WYZNACZANIE PARAMETRÓW WYGASZANIA FLUORESCENCJI AKRYDYNY PRZEZ ZWIĄZKI TIOORGANICZNE METODAMI STACJONARNYMI (A) I CZASOWO ROZDZIELCZYMI (B)

Podobne dokumenty
PRACOWNIA CHEMII. Wygaszanie fluorescencji (Fiz4)

PRACOWNIA PODSTAW BIOFIZYKI

OZNACZANIE ŻELAZA METODĄ SPEKTROFOTOMETRII UV/VIS

Ćwiczenie 1. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp. Część teoretyczna.

WYZNACZANIE ODLEGŁOŚCI KRYTYCZNEJ POMIĘDZY CZĄSTECZKAMI DONORA I AKCEPTORA W PROCESIE REZONANSOWEGO PRZENIESIENIA ENERGII (FRET)

ĆWICZENIE 2 WYZNACZANIE WYDAJNOŚCI KWANTOWYCH ORAZ CZASÓW ZANIKU LUMINESCENCJI ZWIĄZKÓW W ROZTWORZE ORAZ CIELE STAŁYM, CZ. II.

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wyznaczanie stałej szybkości i rzędu reakcji metodą graficzną. opiekun mgr K.

Spektrofotometryczne wyznaczanie stałej dysocjacji czerwieni fenolowej

EFEKT SOLNY BRÖNSTEDA

Ćwiczenie 30. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna w zakresie UV-VIS, prawa absorpcji, budowa i. Wstęp

Ćw. 11 wersja testowa Wyznaczanie odległości krytycznej R 0 rezonansowego przeniesienia energii (FRET)

ĆWICZENIE 3 LUMINOFORY ORAZ ZJAWISKA WYGASZANIA LUMINESCENCJI

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Spektrofotometryczne oznaczanie stężenia jonów żelaza(iii) opiekun mgr K. Łudzik

Opracował dr inż. Tadeusz Janiak

Laboratorium Podstaw Biofizyki

Ćwiczenie 8 Wyznaczanie stałej szybkości reakcji utleniania jonów tiosiarczanowych

Wyznaczanie stałej dysocjacji pk a słabego kwasu metodą konduktometryczną CZĘŚĆ DOŚWIADCZALNA. Tabela wyników pomiaru

Ćwiczenie 31. Zagadnienia: spektroskopia absorpcyjna, prawa absorpcji, budowa i działanie. Wstęp

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI p-nitrofenolu METODĄ SPEKTROFOTOMETRII ABSORPCYJNEJ

Spektroskopia molekularna. Ćwiczenie nr 1. Widma absorpcyjne błękitu tymolowego

SZYBKOŚĆ REAKCJI JONOWYCH W ZALEŻNOŚCI OD SIŁY JONOWEJ ROZTWORU

MIKROSKOP FLUORESCENCYJNY. POMIAR WYDAJNOŚCI KWANTOWEJ FLUORESCENCJI ANTRACENU, PERYLENU ORAZ 9,10-DIFENYLOANTRACENU W ROZTWORZE

3. Badanie kinetyki enzymów

1. PRZYGOTOWANIE ROZTWORÓW KOMPLEKSUJĄCYCH

METODYKA POMIARÓW WIDM FLUORESCENCJI (WF) NA MPF-3 (PERKIN-HITACHI)

RÓWNOWAGI REAKCJI KOMPLEKSOWANIA

LABORATORIUM Z KATALIZY HOMOGENICZNEJ I HETEROGENICZNEJ WYZNACZANIE STAŁEJ SZYBKOŚCI REAKCJI UTLENIANIA POLITECHNIKA ŚLĄSKA WYDZIAŁ CHEMICZNY

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

IR II. 12. Oznaczanie chloroformu w tetrachloroetylenie metodą spektrofotometrii w podczerwieni

KATALITYCZNE OZNACZANIE ŚLADÓW MIEDZI

Adsorpcja błękitu metylenowego na węglu aktywnym w obecności acetonu

PRACOWNIA CHEMII. Równowaga chemiczna (Fiz2)

Dobór warunków dla poprawnego pomiaru widm emisji i wydajności kwantowych emisji

ĆWICZENIE 3 LUMINOFORY ORGANICZNE I NIEORGANICZNE.

