Ćwiczenie 12. Diagnostyka molekularna. Poszukiwanie SNPs Odczytywanie danych z sekwencjonowania. Prof. dr hab. Roman Zieliński

Podobne dokumenty
Ćwiczenie 5/6. Informacja genetyczna i geny u różnych grup organizmów. Porównywanie sekwencji nukleotydowych w bazie NCBI z wykorzystaniem BLAST.

Transformacja pośrednia składa się z trzech etapów:

Biologia medyczna, materiały dla studentów

Metody badania polimorfizmu/mutacji DNA. Aleksandra Sałagacka Pracownia Diagnostyki Molekularnej i Farmakogenomiki Uniwersytet Medyczny w Łodzi

Genetyka, materiały dla studentów Pielęgniarstwa

Konspekt do zajęć z przedmiotu Genetyka dla kierunku Położnictwo dr Anna Skorczyk-Werner Katedra i Zakład Genetyki Medycznej

ANALIZA DANYCH POCHODZĄCYCH Z SEKWENCJONOWANIA NASTĘPNEJ GENERACJI

GENETYKA POPULACJI. Ćwiczenia 1 Biologia I MGR /

ZARZĄDZANIE POPULACJAMI ZWIERZĄT

PLAN STUDIÓW PODYPLOMOWYCH: DIAGNOSTYKA MOLEKULARNA W ROKU 2019/2020. Nazwa modułu ECTS Semestr I Semestr II. Liczba godzin z.

Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6: wykrywanie liczby kopii genu

Ćwiczenie 3/4. Prawa Mendla: zadania, analiza rodowodów Sprzężenia i odległość genetyczna. Kariotypy i chromosomopatie. Prof. dr hab.

Biologia medyczna II, materiały dla studentów kierunku lekarskiego

Dr hab.n.med. Renata Jacewicz

Mikrosatelitarne sekwencje DNA

Bioinformatyka. Program UGENE

ANALIZA DANYCH POCHODZĄCYCH Z SEKWENCJONOWANIA NASTĘPNEJ GENERACJI

Wykład 9: HUMAN GENOME PROJECT HUMAN GENOME PROJECT

Wprowadzenie do genetyki sądowej. Materiały biologiczne. Materiały biologiczne: prawidłowe zabezpieczanie śladów

Biologia medyczna, lekarski Ćwiczenie ; Ćwiczenie 19

Tematyka zajęć z biologii

Spis treści. 1 Moduł RFID (APA) 3

mikrosatelitarne, minisatelitarne i polimorfizm liczby kopii

1 Moduł Modbus ASCII/RTU 3

PODSTAWY BIOINFORMATYKI 11 BAZA DANYCH HAPMAP

SYSTEMY INFORMATYCZNE WSPOMAGAJĄCE HODOWLĘ MAGDALENA FRĄSZCZAK

1 Podstawowe pojęcia z zakresu genetyki. 2 Podstawowy model dziedziczenia

1. Analiza asocjacyjna. Cechy ciągłe. Cechy binarne. Analiza sprzężeń. Runs of homozygosity. Signatures of selection

INTERPRETACJA WYNIKÓW BADAŃ MOLEKULARNYCH W CHOROBIE HUNTINGTONA

Markery klasy II -Polimorfizm fragmentów DNA (na ogół niekodujących): - RFLP - VNTR - RAPD

Ćwiczenie 3. Amplifikacja genu ccr5 Homo sapiens wykrywanie delecji Δ32pz warunkującej oporność na wirusa HIV

Podstawy genetyki człowieka. Cechy wieloczynnikowe

Jaki koń jest nie każdy widzi - genomika populacji polskich ras koni

Księgowanie i eksport wynagrodzeń do systemu FK

Ćwiczenia nr 3 Genotypowanie mikrosatelitów przy użyciu automatycznego kapilarnego analizatora DNA

Spis treści. 1 Moduł Modbus TCP 4

Napisz, który z przedstawionych schematycznie rodzajów replikacji (A, B czy C) ilustruje replikację semikonserwatywną. Wyjaśnij, na czym polega ten

S YLABUS MODUŁU (PRZEDMIOTU) I nformacje ogólne. Stacjonarne (s)

Klonowanie molekularne Kurs doskonalący. Zakład Geriatrii i Gerontologii CMKP

Wykład: HUMAN GENOME PROJECT HUMAN GENOME PROJECT

Rozdział ten zawiera informacje na temat zarządzania Modułem DMX oraz jego konfiguracji.

