10 Taraxacum species from Poland. Acta Biologica Cracoviensia Ser. Botanica, 55/2: 153-157. 3. Ptak A., El Tahchy A., Skrzypek E., Wójtowicz T., Laurain-Mattar D. 2013. Influence of auxins on somatic embryogenesis and alkaloid accumulation in Leucojum aestivum callus. Central European Journal of Biology, 8 (6): 591-599.

4. Ptak A., Simlat M., Kwiecień M., Laurain-Mattar D. 2013. Leucojum aestivum plants propagated in in vitro bioreactor culture and on solid media containing cytokinins. Engineering in Life Sciences, 13 (3): 261 270. 5. Simlat M. Szklarczyk M., Stobiecki M. 2013. Accumulation of selected phenolics and expression of PAL genes in carrots deffering in their susceptibility to carrot fly (Psila rosae F.). Euphytica, 190: 253-266. 6. Sutkowska A, Boroń P, Mitka J. 2013. Natural hybrid zone of the Aconitum species in the Western Carpathians: Linnaean taxonomy and ISSR fingerprinting. Acta Biologica Cracoviensia, Series Botanica, 55(1): 114-126. 7. Sutkowska A. 2013. Stokłosa spłaszczona Bromus carinatus (Hook. & Arn.) (Poaceae) gatunkiem potencjalnie inwazyjnym w Karpatach. Roczniki Bieszczadzkie, 21: 64-73. 8. Sutkowska A. 2013. Zmienność i pochodzenie populacji Epipactis palustris (Orchidaceae) i Bromus carinatus (Poaceae) na siedliskach synantropijnych w świetle badań molekularnych. Monografia. Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołłątaja w Krakowie: ss. 103. 9. Sutkowska A., Pasierbiński A. Warzecha T., Mandal A., Mitka J. 2013. Refugial pattern of Bromus erectus in Central Europe based on ISSR fingerprinting. Acta Biologica Cracoviensia, Series Botanica, 55(2): 107-119. 10. Ślesak H., Góralski G., Pawłowska H., Skucińska B., Popielarska- Konieczna M., Joachimiak A. J. 2013. The effect of genotype on a barley scutella culture. Histological aspects. Central European Journal of Biology, 8(1): 30-37. 11. Żur I., Gołębiowska G., Dubas E., Golemiec E., Matušíková I., Libantová J., Moravčiková J. 2013. β-1,3-glucanase and chitinase activities in winter triticales during cold hardening and subsequent infection by Microdochium nivale. Biologia, 68(2): 241-248. 2012 1. Bocianowski J., Warzecha T., 2012. Wielocechowa charakterystyka odmian pszenicy (Triticum L.) i pszenżyta ( Triticosecale Wittm. ex A. Camus) inokulowanych Fusarium culmorum. Nauka Przyr. Technol. 6, 1, #14:1-11 2. Chramiec-Głąbik A., Grabowska-Joachimiak A., Śliwinska E., Legutko J., Kula A. 2012. Cytogenetic analysis of Miscanthus giganteus and its parent forms. Caryologia: International Journal of Cytology, Cytosystematics and Cytogenetics, 65(3), 234-242. 3. Grabowska-Joachimiak A., Kwolek D., Kula A., Marciniuk P. 2012. Fluorescent banding pattern and species-specific DNA marker in Rumex thyrsiflorus Fingerh. Cytogenetic and Genome Research, 137: 70 77 4. Krzewska M., Czyczyło-Mysza I., Dubas E., Gołębiowska-Pikania G., Golemiec E., Stojałowski S., Chrupek M., Żur I. 2012. Quantitative trait loci associated with androgenic responsiveness in triticale ( Triticosecale Wittm.) anther culture. Plant Cell Rep, 31: 2099-2108. 5. Nahar N., Rahman A., Moś M., Warzecha T., Algerin M., Ghosh S., Johnson-Brousseau S. 2012. In silico and in vivo studies of an Arabidopsis thaliana gene ACR2, putatively involved in arsenic accumulation in plants. Journal of Molecular Modeling, 18: 4249 4162. 6. Sutkowska A. 2012. Verification of the systematic position of California brome (Bromus carinatus Hook and Arn, Poaceae) cv. Broma, on the basis of analysis of ISSR markers. Acta Agrobotanika, 65 (3): 35 42.