ĆWICZENIE II Kinetyka reakcji akwatacji kompleksu [Co III Cl(NH 3 ) 5 ]Cl 2 Wpływ wybranych czynników na kinetykę reakcji akwatacji

KINETYKA REAKCJI ENZYMATYCZNYCH Wyznaczenie stałej Michaelisa i maksymalnej szybkości reakcji hydrolizy sacharozy katalizowanej przez inwertazę.

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Wpływ stężenia kwasu na szybkość hydrolizy estru

Laboratorium Inżynierii Bioreaktorów

WYZNACZANIE ŚREDNIEJ LICZBY AGREGACJI SURFAKTANTÓW METODĄ WYGASZANIA FLUORESCENCJI

Instrukcja do ćwiczeń laboratoryjnych

PRACOWNIA CHEMII. Reakcje fotochemiczne (Fiz3)

PRACOWNIA PODSTAW BIOFIZYKI

Kolorymetryczne oznaczanie stężenia Fe 3+ metodą rodankową

Laboratorium 5. Wpływ temperatury na aktywność enzymów. Inaktywacja termiczna

Badane związki 1. Kwas 2-(karboksymetylotio)-bursztynowy [2-CMTSA]

Przedmiot: Chemia budowlana Zakład Materiałoznawstwa i Technologii Betonu

ELEMENTY ANALIZY INSTRUMENTALNEJ. SPEKTROFOTOMETRII podstawy teoretyczne

KINETYKA INWERSJI SACHAROZY

SF5. Spektroskopia absorpcyjna i emisyjna cząsteczek organicznych

Inżynieria Środowiska

Spektroskopia Analiza rotacyjna widma cząsteczki N 2. Cel ćwiczenia: Wyznaczenie stałych rotacyjnych i odległości między atomami w cząsteczce N 2

ANALIZA INSTRUMENTALNA

Kinetyka reakcji hydrolizy sacharozy katalizowanej przez inwertazę

ANALIZA SPEKTRALNA I POMIARY SPEKTROFOTOMETRYCZNE. Instrukcja wykonawcza

POLITECHNIKA POZNAŃSKA ZAKŁAD CHEMII FIZYCZNEJ ĆWICZENIA PRACOWNI CHEMII FIZYCZNEJ

Ćwiczenie IX KATALITYCZNY ROZKŁAD WODY UTLENIONEJ

Pracownia Spektroskopii Molekularnej A Wydział Chemii Uniwersytetu Warszawskiego. Semestr zimowy 2010/2011. Widma fluorescencyjne chininy

K05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

RÓWNOWAŻNIKI W REAKCJACH UTLENIAJĄCO- REDUKCYJNYCH

WYZNACZANIE STAŁEJ DYSOCJACJI SŁABEGO KWASU ORGANICZNEGO

Skręcenie wektora polaryzacji w ośrodku optycznie czynnym

K02 Instrukcja wykonania ćwiczenia

TRANSPORT NIEELEKTROLITÓW PRZEZ BŁONY WYZNACZANIE WSPÓŁCZYNNIKA PRZEPUSZCZALNOŚCI

WFiIS. Wstęp teoretyczny:

Wyznaczanie wydajności kwantowej luminescencji oraz czasu zaniku luminescencji związku koordynacyjnego

HYDROLIZA SOLI. ROZTWORY BUFOROWE

Oznaczanie żelaza i miedzi metodą miareczkowania spektrofotometrycznego

ABSORPCYJNA SPEKTROMETRIA ATOMOWA

Temat 7. Równowagi jonowe w roztworach słabych elektrolitów, stała dysocjacji, ph

ĆWICZENIE 2 KONDUKTOMETRIA

1 Kinetyka reakcji chemicznych

Katedra Fizyki i Biofizyki instrukcje do ćwiczeń laboratoryjnych dla kierunku Lekarskiego