GENOMIKA. MAPOWANIE GENOMÓW MAPY GENOMICZNE

PODSTAWY BIOINFORMATYKI 12 MIKROMACIERZE

Metody odczytu kolejności nukleotydów - sekwencjonowania DNA

a) Zapisz genotyp tego mężczyzny... oraz zaznacz poniżej (A, B, C lub D), jaki procent gamet tego mężczyzny będzie miało genotyp ax b.

KONFIGURACJA SERWERA USŁUG INTERNETOWYCH

przedmiotu Nazwa Wydział Nauk Medycznych i Nauk o Zdrowiu Kierunek jednolite studia magisterskie Profil kształcenia (studiów)

Badania asocjacyjne w skali genomu (GWAS)

BioTe21, Pracownia Kryminalistyki i Badań Ojcostwa.

Specjalność (studia II stopnia) Oczyszczanie i analiza produktów biotechnologicznych

Bliskie Spotkanie z Biologią. Genetyka populacji

WIEDZA. wskazuje lokalizacje przebiegu procesów komórkowych

Program ćwiczeń z przedmiotu BIOLOGIA MOLEKULARNA I GENETYKA, część I dla kierunku Lekarskiego, rok I 2015/2016. Ćwiczenie nr 1 (

1 Rejestrator czasu pracy

1 Moduł Identyfikacji

Sekwencjonowanie nowej generacji i rozwój programów selekcyjnych w akwakulturze ryb łososiowatych

2. Rozdział materiału genetycznego w czasie podziałów komórkowych - mitozy i mejozy

3. Które ze stwierdzeń dotyczących formatowania dysków jest fałszywe? Formatowanie dysku:

Kadry Optivum, Płace Optivum

1. Symulacje komputerowe Idea symulacji Przykład. 2. Metody próbkowania Jackknife Bootstrap. 3. Łańcuchy Markova. 4. Próbkowanie Gibbsa

ĆWICZENIE 1 i 2 Modyfikacja geu wołowej beta-laktoglobuliny przy użyciu metody Overlap Extension PCR (wydłużania nakładających się odcinków)

Ekologia molekularna. wykład 14. Genetyka ilościowa

WOJEWÓDZTWO PODKARPACKIE

Dr hab.n.med. Renata Jacewicz

Zastosowanie nowych technologii genotypowania w nowoczesnej hodowli i bankach genów

Dziedziczenie poligenowe

Bioinformatyczne bazy danych - część 2. -przeszukiwanie baz danych -pobieranie danych

Ćwiczenie 3 Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6 metodą PCR w czasie rzeczywistym (rtpcr) przy użyciu sond typu TaqMan

Genetyka. Genetics. Nazwa przedmiotu. Kod przedmiotu UTH/Z/P/PI/A/ST/1(I)/2L/4. Rok akademicki. Wersja przedmiotu

Instrukcja instalacji certyfikatu w systemie Windows

Porównywanie i dopasowywanie sekwencji

Warunki udzielania świadczeń w rodzaju: świadczenia zdrowotne kontraktowane odrębnie 8. BADANIA GENETYCZNE

1 Moduł Neuronu Cyfrowego SM

Platforma Genie II. innowacyjne narzędzie do identyfikacji materiału genetycznego patogenów techniką LAMP Loop-mediated Isothermal AMPlification

SERWER AKTUALIZACJI UpServ

Bioinformatyka. Ocena wiarygodności dopasowania sekwencji.

Wprowadzenie do genetyki medycznej i sądowej

Analiza sprzężeń u człowieka. Podstawy

Instrukcja użytkownika

Zmienność. środa, 23 listopada 11

Analiza sprzężeń u człowieka. Podstawy

Bioinformatyczne bazy danych

Mapowanie i markery molekularne

Polimorfizm genu mitochondrialnej polimerazy gamma (pol γ) w populacjach ludzkich Europy

CalendarGenerator v0.1 - instrukcja obsługi

Teoria ewolucji. Podstawowe pojęcia. Wspólne pochodzenie.