7. Warzecha T., Zieliński A., Skrzypek E., Wójtowicz T., Moś M. 2012. Effects of mechanical damage on vigour and physiological indices of naked and husked oat cultivars (Avena sativa L.) after inoculation with Fusarium culmorum. Phytoparasitica, 40:29 36. 2011 1. Boroń P., Zalewska-Gałosz J., Nowak A., Sutkowska A., Zemanem B., Mitka J. 2011. ISSR analysis points to relict character of Aconitum bucovinense Zapał. (Ranunculaceae) at the range margin. Acta Soc. Bot. Pol. 80 (4), 315 326. 2. El Tahchy A., Bordage S., Ptak A., Dupire F., Barre E., Guillot C., Henry M., Chapleur Y., Laurain-Mattar D. 2011. Effects of sucrose and plant growth regulators on acetylcholonesterase inhibitory activity of alkaloids accumulated in shoot cultures of Amaryllidaceae. Plant Cell Tiss Organ Cult. 106, 381 390. 3. El Tahchy A., Ptak A., Boisbrun M., Barre E., Guillot C., Dupire F., Chretien F., Henry M., Chapleur Y., Laurain-Mattar D. 2011. Kinetic study of the rearrangement of deuterium labeled 4'-O-methylnorbelladine in Leucojum aestivum shoot cultures by mass spectrometry. Influence of precursor feeding on Amaryllidaceae alkaloid accumulation. Journal of Natural Products. 74 (11), 2356 2361. 4. Grabowska-Joachimiak A., Mosiołek M., Lech A., Góralski G. 2011. C-Banding/DAPI and in situ Hybridization Reflect Karyotype Structure and Sex Chromosome Differentiation in Humulus japonicus Siebold & Zucc. Cytogenet Genome Res 132, 203 2011. 5. Ilnicki T., Joachimiak A., Sutkowska A., Mitka J. 2011. Cytotypes distribution of Aconitum variegatum L. in Central Europe. [W:] Zemanek B. (red.). Geobotanist and taxonomist. Instytut Botaniki UJ, 169 192. 6. Słomka A., Sutkowska A., Szczepaniak M., Malec P., Mitka J., Kuta E. 2011. Increased genetic diversity of Viola tricolor L. (Violaceae) in metal-polluted environments. Chemosphere 83, 435 442. 7. Warzecha T., Lundh D., Mandal A. 2011. Effect of Fusarium culmorum infection on survivability of a T-DNA tagged mutant of Arabidopsis thaliana harboring a mutation in the peptide transporter gene At5g46050. Biotechnologia, 92 (1), 77 84. 8. Warzecha T., Adamski T., Kaczmarek Z., Surma M., Chełkowski J., Wiśniewska H., Krystkowiak K., Kuczyńska A. 2011. Genotype-by-environment interaction of barley DH lines infected with Fusarium culmorum (W.G.Sm.) Sacc. Field Crops Res. 120, 21 30. 9. Wójtowicz T., Moś M. 2011. Wpływ stopnia dojrzałości wiech na wartość siewną nasion Festuca pratensis. Łąkarstwo w Polsce, 14, 147 160. 2010 1. El Tahchy A., Boisbrun M, Ptak A, Dupie F, Chretien M, Henry M, Chapleur Y, Laurain- Mattar D. 2010. New methods for the study of Amaryllidaceae alakloid biosynthesis using biotransformations of deuterium-labelled precursosr in tissue culture. Acta Biochimica Polonica 57(1), 61-67. 2. Góral H., Stojałowski S., Tyrka M., Wędzony M. 2010. Inheritance of fertility restoration in winter triticale with cytoplasm of Triticum timopheevi. Folia Pomer. Univ. Technol. Stein., Agric., Aliment., Pisc., Zootech. 276 (13), 11 18. 3. Kruczkowska H, Pawłowska H, Skucińska B. 2010. Porównanie metod mikrorozmnażania polskich odmian jęczmienia i owsa. Biotechnologia 2(89), 83-88.