Badanie kinetyki inwersji sacharozy

Kwas HA i odpowiadająca mu zasada A stanowią sprzężoną parę (podobnie zasada B i kwas BH + ):

d[a] = dt gdzie: [A] - stężenie aspiryny [OH - ] - stężenie jonów hydroksylowych - ] K[A][OH

ĆWICZENIE B: Oznaczenie zawartości chlorków i chromu (VI) w spoiwach mineralnych

SKUTECZNOŚĆ IZOLACJI JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

A4.05 Instrukcja wykonania ćwiczenia

Kinetyka chemiczna jest działem fizykochemii zajmującym się szybkością i mechanizmem reakcji chemicznych w różnych warunkach. a RT.

JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI? JAK ZMIERZYĆ ILOŚĆ KWASÓW NUKLEINOWYCH PO IZOLACJI?

Ćwiczenie 6. Symulacja komputerowa wybranych procesów farmakokinetycznych z uwzględnieniem farmakokinetyki bezmodelowej

Pochodna i różniczka funkcji oraz jej zastosowanie do obliczania niepewności pomiarowych

Sporządzanie roztworów buforowych i badanie ich właściwości

Laboratorium Inżynierii Bioreaktorów

Ćwiczenie II Roztwory Buforowe

Spektroskopia molekularna. Spektroskopia w podczerwieni

Ćwiczenie 3 Pomiar równowagi keto-enolowej metodą spektroskopii IR i NMR

ĆWICZENIE 2. Usuwanie chromu (VI) z zastosowaniem wymieniaczy jonowych

Instrukcje opracowane przez: dr inż. Urszulę Kucharską dr hab. inż. Joannę Leszczyńską

IM21 SPEKTROSKOPIA ODBICIOWA ŚWIATŁA BIAŁEGO

Katedra Chemii Fizycznej Uniwersytetu Łódzkiego. Adsorpcja kwasu octowego na węglu aktywnym. opracowała dr hab. Małgorzata Jóźwiak

POLITECHNIKA GDAŃSKA

Ćw. 5 Absorpcjometria I

Spektroskopia. Spotkanie pierwsze. Prowadzący: Dr Barbara Gil

dr hab. inż. Józef Haponiuk Katedra Technologii Polimerów Wydział Chemiczny PG

KREW: 1. Oznaczenie stężenia Hb. Metoda cyjanmethemoglobinowa: Zasada metody:

Ćwiczenie 7. Wyznaczanie stałej szybkości oraz parametrów termodynamicznych reakcji hydrolizy aspiryny.

PRACOWNIA CHEMII. Kinetyka reakcji chemicznych (Fiz1)

WYZNACZANIE OGNISKOWYCH SOCZEWEK

Transkrypt:

Ćwiczenie 5 i 6 WYZNACZANIE PARAMETRÓW WYGAZANIA FLUORECENCJI AKRYDYNY PRZEZ ZWIĄZKI TIOORGANICZNE METODAMI TACJONARNYMI (A) I CZAOWO ROZDZIELCZYMI (B) Zagadnienia: podstawowe prawa otochemiczne, diagram Jabłońskiego, procesy dezaktywacji stanów wzbudzonych (promieniste i bezpromieniste), kinetyka luorescencji, czas życia stanów wzbudzonych, równanie terna Volmera (wyprowadzenie), budowa spektrootometru i spektroluorymetru. Wstęp zczegółowa analiza reakcji chemicznych z udziałem cząsteczek w stanach wzbudzonych (zarówno singletowych, jak i trypletowych) napotyka na wiele trudności, ze względu na ich krótkie czasy życia oraz niewielkie stężenia produktów i stanów wzbudzonych. Dokładna analiza widm absorpcji i emisji umożliwia jednak zbadanie niektórych właściwości stanów wzbudzonych cząsteczek, które tworzą się w wyniku absorpcji światła, a następnie emitując energię przechodzą do niższych stanów. Przykładem takiego powrotu cząsteczki do niższego stanu jest luorescencja. Cząsteczka luoryzuje w wyniku przejścia promienistego z zerowego poziomu oscylacyjnego wzbudzonego stanu singletowego na dowolny oscylacyjno-rotacyjny poziom stanu podstawowego. W przypadku rozpatrywania izycznych procesów dezaktywacji wzbudzonego stanu singletowego należy liczyć się też z innymi, obok luorescencji możliwymi drogami dezaktywacji: dezaktywacją bezpromienistą i zjawiskiem wygaszania. Procesy te zostały przedstawione na rysunku 1 w rozdziale Wprowadzenie. Zjawiskiem wygaszania nazywamy dezaktywację cząsteczki wzbudzonej w wyniku oddziaływania z wygaszaczem w procesie bezpromienistym. Wygaszanie może odbywać się poprzez przeniesienie energii lub przeniesienie elektronu (patrz: Wprowadzenie). Znajomość tego procesu pozwala na bardzo skuteczne badanie kinetyki i mechanizmów reakcji otochemicznych [1 5]. Rozpatrzmy rozcieńczony roztwór substancji D, na który pada światło monochromatyczne absorbowane przez cząsteczki D, które w ten sposób przechodzą do stanu wzbudzonego, np. 1. Wg przybliżenia stanu stacjonarnego szybkość przejścia cząsteczek do stanu wzbudzonego musi być równa sumie szybkości wszystkich procesów dezaktywujących ten stan: I = k + k + k + k [Q])[ ] (1) a ( IC IC q 1 gdzie I a natężenie promieniowania absorbowanego w molach otonów dm 3 s 1.

46 Ćwiczenie 5 i 6 Wydajność kwantową luorescencji Φ deiniuje się jako stosunek szybkości luorescencji do szybkości absorpcji otonów przez cząsteczki w stanie podstawowym: Φ I k [ ] Wykorzystując powyższe równania otrzymujemy: Φ 1 = = (2) Ia Ia = k [1 ] ( k + k + k + k [Q])[ ] (3) IC Dla stężenia wygaszacza równego zero ([Q] = ) wydajność kwantową luorescencji można zapisać jako: Φ IC k + k IC q IC 1 = (4) k + k Dzieląc stronami dwa ostatnie równania uzyskujemy: Φ Φ gdzie K jest stałą wygaszania [mol 1 dm 3 ]: = 1+ K[Q] IC IC (5) kq K = k + k + k (6) Jeżeli do wyprowadzonego wyrażenia w miejsce mianownika podstawimy czas życia stanu wzbudzonego w nieobecności substancji wygaszającej, opisany zależnością: 1 τ = (7) k + k + k otrzymamy wtedy bardzo ważną zależność zwaną równaniem terna Volmera: IC IC Φ = 1+ K [Q] = 1+ k τ q Φ Wielkość kq [dm 3 mol 1 s 1 ] w tym równaniu nazywamy stałą szybkości wygaszania. Zgodnie z deinicją wydajności kwantowej luorescencji, iloraz Φ /Φ możemy przedstawić jako stosunek natężenia luorescencji w nieobecności wygaszacza do natężenia luorescencji w obecności substancji wygaszającej. W takim przypadku równanie terna Volmera przyjmie ostatecznie postać: [Q] (8) I I = 1+ k q τ [Q] (9)