Ekologia molekularna. wykład 1

GENETYKA. Genetyka. Dziedziczność przekazywanie cech rodziców potomstwu Zmienność występowanie różnic pomiędzy różnymi osobnikami tego samego gatunku

1 Moduł Modbus ASCII/RTU

Co to jest transkryptom? A. Świercz ANALIZA DANYCH WYSOKOPRZEPUSTOWYCH 2

Oznaczenie polimorfizmu genetycznego cytochromu CYP2D6: wykrywanie liczby kopii genu

Składniki jądrowego genomu człowieka

Nowoczesne systemy ekspresji genów

Księgarnia PWN: Joanna R. Freeland - Ekologia molekularna

Analiza sprzężeń u człowieka. Podstawy

1 Moduł Konfigurowanie Modułu

OCENA RÓŻNORODNOŚCI GENETYCZNEJ PRZY POMOCY MARKERÓW MOLEKULARNYCH ZASTOSOWANIE W EKOTOKSYKOLOGII

CECHY ILOŚCIOWE PARAMETRY GENETYCZNE

INSTRUKCJA INSTALACJI I OBSŁUGI GPG4Win

Dodawanie stron do zakładek

Transkrypt:

Ćwiczenie 12 Diagnostyka molekularna. Poszukiwanie SNPs Odczytywanie danych z sekwencjonowania Prof. dr hab. Roman Zieliński 1. Diagnostyka molekularna 1.1. Pytania i zagadnienia 1.1.1. Jak definiujemy markery genetyczne? 1.1.2. Jakie wyróżniamy rodzaje markerów genetycznych? 1.1.3. Podaj cechy dobrego markera. 1.2. Ćwiczenia 1.2.1. Na podstawie poniższej tabeli porównaj markery genetyczne. Cecha Markery Markery Markery DNA morfologiczne enzymatyczne Dziedziczenie (dominacja/kodominacja) Współdziałanie genów Poziom polimorfizmu Wpływ środowiska Wartość adaptacyjna (neutralność) Liczebność Łatwość wykrywania/ generowania Kosztochłonność Ćwiczenie można wykonać w grupach i omówić. Prof. dr hab. Roman Zieliński, prof.romanzielinski@gmail.com, www.matgen.pl 1 z 5

1.2.2. Zaplanuj doświadczenie, które pozwoli opracować szybką metodę diagnostyki wybranej choroby za pomocą markerów molekularnych przy założeniu, że ma ona charakter dziedziczny. Jaka populacja powinna być uwzględniona w badaniach? Jakie czynniki wpłyną na wybór metodologii? Jak należy zaplanować analizy, gdy geny związane z potencjalną chorobą są zidentyfikowane i znana jest ich sekwencja? Jak należy zaplanować doświadczenie, gdy wiemy, że choroba jest jednogenowa, ale gen nie został zidentyfikowany? Jak należy zaplanować doświadczenie, gdy nie są znane uwarunkowani genetyczne danej choroby? 1.2.3. Na rysunku poniżej przedstawiono rozdział elektroforetyczny izoenzymów dysmutazy nadtlenkowej (SOD). Wiedząc, że aktywny enzym jest monomerem zinterpretuj uzyskany żel. Strefa 1 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 Strefa 2 Strefa 3 Zidentyfikuj co oznaczają strefy 1-3. W której strefie obserwujemy allozymy? Przyjmując oznaczenia A1 i A2 dla różnych alleli w strefie 1 podaj genotypy osobników 1 19. Prof. dr hab. Roman Zieliński, prof.romanzielinski@gmail.com, www.matgen.pl 2 z 5