4. Marciniuk J., Grabowska-Joachimiak A., Marciniuk P. 2010. Differentiation of the pollen size in five representatives of Taraxacum sect. Palustria. Biologia 65/6, 954 957. 5. Marciniuk J., Rerak J., Grabowska-Joachimiak A., Jastrząb I., Musiał K., Joachimiak A.J. 2010. Chromosome Numbers and Stomatal Cell Length In Taraxacum Sect. Palustria from Poland. Acta Biol. Cracov. Ser. Bot. 52/1, 117 121. 6. Ptak A, El Tahchy A, Wyżgolik G, Henry M, Laurain-Mattar D. 2010. Effects of ethylene on somatic embryogenesis and galanthamine content in Leucojum aestivum L. cultures. Plant Cell Tiss Org Cult 102, 61-67. 7. Ptak A, Gądek J. 2010. Mikrorozmnażanie Leucojum aestivum L. w bioreaktorze RITA. Biotechnologia 2 (89), 165-171. 8. Warzecha, T., Adamski, T., Kaczmarek, Z., Surma, Goliński, P., Perkowski, J.M., Chełkowski, J., Wiśniewska, H., Krystkowiak, K., Kuczyńska, A. 2010. Susceptibility of hulled and hulless barley doubled haploids to Fusarium culmorum head blight. Cereal Res. Commun. 38, 220 232. 9. Wójtowicz T., Moś M. 2010. Changes in the vigour of spring triticale seeds with sprouting damage during storage. Zesz. Probl. Post. Nauk Roln., 545, 375-385. 2009 1. Góral H., Pojmaj M.S., Pojmaj R., Burczy M. 2009. Otrzymywanie nasion mieszańcowych pszenżyta ozimego w siewie pasowym linii cms i restorera oraz w mieszaninach tych form. Biul. IHAR 252, 163 168. 2. Góral H., Tyrka M., Stojałowski S., Wędzony M. 2009. Variability in expression of male fertility in triticale ( Triticosecale Wittmack) with Triticum timopheevi cytoplasm. Plant Breeding and Seed Scence, 60, 23 30. 3. Kłos J., Śliwińska E., Kula A., Golczyk H., Grabowska-Joachimiak A., Ilnicki T., Szostek K., Stewart A., Joachimiak A.J. 2009. Karyotype and nuklear DNA content of hexa-, okto-, and duodecaploid lines of Bromus subgen. Ceratochloa. Genetics and Molecular Biology, 32, 3, 528 537. 4. Kula A., Grabowska-Joachimiak A. 2009. Analiza prawdopodobnych, naturalnych mieszańców pomiędzy Phleum commutatum i P. pratense (Poaceae). Fragm. Flor. Geobot. Polonica, 16 (1), 65 77. 5. Ptak A., El Tahchy A., Dupire F., Boisbrun M., Henry M., Chapleur Y., Moś M., Laurain- Mattar D. 2009. LCMS and GCMS for the screening of alkaloids in natural and in vitro extracts of Leucojum aestivum. J Nat Prod, 72, 142-147. 6. Sutkowska A, Pasierbiński A. 2009. Pochodzenie spontanicznie rozprzestrzeniającego się gatunku Bromus carinatus (Poaceae) na siedliskach ruderalnych w Polsce. Fragm. Flor. Geobot. Polonica, 16 (2), 281-295. 7. Warzecha T. 2009. Podatność wybranych odmian pszenicy i pszenżyta z hodowli DANKO na fuzaryjną zgorzel siewek. Biul IHAR, 251, 95 105. 8. Wójtowicz T., Binek A., Moś M. 2009. Correlations and path analysis of the components of Festuca pratensis seed yield. Łąkarstwo w Polsce, 12, 223-232. 9. Zieliński A., Moś M. 2009. Effects of seed moisture and the rotary speed of a drum on the germination and vigour of naked and husked oat cultivars. Cereal Research Communications, 37 (2), 277 286. 10. Zieliński A., Sygulska P., Moś M. 2009. Germination of oat seeds, characterized by decreased vigour, under drought conditions. Ecological Chemistry and Engineering A, 16 (9), 1209-1217.