Ćw. 5 i 6. Wyznaczanie parametrów wygaszania luorescencji akrydyny... 47 Korzystając z deinicji czasu życia stanu wzbudzonego (mierzonego jako czas zaniku /życia/ luorescencji) w obecności i nieobecności wygaszacza, podobna do opisanej wyżej procedura prowadzi do innej ormy równania terna Volmera: τ τ = 1+ k τ [ Q] (1) W równaniu tym wartości τ i τ to odpowiednio czasy życia luorescencji (wzbudzonego stanu singletowego) w nieobecności i w obecności wygaszacza, kq oznacza stałą szybkości wygaszania, a [Q] to stężenie molowe wygaszacza. Równanie terna Volmera znajduje bardzo często zastosowanie do wyznaczania stałej szybkości (kq) reakcji wygaszania [1 5]. Krzywe terna Volmera oparte na pomiarach intensywności luorescencji wykazują często znaczne odchylenia od prostoliniowości, szczególnie dla wysokich stężeń wygaszaczy, gdy uwidaczniają się oddziaływania pomiędzy reagentami w stanach podstawowych, tzw. wygaszanie statyczne. Jego przykładem może być oddziaływanie kulombowskie anion kation pomiędzy cząsteczką mającą ulec wzbudzeniu (kation), a wygaszaczem (anion). Eekty te obserwowane były dla wygaszania luorescencji kationu pirydyniowego (Pyr + ) przez halogenki, siarczany i związki tioorganiczne [6] oraz dla wygaszania luorescencji kationu 1-metyloakrydyniowego (AcrMe + ) przez związki bioorganiczne obdarzone ładunkiem [7]. Dla krzywych terna Volmera uzyskanych z pomiarów czasów życia (tzw. wygaszanie dynamiczne) podobne odchylenia od prostoliniowości nie są obserwowane, ponieważ wielkością bezpośrednio mierzoną jest czas życia stanu wzbudzonego, na który nie ma wpływu to, jakim oddziaływaniom ulega badana cząsteczka przed wzbudzeniem. 16 14 12 q τ /τ I / I 1 8 6 4 2 1,,5,1,15,2 stężenie wygaszacza [mol/dm 3 ] Rys. 1. Krzywe terna Volmera dla wygaszania luorescencji 1 (AcrMe + ) * przez kwas 3,3 -tiodipropionowy (ładunek Z Q = 2) z pomiarów czasów życia ( ) i intensywności luorescencji ( )

48 Ćwiczenie 5 i 6 Przykładowe porównanie krzywych terna Volmera uzyskanych z pomiarów czasów życia i intensywności luorescencji AcrMe + przez odpowiedni wygaszacz obdarzony ładunkiem ujemnym przedstawia rys. 1. Zakrzywienie krzywych (uzyskanych z zależności względem [Q]), obserwowane szczególnie dla wysokich stężeń wygaszaczy, sugeruje udział zarówno składowej statycznej, jak i dynamicznej w procesie wygaszania. Wygaszanie statyczne zdeiniować można jako oddziaływanie pomiędzy anionami wygaszaczy a kationem akrydyniowym, zachodzące w roztworze jeszcze przed absorpcją promieniowania. W rezultacie takiego oddziaływania dochodzi do utworzenia nieemitującego kompleksu (AcrMe + ZQ K Q ). Z Q + Z I Q AcrMe + + Q AcrMe K Q Dowodem eksperymentalnym na powstawanie takiego kompleksu w stanie podstawowym są wyniki badań stacjonarnych wygaszania luorescencji kationu 1-metyloakrydyniowego (AcrMe + ), a ściślej zaobserwowane odchylenia od liniowości w równaniu terna Volmera. Ponieważ część cząsteczek akrydyny związana zostaje w postaci nieemitującego kompleksu, intensywność luorescencji obniża się bardziej, niż miałoby to miejsce w przypadku oddziaływania wygaszacza tylko ze stanem wzbudzonym akrydyny. Wygaszanie statyczne zmniejsza intensywność luorescencji, nie wpływa natomiast na czas życia stanu wzbudzonego kationu akrydynowego. Wygaszanie dynamiczne to rezultat oddziaływania pomiędzy wygaszaczem a kationem akrydyniowym po jego wzbudzeniu w wyniku absorpcji promieniowania. Wygaszanie dynamiczne skraca czas życia luorescencji stanu wzbudzonego, co jednocześnie obniża intensywność obserwowanej luorescencji. Niektóre stałe izykochemiczne pochodnych akrydyny Tabela 1 Związek τ s, [ns] a) Φ E s, [kj/mol] Acr 8,4 1),33 315 AcrH + 28,9 2),66 27 AcrMe + 33,1,86 268 a) mierzone w roztworze wodnym przy odpowiednim ph: 1) ph=1; 2) ph=3 + N OOC CH 2 CH 2 COO CH 3 kation 1-metyloakrydyniowy (AcrMe + ) kwas 2,2 -tiodioctowy (Q)