1.2.4. na rysunku poniżej przedstawiono wynik rozdziału elektroforetycznego markerów opartych o reakcję PCR. Markery te identyfikują sekwencje znajdujące się na stykach intronów i egzonów. Ile różnych loci widoczne jest na żelu? (Dla ułatwienia proszę odczytać tylko najsilniejsze prążki). Ile jest loci segregujących? Odczytaj genotypy osobników w zaznaczonej strefie? Ile loci obejmuje ta strefa? Jak należy oznaczyć segregujące allele? 1.3. Problemy 1.3.1. Pomimo powszechności technik sekwencjonowania genomów, markery genetyczne nadal są stosowane. Zastanów się kiedy stosowanie markerów genetycznych jest bardziej efektywne niż sekwencjonowanie? 1.3.2. Metody molekularne często obarczone są błędami. Z czego wynikają błędne odczyty w przypadku markerów izoenzymatycznych oraz markerów DNA? Jak można zapobiegać tym błędom lub je minimalizować? Prof. dr hab. Roman Zieliński, prof.romanzielinski@gmail.com, www.matgen.pl 3 z 5

2. Poszukiwanie SNPs 2.1. Pytania i zagadnienia 2.1.1. Co oznacza skrót SNP? 2.1.2. Jakiego typu zmiany wykrywa się za pomocą SNPs? 2.2. Ćwiczenia 2.2.1. Poszukiwanie SNPs w sekwencji DNA. Wejdź na stronę programu CLUSTAL omega dostarczonego przez EMBL: https://www.ebi.ac.uk/tools/msa/clustalo/ W otwartym oknie (Multiple Sequence Alignment) znajduje się formularz do wprowadzenia sekwencji nukleotydowej. Wybierz opcję DNA. Wprowadź sekwencje dostarczone w pliku rdna Pinus.seq. Jest to plik tekstowy z trzema sekwencjami zapisanymi w formacie FASTA. Wprowadź dostarczone sekwencje poprzez ich przekopiowanie do okna (sequences in any supported format) lub przez załadowanie pliku rdna Pinus.seq za pomocą opcji browse pod oknem (w tym przypadku należy plik z serwera skopiować na własny komputer. W punkcie 2 i 3 (Step2 i Step 3) pozostaw domyślne parametry. Zatwierdź analizę za pomocą submit. Po kilku sekundach powinien pojawić się ekran z uliniowaniem Przekopiuj uzyskane uliniowanie do pliku i zaznacz pozycje występujących SNPs. Czy oprócz SNPs występują także inne mutacje? Zaznacz je i podaj nazwę. Samodzielne wykonanie ćwiczenia 2.2.1 3 punkty Prof. dr hab. Roman Zieliński, prof.romanzielinski@gmail.com, www.matgen.pl 4 z 5

3. Odczytywanie sekwencji DNA 3.1. Pytania i zagadnienia 3.1.1. Jakie znasz metody sekwencjonowania DNA? 3.1.2. Jak wygląda odczyt sekwencji z żelu poiliakrylamidowego a jak z wydruku komputerowego będącego efektem sekwencjonowania metodą Sangera z zastosowaniem barwników fluorescencyjnych? 3.1.3. Czy możliwe jest odczytanie sekwencji całego genomu człowieka bez pomocy komputera? Uzasadnij odpowiedź. 3.2. Ćwiczenia 3.2.1. Odczyt sekwencji z programu CHROMAS 3.3. Problemy Korzystając z klucza znajdującego się na początku powyższego wydruku, podaj sekwencję DNA. Uwaga: ze względu na różne kolory zasad pracę należy wykonać w komputerze lub kolorowym wydruku. 3.3.1. Metody molekularne są obecnie często wykorzystywane w kryminalistyce. Wyobraź sobie, że jesteś adwokatem osoby oskarżonej o poważne przestępstwo na podstawie testów DNA. Osoba ta twierdzi, że w czasie przestępstwa była w innym miejscu oddalonym o 500 km od miejsca przestępstwa. Twierdzenia oskarżonej osoby potwierdziło 5 świadków. W jaki sposób możesz wykazać, że oskarżony jest niewinny? Zadanie można wykonać dzieląc się na dwie grupy, oskarżycieli i obrońców. Prof. dr hab. Roman Zieliński, prof.romanzielinski@gmail.com, www.matgen.pl 5 z 5