2008 1. Góral H., Ejsmond M. 2008. Analiza zdolności kombinacyjnych i odziedziczalności cech plonotwórczych lnu oleistego. Biul. IHAR, 249, 209 215. 2. Moś. M., Wójtowicz T., Zieliński A., Simlat M., Binek A. 2008. Czynniki modyfikujące kiełkowanie i wigor siewek nagoziarnistych i oplewionych odmian owsa. Biul. IHAR, 249, 167 176. 3. Sutkowska A., Mitka J. 2008. RAPD analysis points to Old World Bromus species ancestral to New World subgen. Festucaria. Acta Biol. Cracov. Ser. Bot. 50 (2), 117 125. 4. Zieliński A., Moś. M. 2008. Wpływ terminu zbioru i prędkości obrotowej bębna młócącego na długowieczność nagoziarnistych i oplewionych odmian owsa. Folia Univ. Agric. Stetin. 266 (8), 185 196. 2007 1. Binek A., Moś M., Wójtowicz T. 2007. Zróżnicowanie liczby opadania mąki z pszenicy ozimej w zależności od odmiany i warunków pogodowych podczas dojrzewania. Fragmenta Agromomica XXIV, 2 (94), 16 24. 2. Błocka-Wandas M., Śliwinska E., Grabowska-Joachimiak A., Musiał K., Joachimiak A.J. 2007. Male gametophyte development and two different DNA classes of pollen grains in Rumex acetosa L., a plant with an XX/XY 1 Y 2 sex chromosome system and a femalebiased sex ratio. Sex Plant Reprod, 20, 171 180. 3. Diop M.F., Hehn A., Ptak A., Chretien F., Doerper S., Gontier E., Bourgaud F., Henry M., Chapleur Y., Laurain-Mattar D. 2007. Hairy root and tissue cultures of Leucojum aestivum L. relationship to galanthamine content. Phytochem Rev, 6, 137 141. 4. Góral H. 2007. Biała barwa kwiatów u koniczyny czerwonej (Trifolium pratense L.). Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 517, 325 330. 5. Góral H., Pojmaj M.S., Pojmaj R. 2007. Frekwencja genotypów dopełniających i restorujących dla systemu cms-t.timopheevi u pszenżyta ozimego. Biul. IHAR, 244, 155 160. 6. Kruczkowska H., Pawłowska H., Skucińska B. 2007. Próba indukcji androgenezy u polskich odmian owsa. Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 523, 137 142. 7. Kula A., Paleczny A., Galant B., Stewart A., Śliwińska E. 2007. Analiza kariotypu mieszańców z krzyżowań zwrotnych pomiędzy [4x] Phleum commutatum Gaud. i [4x] Phleum pratense L. 2007. Acta Agraria et Silvestria, Series Silvestris, XLVIII. 15 31. 8. Kula A., Śliwińska E., Ledowska J. 2007. Struktura kariotypu Phleum montanum (Poaceae). Fragm. Flor. Geobot. Polonica, 14 (1), 139 147. 9. Kula A., Śliwińska E., Wróblewska D. 2007. Kariologia i morfologia Phleum paniculatum (Poaceae). Fragm. Flor. Geobot. Polonica, 14 (1), 149 157. 10. Mitka J., Sutkowska A., Ilnicki T., Joachimiak A.J., 2007. Reticulate evolution of highalpine Aconitum (Ranunculaceae) in the Eastern Sudetes and Western Carpathians (Central Europe). Acta Biologica Cracoviensia, Series Botanica, 49/2, 15 26. 11. Moś M., Binek A., Zieliński A., Wójtowicz T. 2007. Effect of osmotic stress on vigor in naked and husked oat cultivars subjected to accelerated ageing. American-Eurasian J. Agric. & Environ. Sci. 2 (5), 465 469. 12. Ptak A., Bach A. 2007. Somatic embryogenesis in tulip (Tulipa gesneriana L.) flower stem cultures. In Vitro Cell. Dev. Biol. Plant, 43, 35 39. 13. Zieliński A., Moś T., Wójtowicz T. 2007. Effect of grain moisture content and threshing cylinder speed on mechanical grain damage in naked oat cultivars. Electronic Journal of Polish Agricultural Universities, 10 (4), 1 11. http://www.ejpau.media.pl