Ćw. 5 i 6. Wyznaczanie parametrów wygaszania luorescencji akrydyny... 49 CZĘŚĆ A Wykonanie ćwiczenia 5 Celem ćwiczenia jest wyznaczenie stałych szybkości wygaszania luorescencji 1-metyloakrydyny w wodzie przez związki tioorganiczne posiadające grupy obdarzone ładunkiem elektrycznym, w oparciu o zmierzone widma absorpcji i luorescencji. tężenia wygaszacza zostały dobrane w ten sposób, aby udział wygaszania statycznego był zaniedbywalnie mały. Pozwala to na korzystanie z uproszczonej wersji równania terna Volmera (równanie 9). Roztwór 1-metyloakrdyny ma tak dobrane stężenie, aby jego absorbancja mierzona w kuwecie o drodze optycznej 1 cm w maksimum pasma absorpcji 1-metyloakrydyny wynosiła około,2,3. W celu przeprowadzenia eksperymentu wygaszania luorescencji należy przygotować serię pięciu roztworów o stałym stężeniu 1-metyloakrydyny i wzrastającym (od do ok.,5 mol/dm 3 ) stężeniu substancji wygaszającej [Q] (kwas 2,2 -tiodioctowy, M = 15 g/mol). Przygotowujemy serię pięciu kolbek miarowych (5 ml) i naważamy w nich odpowiednią ilość wygaszacza, aby uzyskać jego stężenia podane w tabeli 2. Następnie uzupełniamy kolbki przygotowanym wcześniej wodnym roztworem 1-metyloakrydyny. Przed przystąpieniem do pomiarów luorescencji rejestrujemy widma absorpcji (w zakresie 28 5 nm) roztworu bez wygaszacza oraz roztworu z maksymalnym stężeniem wygaszacza, wobec wody jako odnośnika. Widma te normalizujemy do jedności w maksimum pasma absorpcji (ok. 358 nm) w celu identyikacji ewentualnego pasma absorpcji pochodzącego od utworzonego kompleksu (pary jonowej AcrMe + Q Z ). Widma luorescencji rejestrujemy na spektroluorymetrze w kuwecie kwarcowej o drodze optycznej 1 cm. Parametry takie jak długość ali promieniowania wzbudzającego oraz zakres pomiaru widma luorescencji dobieramy z pomocą asystenta w oparciu o zmierzone wcześniej widma absorpcji (λ wzbudzenia ~ 354 nm, zakres spektralny ~ 36 65 nm). Dla kolejnych roztworów odczytujemy odpowiadającą im intensywność luorescencji obliczając całkowitą powierzchnię pod zarejestrowaną krzywą (I ) oraz intensywność w maksimum luorescencji (I M ). Uzyskane wyniki umieszczamy w tabeli przygotowanej na wzór tabeli 2. Dodatkowo normalizujemy do jedności widma luorescencji w ich maksimum dla roztworu bez wygaszacza oraz roztworu z maksymalnym stężeniem wygaszacza w celu identyikacji ewentualnego pasma luorescencji pochodzącego od utworzonego kompleksu. Następnie, korzystając z wyników eksperymentalnych, sporządzamy wykres zależności I /I vs. [Q] oraz I M /I M vs. [Q] (krzywe terna Volmera). tosując regresję liniową, wyznaczamy parametry a i b dla obu prostych. Następnie bazując na równaniu (9) obliczamy wartość stałej szybkości wygaszania kationu 1-metyloakrydyniowego przez badany wygaszacz (k q ), pamiętając o podaniu tej wartości we właściwych jednostkach. Czas życia luorescencji kationu akrydyniowego w nieobecności wygaszacza (τ s ) wynosi 33 ns.

5 Ćwiczenie 5 i 6 Tabela 2 [Q], mol/dm 3 I I /I I M I M /I M intensywność luorescencji z powierzchni pod krzywą intensywność luorescencji z położenia maksimum I = 1 I M = 1,1,2,3,4,5 CZĘŚĆ B Wykonanie ćwiczenia 6 Celem tej części ćwiczenia jest wyznaczenie stałych szybkości wygaszania luorescencji 1-metyloakrydyny w wodzie przez związki tioorganiczne posiadające grupy obdarzone ładunkiem elektrycznym, w oparciu o pomiary czasów życia luorescencji. Podobnie jak w części A ćwiczenia, stężenia wygaszacza zostały dobrane w ten sposób, aby udział wygaszania statycznego był zaniedbywalnie mały. Pozwala to na korzystanie z uproszczonej wersji równania terna Volmera (równanie 1). Roztwory 1-metyloakrydyny z wygaszaczem należy przygotować identycznie jak w części A ćwiczenia. Następnie, na spektroluorymetrze IBH ystem 5 (metodykę pomiaru opisano w drugiej części Ćwiczenia 11) w kuwecie kwarcowej o drodze optycznej 1 cm należy zarejestrować zaniki luorescencji w badanych roztworach. Do wzbudzania próbki stosować należy diodę laserową o λ wz = 374 lub 49 nm (wg wskazań asystenta). Monochromator emisji (λ em ) należy ustawić na maksimum pasma luorescencji badanego związku, a szczeliny spektroluorymetru dobrać eksperymentalnie w zależności od rejestrowanej intensywności luorescencji (pamiętając o tzw. regule 2%). Po wykonaniu pomiarów czasów życia luorescencji dla roztworów ze stężeniami wygaszacza od do,5 mol/dm 3, należy zarejestrować unkcję aparaturową dla rozpraszającego roztworu Ludox, ustawiając oba monochromatory na długość ali wzbudzenia (374 lub 49 nm). Zapisać uzyskane wyniki w odpowiednim katalogu na dysku komputera. Uzyskane dane zanalizować programem IBH Data Analysis, który poprzez dopasowanie odpowiedniej unkcji matematycznej do mierzonych zaników luorescencji pozwala na wyznaczenie czasów życia luorescencji τ dla poszczególnych stężeń wygaszacza. Uzyskane dane zestawić w tabeli 3. W oparciu o wyniki eksperymentalne oraz równanie terna Volmera sporządzić wykres zależności τ /τ vs. [Q]. Korzystając z regresji liniowej oraz równania (1) wyznaczyć

Ćw. 5 i 6. Wyznaczanie parametrów wygaszania luorescencji akrydyny... 51 stałą szybkości wygaszania wzbudzonego stanu singletowego 1-metyloakrydyny przez badany związek tioorganiczny (k q ). Otrzymaną wartość porównać z wynikami uzyskanymi w części A ćwiczenia. Tabela 3 [Q], mol/dm 3 τ τ /τ τ = 1,1,2,3,4,5 przęt i odczynniki: roztwór akrydyny o stęż. 1 5 mol/dm 3 (5 ml); A 358,3 wygaszacz (kwas 2,2 -tiodioctowy) 5 kolbek miarowych 5 ml 2 kuwety do absorpcji 1 1cm kuweta do luorescencji 1 1cm pipeta automatyczna 2 zlewki waga analityczna spektroluorymetr Jasco 62 spektroluorymetr IBH ystem 5 spektrootometr Varian Cary 5 Bio LITERATURA [1]. Paszyc, Podstawy otochemii, PWN, Warszawa 1992. [2] P. uppan, Chemia i światło, PWN, Warszawa 1997. [3] B. Marciniak (praca zbiorowa), Metody badania mechanizmów reakcji otochemicznych, Wyd. Nauk. UAM, Poznań 1999. [4] J.R. Lakowicz, Principles o luorescence spectroscopy, wyd. 2, Kluwer Academic/Plenum Publishers, New York 1999. [5] A. Kawski, Fotoluminescencja roztworów, PWN, Warszawa 1992. [6] B. Marciniak, J. Rozwadowski, J. Photochem. Photobiol. A: Chemistry, 11, 163 169 (1996) [7] T. Pędziński, B. Marciniak, G.L. Hug, J. Photochem. Photobiol. A: Chemistry, 15, 21 3 (22).