2006 1. Diop M.F., Ptak A., Chrétien F., Henry M., Chapleur Y., Laurain-Mattar D. 2006. Galanthamine content of bulbs and in vitro cultures of Leucojum aestivum L. Natural Product Communications, 1 (6), 475 479. 2. Góral H., Jasieński M., Zając T. 2006. Zdolność kombinacyjna odmian lnu oleistego pod względem cech plonotwórczych. Biul. IHAR, 240/241, 237 242. 3. Góral H., Merta A., Pisulewska E. 2006. Przywrócenie męskiej płodności i cechy rolnicze u mieszańców F1 pszenżyta ozimego z cytoplazmą T. timopheevi. Folia Univ. Agric. Stetin. Agricultura, 247 (100), 49 54. 4. Góral H., Warzecha T., Stojałowski S., Pojmaj M., Kurleto D., Trąbka A., Spiss L. 2006. Stability of male sterility and fertility restoration in the cms-t. timopheevi system in triticale. Folia Univ. Agric. Stetin. Agricultura, 247 (100), 55 62. 5. Grabowska-Joachimiak A., Śliwińska E., Piguła M., Skomra U., Joachimiak A.J. 2006. Genome size in Humulus lupulus L. and H. japonicus Siebold & Zucc. (Cannabaceae). Acta Societatis Botanicorum Poloniae, 75 (3), 207 214. 6. Kula A., Dudziak B., Śliwińska E., Grabowska-Joachimiak A., Stewart A., Golczyk H., Joachimiak A.J. 2006. Cytomorphological studies on american and european Phleum commutatum Gaud. (Poaceae). Acta Biologica Cracoviensia, Series Botanica, 48/1, 99 108. 7. Maciorowski R., Stojałowski S., Góral H. 2006. Ocena jednostkowej produktywności fotosyntetycznej mieszańców F1 pszenżyta za pomocą indukowanej fluorescencji chlorofilu. Folia Univ. Agric. Stetin. Agricultura, 247 (100), 113 118. 8. Moś M., Kula A., Wójtowicz T. 2006. Effect of the osmotic medium potential on seed germinability and seedling emergence in husked and naked oat cultivars. World Journal of Agricultural Sciences, 2 (4), 483 488. 9. Warzecha T., Góral H. 2006. Zdolność kombinacyjna linii cms oraz rodów i odmian pszenżyta pod względem podatności na zgorzel siewek wywołaną Fusarium culmorum. Biul. IHAR, 240 241, 127 132. 10. Wiwart M., Moś M., Wójtowicz T. 2006. Studies on the imbibition of triticale kernels with a different degree of sprouting, using digital shape analysis. Plant Soil Environ. 52(7), 328 334. 2005 1. Binek A., Moś M. 2005. Genotype and environmental interaction of certain indices of dormancy in winter wheat. Plant Soil Environ. 51 (9), 390 396. 2. Drzazga T., Krajewski P., Spiss L. 2005. Tendencje w plonowaniu pszenicy jarej i ozimej na podstawie wstępnych doświadczeń hodowlanych. Biul. IHAR 235, 23 30. 3. Drzazga T., Spiss L. 2005. Postęp hodowlany w plonowaniu pszenicy jarej w Polsce. Acta Agr. et Silv., ser. Agraria XLV, 85 98. 4. Góral H., Tyrka M., Spiss L. 2005. Assessing genetic variation to predict the breeding value of winter triticale cultivars and lines. J App Genet 46 (2), 125 131. 5. Góral H., Jagodziński G. 2005. Zmienność wykształcenia pylników w obrębie roślin pszenżyta ozimego z cytoplazmą Triticum timopheevi. Biul. IHAR 236, 49 53. 6. Góral H., Spiss L. 2005. Hodowla dopełniaczy i restorerów dla systemu cms- T.timopheevi u pszenżyta jarego. Biul. IHAR 236, 99 104. 7. Góral H., Spiss L., Woś H., Woś B. 2005. Grain yield and other agronomic traits in winter triticale F1 hybrids based on Triticum timopheevi cytoplasm. Acta Agr. et Silv., ser. Agraria XLV, 3 9.

8. Kruczkowska H., Pawłowska H., Skucińska B. 2005. Effect of 2,4-D concentration on the androgenic response in anther culture of barley. Cer. Res. Comm. 33 (4), 727 732. 9. Kruczkowska H., Pawłowska H., Skucińska B. 2005. Androgenic potential of polish barley cultivars in anther culture in vitro. Plant Breed. and Seed Sci. 51, 57 66. 10. Kula A. 2005. Kariologia i morfologia gatunków z rodzaju Phleum. Zesz. Nauk. AR w Krakowie, nr 418, z. 304. 11. Kula A. 2005. Struktura kariotypu Phleum hirsutum (Poaceae). Fragm. Flor. Geobot. Polonica 12 (1), 135 142. 12. Kula A. Kutyna D. 2005. Kariologia i morfologia Phleum arenarium (Poaceae). Fragm. Flor. Geobot. Polonica 12(2), 317 325. 13. Kula A. 2005. Searching for a primeval Phleum karyotype. [W]: Frey L. (red.). Biology of grasses. W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences, Kraków, 197 206. 14. Mosiołek M., Pasierbek P., Malarz J., Moś M., Joachimiak A.J. 2005. Rumex acetosa Y chromosomes: constitutive or facultative heterochromatin? Folia Histochemica et Cytobiologica 43 (3), 161 167. 15. Sutkowska A., Mitka J. 2005. Molecular PCR-ISSR analysis in Bromus subgenus Festucaria preliminary results. [W]: Frey L. (red.): Biology of grasses. W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences, Kraków, 207 216. 16. Warzecha T., Góral H. 2005. Podatność auto- i alloplazmatycznych linii pszenżyta na zgorzel siewek wywołaną przez Fusarium culmorum (W.G.Sm.) Sacc. Biul. IHAR 236, 109 13. MONOGRAFIE NAUKOWE, SKRYPTY 1. Kula A. 2005. Kariologia i morfologia gatunków z rodzaju Phleum. Zesz. Nauk. AR w Krakowie, Rozprawy, nr 418, z. 304. 2. Kula A. 2005. Searching for a primeval Phleum karyotype. In: L. Frey (ed.): Biology of grasses. W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences, Kraków, 197 206. 3. Sutkowska A., Mitka J. 2005. Molecular PCR-ISSR analysis in Bromus subgenus Festucaria preliminary results. In: L. Frey (ed.): Biology of grasses. W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences, Kraków, 207 216. 4. Joachimiak A., Kula A. 2007. Cytogenetyka traw. W: L. Frey (red.) Księga polskich traw. Drukarnia Kolejowa Kraków Sp. z o.o., Kraków, 109 128. 5. Sutkowska A., Mitka J., Glimos E., Warzecha T. 2007. Phylogenetic relations among selected species of genus Bromus, subgenus Festucaria (Poaceae). W: L. Frey (red.) Biological issues in grasses. W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences, Kraków, 169 179. 6. Skucińska B. (red.) 2008. Przewodnik do ćwiczeń z roślinnych kultur in vitro. Wydawnictwo UR w Krakowie. 7. Góral H. 2009 Rozdział 8. Zmienność genetyczna i środowiskowa, 96-114. Rozdział 9. Selekcja i postęp genetyczny, 115-121. Rozdział 10.3 Znaczenie zmienności w hodowli roślin i ochrona zasobów genowych, 136-144. 8. Sutkowska A. 2013. Zmienność i pochodzenie populacji Epipactis palustris (Orchidaceae) i Bromus carinatus (Poaceae) na siedliskach synantropijnych w świetle badań molekularnych. Monografia. Uniwersytet Rolniczy im. Hugona Kołłątaja w Krakowie: ss. 103.